薜荔籽中果胶的提取和测定方法和测定方法毕业设计

常州工学院学士学位论文PAGE目录第一部分设计任务与调研…………第二部分设计说明………………………第三部分设计成果……………………第四部分结束语…………第五部分致谢…………第六部分参考文献…………………

第一部分设计任务与调研果胶是人体七大营养素中膳食纤维的主要成分，具有良好的凝胶性和乳化稳定性，在食品工业中应用广泛，也是医药和化妆品工业不可缺少的辅料。可作为果酱冻类、冰淇淋及果汁的稳定剂、乳化剂和增稠剂。果胶是铅、汞和钴等金属中毒的良好解毒剂和预防剂，果胶及果胶的铝盐可抑制肠道对胆固醇和三酸甘油酯的吸收，可用作动脉硬化等心血管疾病的辅助治疗。果胶主要是从植物组织中提取的，常用的方法有铝盐盐析法、离子交换法、微生物法等。超声波是频率高于人耳所能听到频率范围的声波，频率一般在20KHz以上。超声波在水中传播，可以产生能释放巨大能量的激化和突发，即“空化效应”。超声“空化效应”可以产生高达数百个大气压的局部瞬间压力，形成冲击波，使固体表面及液体介质受到极大冲击力，从而破碎细胞，这是超声应用于果胶原料破壁的理论基础。毕业设计主要的任务是了解薛荔瘦果中果胶提取的目地及现状；果胶提取常用方法；薛荔中果胶提取的工艺；薛荔中果胶提取的研究方法。我会采用超声波提取法，利用超声波具有的机械效应，空化效应和热效应，通过增大介质分子的运动速度、增大介质的穿透力以提取生物有效成分。超声波提取法提取率高、提取时间短、提取温度低、适用广、提取药液杂质少，有效成分易于分离、纯化提取工艺运行成本低，综合经济效益显著；操作简单易行，设备维护、保养方便。

第二部分设计说明主要学会了使用常用的分析仪器，学习了超声波提取法提取和测定薜荔耔果胶的基本流程。主要过程如下：采用超声波提取法提取薜荔耔果胶的基本工艺流程如下：设计思路薜荔瘦果(除杂过筛)→薜荔籽(加水)→超声辅助提取→离心→上清液→真空干燥→称重(果胶含量测定)→提取率计算提取步骤称取薜荔壳粉20g，薜荔籽粉20g，按液固比为28:1ml/g，加入560ml蒸馏水，声辅助提取。离心：六支离心管内沉淀均为25g，转速为4000r/min，离心20min，取上清液。干燥：将果胶放入已恒重的培养皿中，置于电热恒温鼓风干燥箱中，55℃下干燥5h。3、标准曲线的制作：准确称取分析纯G.A0.0500g,用蒸馏水溶解后定容于50mL容量瓶中(浓度1mg/ml),于6个5mL容量瓶中分别吸取此液O、1、2、3、4、5mL,配成0、20、40、60、80、100mg/ml。取6支比色管分别加入上述溶液1ml，然后各加入6ml浓硫酸,用自来水边加边冷却至室温后,各加入0.30mL0.15%咔咔唑无水乙醇溶液,摇匀。在室温下暗处放置1.5h,在540nm处测吸光度(A)，以试剂空白作参比,绘制标准曲线。样品测定：准确称取0.035一0.040g果胶粉于50mL烧杯中,加入10mL0.5mol浓硫酸，15mL水,搅匀,在75℃水中水解15min，冷却至室温后定容于50mL容量瓶中。然后,准确移取5.00mL该液于另一50mL容量瓶,稀释至刻度。标准稀释液的测定。

第三部分设计成果超声波提取薜荔果胶的工艺操作要点：过筛：将挑拣除杂质后的薜荔籽20目、40目过筛除去花瓣，然后置于85℃烘箱中干燥，至水分含量为8％左右，备用。称取：称取薜荔壳粉20g，薜荔籽粉20g，按液固比为28:1ml/g，加入560ml蒸馏水超声提取：超声波功率为600W、提取40min离心：六支离心管内沉淀均为25g，转速为4000r/min，离心20min，取上清液。干燥：将果胶放入已恒重的培养皿中，置于电热恒温鼓风干燥箱中，55℃下干燥5h3.1.5低温水萃取法提取薜荔耔果胶的基本工艺流程：薜荔瘦果(除杂过筛)→薜荔籽(加水)→加热浸提(滤布)→过滤→乙醇沉淀→离心→乙醇洗涤(沉淀)→干燥→称重(果胶含量测定)→提取率计算操作要点：提取：称取薜荔粉20g，按液固比为28:1ml/g，加入560ml蒸馏水，于65℃水浴锅中加热，提取60min，将提取完的果胶水溶液过120目滤布，再用玻璃棒挤压滤布至干为止。浓缩：将过滤后的果胶溶液置于60℃旋转蒸发仪内浓缩。沉淀：按体积比为1:2加入95%乙醇沉淀，冷却置于4℃冰箱中静置过夜。离心：六支离心管内沉淀均为25g，转速为4000r/min，离心20min，将上清液倒弃，加入浓度为78%乙醇并进行第二次离心。干燥：将果胶放入已恒重的培养皿中，置于电热恒温鼓风干燥箱中，55℃下干燥5h。3.1.6计算公式式中：Ml一干燥后果胶的重量(g)Mo一容器重量(g)M2一薜荔籽重量(g)3.1.7标准曲线的制作准确称取分析纯G.A0.0500g,用蒸馏水溶解后定容于50mL容量瓶中(浓度1mg/ml),于6个5mL容量瓶中分别吸取此液O、1、2、3、4、5mL,配成0、20、40、60、80、100mg/ml。取6支比色管分别加入上述溶液1ml，然后各加入6ml浓硫酸,用自来水边加边冷却至室温后,各加入0.30mL0.15%咔咔唑无水乙醇溶液,摇匀。在室温下暗处放置1.5h,在540nm处测吸光度(A)，以试剂空白作参比,绘制标准曲线。3.1.8样品测定准确称取0.035～0.040g果胶粉于50mL烧杯中,加入10mL0.5mol浓硫酸，15mL水,搅匀,在75℃水中水解15min，冷却至室温后定容于50mL容量瓶中。然后,准确移取5.00mL该液于另一50mL容量瓶,稀释至刻度。标准稀释液的测定。计算公式：式中：c为从标准曲线查得的所测果胶液中G.A的浓度(mg/l)，W为果胶粉质量(g)。根据不同果实果胶G.A的含量不同,可换算出相应果实中果胶的含量。选题新颖、独特，选取很少有人研究的薜荔作为研究对象，同时具有一定的实用性，为藤本植物的开发利用提供了一定的指导意义。

第四部分结束语1、初次接触这个毕业设计题目的时候，感觉满头雾水，不知所措。解决方案：经广泛的查阅相关资料，寻求指导老师、同学的帮助之后，大概了解了这个实验，开始有了一些眉目。2、最开始听到薜荔中果胶的提取和测定方法时，感觉是个很复杂的设计，之前从没有过相似的接触，深入了解之后发现其实不是想象中的那么难，但是问题在于可以利用的资料有限。解决办法：了解相关的基本原理之后再查阅相关的资料，然后确定设计方案。

第五部分致谢我历时将近两个月时间终于把这篇论文写完了，在这段充满奋斗的历程中，带给我的学生生涯无限的激情和收获。在论文的写作过程中遇到了无数的困难和障碍，都在同学和老师的帮助下度过了。在校图书馆查找资料的时候，图书馆的老师给我提供了很多方面的支持与帮助，尤其要强烈感谢我的论文指导老师，没有他对我进行了不厌其烦的指导和帮助，无私的为我进行论文的修改和改进，就没有我这篇论文的最终完成。在此，我向指导和帮助过我的老师们表示最衷心的感谢！同时，我也要感谢本论文所引用的各位学者的专著，如果没有这些学者的研究成果的启发和帮助，我将无法完成本篇论文的最终写作。至此，我也要感谢我的朋友和同学，他们在我写论文的过程中给予我了很多有用的素材，也在论文的排版和撰写过程中提供热情的帮助！金无足赤，人无完人。由于我的学术水平有限，所写论文难免有不足之处，恳请各位老师和同学批评和指正！

第六部分参考文献[1]唐翠娥.薜荔籽果胶的提取工艺及其性质研究[D].南昌:南昌大学,2007.[2]张小玲.果胶的咔哇硫酸分光光度测定法研究[J].甘肃农业大学学报,1999,34（1）：75-78.[3]董姐,郭立玮,文红梅,刘佳等.中药水提液中果胶含量测定方法研究[J].现代中药研究与实践,2007,21(5):39