动物实验基本技术黄文革

医学动物实验常用技黄动物实动物实验技动物实是指以实验动物为对象和材料，在设计的条件下进行实验或者检测，观察、记录反应过程和结果的活动过程。动物实验技 第五节、各种检验标 第六节实验动物的安死术第七节尸体检查及脏器标本 第八节实验外科的基本操作技术第九节动物实验中的安全防护第十节动物实验后废弃物 第一 动物实验前的准 三、实验动 与标一、动 的选 动 要与实验动物同等级别如：普通级的兔，可以在SPF级动 做实验吗二、实验动物 三、实验动 与标记方（一）染色（二）耳孔（三）标牌（四）烙印三、实验动 与标记方1、单色涂染法：常用染色剂：3-5％ 溶液，可染成黄色。方法步骤左后肢3号号尾巴根为10号（6）额部为202、双色涂染法常用染色剂3- 溶液，可染成黄色。——0.5红色。——作为“十”位数。实验动物：大鼠、小鼠方法步骤用两种颜色同时进 (黄色)染色标记作为个位数，个位数的染色标记方法同单色涂染用品红(红色右侧80号、第100号不作染（二）耳孔耳孔法用 耳孔器在动物耳朵不同部位打一小孔或缺口表示一定号码的方法，原则是：左耳代表十位，右耳代表个位。实验动物：兔、犬、猪。应注意打孔后 处理，以防 。 法：是用朔料、铝、钢片制成，其上刻有号码，借 器械订 （三）标牌 笼上。实验动物：犬、猴、猪或兔。大动物常用：耳孔法+标牌法（四）烙印法（×）直接把标 烙印在动物身上的方法（五）目前 方大、小鼠尾部第二节实验动物的捉拿与固大、小鼠的捉拿与固豚鼠的捉拿与兔的捉拿与犬的捉拿与固一、小鼠的抓取保定1、用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将小鼠提起，放在饲养合的面罩上向后拉3、翻转左手掌，以左手掌心和中指夹鼠背部的皮肤，使小鼠整个呈一条直线4、用左手无名指压住小鼠背部的皮肤，小指压住小鼠的尾巴根部5、松开捏住小鼠尾巴的右手拇指和食小鼠抓取、保定

二、大鼠的抓取保定大鼠的抓取保定器材：大鼠饲养盒1方法步骤：4-5周内的大鼠，方法同小鼠。周龄较大的，则1、首先戴好防护手套2、用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上3、左手顺势按、卡在大鼠躯干背部，稍加压力向头颈部滑行4部皮肤，完成抓取保定。大鼠抓取、保定

翻转如大鼠体积过大,可由第二个人协同固定后肢，进行注射给药器材l套。1、先用左手轻轻扣、按住2、顺势抓紧其肩胛上方皮肤，拇指和食指环箍其3抓豚鼠时，一般不要抓腰腹部位，否则易造成肝破裂而引 豚鼠抓取、保定先用一只手掌迅速扣住鼠背 抓住其肩胛上方，以拇指和食指环握颈部中指和无名指轻轻扣住胸廓

或像抓取大鼠一样抓住双耳和颈背部四、兔的抓取保(一)方法1：1、用右手抓住兔颈部的被毛和皮肤，轻轻把兔提2、用左手托住兔的臀部1、打开保定架的上盖，抓取并将兔放进架内，迅速关上保定架的上2、右手抓住兔耳朵及颈后皮肤将头部拉过保定架的卡栓，将兔的脖3此法可用于耳缘iv采血、给药，或热源实验兔的抓取、保定按住兔子的双耳和颈背 一只手抓住兔子双耳和颈背部的毛皮提

五、犬的抓取与 第三 实验动物的麻麻醉方麻醉途径：通过吸入、注射（）、口常用物：乙醚（吸入），戊巴比妥钠（ip、iv）、硫贲妥钠、（静脉）、速眠新、水合氯醛（临时代替品ip），普常 的剂量及注射途戊巴比硫贲妥盐水合氯乌拉小--大22-豚22-家22-狗猪30-10-510-麻醉注意事麻醉前应禁食8h以麻醉前应准确称体注意麻醉剂麻醉过程中注意观察动物的反应情注意保温（术中、术后静脉注射时必须缓在寒冷冬季，麻醉剂在注射前应加热至动物体温第四节供试品给药方 大、小鼠灌胃方法步骤1、将灌胃针连接在注射器上，吸入一定量的药液 的深度 注意事在灌胃过程中，避免 气管一般将灌胃 小鼠3－4cm，大鼠或豚鼠4-常用灌胃量（按体重小鼠约0.1-0.5ml／10g体重。最大体积为1.0ml大鼠约1-2ml／100g体重，最大体积为4.0ml常用灌胃针：大鼠16号或18号，小鼠9号或12大、小鼠灌胃图一只手持注射器，将灌胃针 口中，沿口腔顶壁和咽后壁徐徐

小鼠灌

大鼠灌（2）兔灌原理：将药液直接注入兔的胃兔灌胃步骤12、灌胃者用左手拇指和中指挤压兔两颊，将下颌挤开使 张口3、右手将开口器从一侧口 腔并固定4、用泡在石蜡油中的胃管，经开口器的 5、在插管时应将胃管另一端泡在水中确认没有冒气泡，或在胃管另一端接注射器，轻回抽注射器，看有是否有胃液，检验是否胃，确认到胃，即可用注射器经胃灌胃量：80-150ml注意：在灌胃过程中，避免误（二）注射给皮下注射给药皮内注射肌肉注射给药腹腔注射静脉注射给药脑内注关节腔注射淋巴囊注射：蛙类常采用此（二）注射给1、皮下注射给药（大、小鼠淋巴管吸收进入血液循环。器材：1m1注射器1支、生理盐水、烧杯 、碘酒、棉球皮下注射给药（大、小鼠）方法步骤注射部位：颈背部、腋下、腹侧和后肢的一手抓取、固定动物，另一手常规 注射部位的皮肤，再用注射针头取锐角度刺入皮下.将针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地将药物注入皮下。注射量：0.1ml—0.3ml／10g大、小鼠皮下注皮内肌肉注射给原理：将药液注入动物的肌肉组织，经毛细血管吸收进入血液循环。 碘酒、棉球腹腔原理：将药液注入动物的腹腔器材：注射器1支、生理盐水、、碘酒、棉球方法步骤：以小鼠为用左手将小鼠抓取和固定，使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部大约15度（头低位）右手拿棉球（签）进行进针部位；然后，右手持1ml注射器 注：1.小鼠固定后，动物要头低位大鼠的腹腔注射操作大鼠体重较大的，可二人操静脉注射给原理：将药液注入小鼠的尾器材：1m1注射器1支、生理盐水、烧杯、金属笼或大小鼠 、碘酒、棉大、小鼠尾静脉注射的方法步将动物放在金属笼或小鼠固定器中，通过金属笼或固定器的孔拉 注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧，用食指从下面托起尾巴，以无名指夹住尾巴的末梢。右手持4号针头的注射器，使针头与静脉平行（小于30度角）从鼠尾巴下1／4处进针，见有血液回流到针头，先缓注少量药液，如果无阻力，拔出针头后，用干棉球压住注射部位约l-2min，防 常规注射剂量0.05m1—0.1m1／10g体重。大鼠1.0-2.0m1／100g体重大、小鼠固定小鼠尾静脉注 大鼠尾静脉注射(可见回血兔耳缘静脉给原理：穿刺兔的耳缘静器材：兔保定架、注射器1支、生理盐水、烧杯 、碘酒、棉球兔耳缘静脉给药方法步骤将兔放在保定架并揉搓血管，使兔的耳缘静脉充盈 兔的耳缘静脉的近端，拇指绷紧静脉的 右手拿注射器，针尖的斜面朝上，将针头从远心端 血管，放 耳中动兔耳缘静脉给用手指弹动 注射部位

左手固定兔耳，右手持针（连注射器） 操作完毕， 棉球（棉签 针眼片刻止犬静脉注第五节各种检验标 方断尾采血（从尾巴尖剪约0.2-0.5cm）眼球后静脉丛取血法摘眼球采 静脉采血▲大、小鼠常用腹腔静脉采血，在动物麻醉下进行，用针管在腹颈动静脉（兔）、股动静脉取血法（犬尾巴尖将动物装入固定器中，露出尾巴，用涂擦或用温水浸泡使血管扩张，剪断尾尖后，尾静脉血即可流出，用手轻轻地从尾根部向尾尖，可取到一定量的血液。取血后，用棉球止血。大鼠每次可取0.3～0.5ml，供一般血常规实验。大鼠剪尾采眼球后静脉丛取内下眼眶壁，向眼球后推进4～5mm，旋转毛细管，可见血液自眼眶取血法：（又名摘眼球取血法 小鼠各种采血方法的最大采血二 体消化 尿 三、采 第六 实验动物的安死 采用安死术必须符合的 对操 安死术的常用方让实验动物吸入大量C02等气体 ×断头 、击打头盖骨 尸体内 技第八节实验外科的基本操作技一、术前准二、无菌技术的概念 三、手术的基本操作技常用手术器常用手术器手术基本操作技 常用几种缝合方法图四、术后的动物护理与第九节实验中的安全防实 安 动物实验中的安全防 实 的安全管安 实 意外损伤的防操作 物咬、抓伤实验动物安全管人畜共患病的防管理原分析可能会有哪 共患病存在，并采取针对性的预防措 的动物应进行防 安全操作技 第十节动物实验后废弃物 处 污 污 处废弃动物及动物尸 处 各种途径的常规给药（皮