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文档简介
1、实验六人淋巴细胞染色体标本制作一、实验目的: 学习动物细胞染色体标本的制作方法,认识染色体形态。二、实验原理: 染色体是细胞遗传的研究对象,分析认识眼行为对于认识遗传物质的传递、复制、畸变等都有重要的意义。获得染色体的方法很多,目前对于哺乳动物比较常用的方法是外周血细胞培养法,就是将外周血接种在适当的培养基中进行培育,人类外周血细胞是终未分化细胞,一般没有分裂能力,但经PHA(植物血球凝集素)或ConA等药物刺激后,转变为可分裂的转化细胞,向培养基中加入适量的秋水仙素,可使细胞停留在中期,可以获得大量的分裂细胞。用低渗盐溶液(一般为0.4%KCl或0.075MKCl)处理,使其中的红细胞及分裂
2、相细胞的膜破裂并使转化细胞膨胀,结合离心技术,可将红细胞碎片及分裂相细胞膜和一部分细胞质除去,最后以气干法制片,可获得较好的染色体标本。三、试剂和器材:(一)试剂:.培养基RPMI1640(或Eagles液)、胎牛血清、肝素、PHA、青链霉素、5%NaHCO3、2%碘酒、75%酒精、2g/ml秋水仙素(或10g/ml秋水仙胺)。低渗液:.KCl,预温在37oC。固定液:甲醇、冰醋酸,每次在使用前按3:1临时配制。染 液:2%Giemsa (二)器材: .超净工作台 .恒温箱.5ml移液管 4.链霉素瓶100 ml血浆瓶 6.50 ml量筒1 ml,2 ml注射器 .清洁载片(使用前存冰箱中)9
3、.恒温水浴(37oC) 10.水平离心机11.尖底离心管(10 ml) 12.天平13.试管架,定时钟 14.吸管,橡皮头15.相差显微镜 16.酒精灯(三)实验材料: 人血 或 猪血四、实验步骤:1.培养基的制备:在超净工作台上,用吸管吸取RPMI1640液10 ml,用1 ml注射器取肝素0.3 ml,PHA0.4 ml,青链霉素0.3 ml(各10000单位/ ml),混合均匀后用0.5%的NaHCO3,调整pH为7.0-7.2,然后用5 ml吸管分装,每小瓶5 ml,用胶布封口。 .每小瓶接种全血.ml左右,在37oC培养箱中培养68-72小时,培养终止前6-7小时加2g/ml秋水仙素
4、2-3滴,使最终浓度为0.01-0.022g/ml。 .自培养箱中取出培养小瓶,用吸管将沉于瓶底的细胞冲散均匀,将细胞悬液移进离心管中。 .平衡:将离心管置于已配平的天平上,通过加减离心管中细胞悬液来使天平重新配平。 .将离心管移入离心机的对称套洞内,盖上离心机套,打开电源,待速度升到1500rpm时,离心8分钟。 .用吸管小心移去上清液,留下细胞沉淀和上清液约1 ml,加入低渗液6.5 ml,吸打沉淀,使之混匀,置于37oC水浴10分钟,同时按甲醇:冰醋酸=3:1比例配固定液20ml,盛于三角瓶中。 .预固定:加1ml新鲜配制的固定液,打匀细胞,立即以1000rpg离心10分钟,移去上清夜。 .沿管壁缓慢加入5-6ml新固定液,用吸管轻轻打匀细胞团块。 .20分钟后,以1000rpg离心5分钟,去上清夜。 10.重复8-9步23次。 11.移去固定液,视细胞数量多少加入05-1ml新鲜固定液,将沉淀打成悬液。 12.在干净、湿、冷的玻片上滴23滴细胞悬液,在酒精灯下略加烘烤,使其干燥。 13.在相差显微镜下观察有无分裂相,如分裂相多,分散较好时,继续做下列步骤,如不多且分散不好,则停止,如仅是分散不好,可以再固定一次。 14将玻片放下染色架上,每片加2ml-3ml ,2%Giemsa染液
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