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文档简介
1、碱性磷酸酶(AKP)的分离纯化生物化学与分子生物学系 袁野2021/9/301实验目的: 从兔肝中提取碱性磷酸酶的实验,培养同学综合运用有机溶剂沉淀、离心、分光等方法,从组织中分离纯化及鉴定特定蛋白质的技能。2021/9/302实验原理: 采用有机溶剂分步沉淀法,从兔肝中提取碱性磷酸酶。 AKP溶于30%乙醇或33%丙酮。但在60%的乙醇或50%丙酮中则形成沉淀。通过离心可以使AKP和其他蛋白分离,从而得到纯化。 反复进行纯化的操作,可以获得较高纯度的AKP。2021/9/303有机溶剂沉淀概念:在含有溶质的水溶液中加入一定量亲水的有机溶剂,降低溶质的溶解度,使其沉淀析出。原理:(1)降低了溶
2、质的介电常数,使溶质之间的静电引力增加,从而出现聚集现象,导致沉淀。(2)由于有机溶剂的水合作用,降低了自由水的浓度,降低了亲水溶质表面水化层的厚度,降低了亲水性,导致脱水凝聚。2021/9/304常用的有机溶剂沉析剂乙醇:沉析作用强,挥发性适中,无毒常用于蛋白质、核酸、多糖等生物大分子的沉析;丙酮:沉析作用更强,用量省,但毒性大,应用范围不广;特点:介电常数小: 60%乙醇的介电常数是48 丙酮的介电常数是22容易获取2021/9/305有机溶剂沉析的特点分辨率高;溶剂容易分离,并可回收使用;产品洁净;容易使蛋白质等生物大分子失活;应注意在低温下操作;2021/9/306影响有机溶剂沉析的主
3、要因素温度:低温有利于防止溶质变性;有利于提高收率(溶解度下降);搅拌速度:散热溶液pH值:原则是避免目标蛋白与杂质带有相反的电荷,防止共沉现象。(pI)离子强度:离子强度低有利于沉析,0.010.05mol/L样品浓度: 0.52%稀:溶剂用量大,回收率低,但共沉淀作用小浓:节省溶剂用量,共沉作用强,分辨率低金属离子的助沉析作用:Zn2+、Ca2+2021/9/3071.称取兔肝2g,剪碎后置于玻璃匀浆器中,加入0.01 M的醋酸镁及醋酸钠混合液4ml, 进行匀浆。转入离心管,并加2ml 0.01 M的醋酸镁及醋酸钠混合液清洗匀浆器,之后将之倒入离心管,与原来的匀浆液混合。记录体积a,取0.
4、1ml作为A液于EP管,待测比活性用。2021/9/308在离心管中剩余的液体加入2ml正丁醇,玻璃棒搅拌 2min,室温放置30min,纱布过滤,置于离心管。滤液加入等体积的冷丙酮,边倒边摇,混匀后3000r/min 5min。弃上清,沉淀用4ml 0.5M Mg(AC)2溶解。记录体积b。取0.1ml作为B液于EP管,待测比活性用。2021/9/3094.(1)于悬液中缓慢加入冷95%乙醇使其终体积为30%(0.46体积),混匀后2000r/min 5min,转移上清于另一离心管。(2)上清液中缓慢加入冷95%乙醇使其终体积为60%(0.85体积),混匀后3000r/min 5min,弃上
5、清,沉淀用4ml 0.01M Mg(AC)2、NaAC混合液搅拌混悬。2021/9/30105.(1)于悬液中缓慢加入冷95%乙醇使其终体积为30%(0.46体积),混匀后2000r/min 5min,转移上清于离心管,弃沉淀。(2)上清液中缓慢加入冷95%乙醇使其终体积为60%(0.85体积),混匀后3000r/min 5min,弃上清,沉淀用3ml 0.5M Mg(AC)2溶解,记录体积c。取0.1ml作为C液于EP管,待测比活性用。2021/9/30116.(1)其余悬液中缓慢加入冷丙酮,使得丙酮的体积分数达到33%(0.5体积),混匀后2000r/min 离心5min, 取上清(弃沉淀
6、)(2)上清中缓慢加入冷丙酮,使丙酮终体积分数达到50%(0.34体积),混匀后3000r/min离心15min,弃上清(3)沉淀中加入Tris-醋酸镁缓冲液5ml,即为纯化酶液。作为D液用于比活性测定。2021/9/30122021/9/3013用于活性测定:用Tris-Mg(AC)2缓冲液将 A液稀释25倍、B液稀释10倍、 C液稀释5倍,D液不稀释。用于含量测定:用Tris-Mg(AC)2缓冲液将 A液稀释50倍、B液稀释20倍、 C液稀释5倍,D液不稀释。2021/9/3014(二)碱性磷酸酶的活性测定实验原理: AKP是一种底物特异性较低,在碱性环境中能水解磷酸基团。最适pH范围为8
7、.810, 需要镁离子作为激活剂。 血清AKP主要来自肝,小部分来自骨骼。2021/9/3015 酶的活性通常是在一定条件下(最适温度、最适的pH、必要的激动剂等),一定的时间内,测定该酶所催化的反应系统中底物的消耗量或产物的生成量来确定。2021/9/3016磷酸苯二钠磷酸盐 +酚AKP酚 + 4-氨基安替比林红色醌类衍生物铁氰化钾2021/9/3017管号 空白 标准 A B C D酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1酚标准液 0.1Tris-Mg(AC)2 0.1复合底物 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.01. 取试管6支编号(体积单位为ml)2. 加入底物后, 立即混匀,
8、 37 准确15 min后加入0.5%铁氰化钾2.0 ml终止反应, 混匀, 静置15 min , 510 nm比色(大比色杯)2021/9/3018AKP纯化程度鉴定AKP纯化程度用酶的比活性反映。酶的比活性是指单位浓度的酶蛋白样品中的酶活性。2021/9/3019BCA法测定AKP蛋白浓度BCA (bicinchoninic acid, 二喹啉甲酸)Protein + Cu2+OH-Cu+BCA 试剂 紫色复合物(三)碱性磷酸酶的蛋白含量测定2021/9/3020管号 空白 标准 A B C D酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1蛋白标准液 0.1Tris-Mg(AC)2 0.1BCA试
9、剂 1.5 1.5 1.5 1.5 1.5 1.51. 取试管6支编号(体积单位为ml)2. 混匀后37水浴30min, 562nm比色(小比色杯)2021/9/3021管号 空白 标准 A B C D酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1酚标准液 0.1Tris-Mg(AC)2 0.1复合底物 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0管号 空白 标准 A B C D酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1蛋白标准液 0.1Tris-Mg(AC)2 0.1BCA试剂 1.5 1.5 1.5 1.5 1.5 1.51. 取试管6支编号(体积单位为ml)酶活性测定2. 取试管6支编号(体积单位
10、为ml)酶蛋白含量测定2021/9/3022管号 空白 标准 A B C D酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1酚标准液 0.1Tris-Mg(AC)2 0.1复合底物 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.01. 取试管6支编号(体积单位为ml)2. 加入底物后, 立即混匀, 37 准确15 min后加入0.5%铁氰化钾2.0 ml终止反应, 混匀, 静置15 min , 510 nm比色(大比色杯)2021/9/3023722S型分光光度计使用方法开机预热15min以上(打开盖预热)。 转动波长选择钮,选用所需的波长。将装有空白、标准、样品的比色杯放入比色杯架,使空白管对准光路。按
11、MODE 键选择trans模式。打开样品室暗箱盖(光门自动关闭),按0%ADJ 键,即能自动进行机械零点的调整,数码显示为0.000。盖好比色杯暗箱盖(光门自动开启),按100%ADJ 键,即能自动进行空白零点的调整,数码显示为100.0。(一次如有误差可再按一次)按MODE 键选择吸光度测定模式(ABS灯亮),数码显示自动转换为吸光度值0.000。拉动比色杯架的拉杆,使测定杯进入光路,从数码显示上即可读出样品的吸光度 比色完毕后,关上电源开关,取出比色杯,将比色杯暗箱盖好,清洗比色杯并晾干。2021/9/3024分光光度计必须放置在固定而且不受振动的仪器台上,不能随意搬动,严防振动,潮湿和强
12、光直射。分光光度计内放有硅胶干燥袋,需定期更换。开机预热15分钟,待仪器稳定以后再开始进行测定。每年需定期进行波长校准。必须保证测试样品为澄清的溶液,肉眼看不出来的轻微浊度也能引起读数的严重误差,必要时可通过离心来去除微粒。检测细菌培养液的光吸收时例外。从冰箱中取出的样品一定要恢复到室温后再进行检测,否则低温会使水蒸汽在比色皿表面凝结,引起读数持续漂移上升。 使用分光光度计的注意事项2021/9/3025比色杯盛液量以达到杯容积2/3左右为宜。比色杯的外表面,则必须先用滤纸吸干,再用擦镜纸或绸布擦净,然后才能把比色杯放入比色杯槽内。移动比色杯槽要轻,以防溶液溅出,腐蚀机件。不可用手拿比色杯的光学面,禁止用毛刷等物摩擦比色杯的光学面。用完比色杯后应立即用自来水冲洗,再用蒸馏水洗净,也可用甲醇冲洗。洗涤后应把比色杯倒置晾干或用滤纸条将水吸去,再用擦镜纸轻轻揩干。一定要保证比色皿正确放入光路后再进行测量。 一般应把溶液浓度尽量控制在吸光度值0.20.7的范围内进行测定。这样所测得的读数误差较小。如吸光度不在此范围内,可调节样品溶液浓度,适当稀释或加浓,使其在仪器准确度较高的范围内进行测定。 2021/9/3026A样A标 标准管
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