植物的组织培养

1、植物组织培养的优点1、占用空间小，不受地区、季节限制。2、培养脱毒作物3、培养周期短4、可用组培中的愈伤组织制取特殊的生化制品5、可短时间大量繁殖，用于拯救濒危植物6、可诱导之分化成需要的器官，如根和芽7、解决有些植物产种子少或无的难题，8、不存在变异，可保持原母本的一切遗传特征9、投资少，经济效益高10、繁殖方式多，试用品种多植物组织培养科技名词定义中文名称：植物组织培养 英文名称：plant tissue culture定义：在含有营养物质及植物 生长物质的培养液中，培养离体植物组织（器官或细胞）并诱导使其长成完整植株的技术。所 属学科：细胞生物学（一级学科）；细胞培养与细胞工程（二级学科

2、）本内容由全国科学技 术名词审定委员会审定公布百科名片植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖 的新技术。植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织.器官或细 胞，原生质体等，通过无菌操作，在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产 具有经济价值的其他产品的技术。狭义是指组培指用植物各部分组织，如形成层.薄壁组织. 叶肉组织.胚乳等进行培养获得再生植株，也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织的培 养，愈伤组织再经过再分化形成再生植物。目录理论起源植物组织的培养方法植物组织培养的优点植物组织培养一般分为以下几种培养材料的采集植物

3、组织培养步骤植物组织培养的特点1、培养条件可以人为控制2、生长周期短，繁殖率高3、管理方便，利于工厂化生产和自动化控制理论起源植物组织的培养方法植物组织培养的优点植物组织培养一般分为以下几种培养材料的采集植物组织培养步骤植物组织培养的特点1、培养条件可以人为控制2、生长周期短，繁殖率高3、管理方便，利于工厂化生产和自动化控制 展开编辑本段理论起源19世纪30年代，德国植物学家施莱登和德国动物学家施旺创立了细胞学说，根据这一 学说，如果给细胞提供和生物体内一样的条件，每个细胞都应该能够独立生活。1902年，德 国植物学家哈伯兰特在细胞全能性的理论是植物组织培养的理论基础。1958年，一个振奋人

4、心的消息从美国传向世界各地，美国植物学家斯蒂瓦特等人，用胡萝卜韧皮部的细胞进行培 养，终于得到了完整植株，并且这一植株能够开花结果，证实了哈伯兰特在五十多年前关于 细胞全能的预言。植物组织培养的简单过程如下：剪接植物器官或组织经过脱分化（也叫去分化）形成愈伤组织一一再经过再分化形成组织或器官一一经过培养发育成一颗完 整的植株。植物组织培养的大致过程是：在无菌条件下，将植物器官或组织（如芽、茎尖、根尖或花药）的一部分切下来，放在适当的人工培养基上进行培养，这些器官或组织就 会进行细胞分裂，形成新的组织。不过这种组织没有发生分化，只是一团薄壁细胞，叫做愈 伤组织。再适合的光照、温度和一定的营养物质

5、与激素等条件下，愈伤组织便开始分化，产 生出植物的各种器官和组织，进而发育成一棵完整的植株。植物组织培养即植物无菌培养技术，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官如根、茎、叶、茎尖、 花、果实等）组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大抱子、小抱 子、体细胞等）以及原生质体，在无菌和适宜的人工培养基及光照、温度等人工条件下，能诱 导出愈伤组织、不定芽、不定根，最后形成完整的植株的学科 编辑本段植物组织的培养方法1、非试管微组织快繁非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。一

6、般植物715天可以生长出根系。此技术投资低，操作环节少。2、试管组织培养 试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在试管等器皿中在无菌的条件下进 行组织培养获得试管苗。编辑本段植物组织培养的优点1、占用空间小，不受地区、季节限制。2、培养脱毒作物3、培养周期短4、可用组培中的愈伤组织制取特殊的生化制品5、可短时间大量繁殖，用于拯救濒危植物6、可诱导之分化成需要的器官，如根和芽7、解决有些植物产种子少或无的难题，8、不存在变异，可保持原母本的一切遗传特征9、投资少，经济效益高10、繁殖方式多，试用品种多 编辑本段植物组织培养一般分为以下几种1、胚胎培养指以从胚珠中分离出来的成熟或未成

7、熟胚为外植体的离体无菌培养。2、器官培养指以植物的根、茎、叶、花、果等器官为外植体的离体无菌培养，如根的根尖和切段，茎的茎尖、茎节和切段，叶的叶原基、叶片、叶柄、叶鞘和子叶，花器的花瓣、 雄蕊（花药、花丝）、胚珠、子房、果实等的离体无菌培养。3、组织培养指以分离出植物各部位的组织（如分生组织、形成层、木质部、韧皮部、表皮、皮层、胚乳组织、 薄壁组织、髓部等），或已诱导的愈伤组织为外植体的离体无菌培养。这是狭义的植物组织培 养。4、细胞培养指以单个游离细胞（如用果酸酶从组织中分离的体细胞，或花粉细胞，卵细胞）为接种体的离体无菌培养。5、原生质体培养。指以除去细胞壁的原生质体为外植体的离体无菌培养

8、。编辑本段培养材料的采集要根据培养目的适当选取材料，选择原则：易于诱导、带菌少。要选取植物组织内部无 菌的材料。这一方面要从健壮的植株上取材料，不要取有伤口的或有病虫的材料。另一方面 要在晴天，最好是中午或下午取材料，决不要在雨天、阴天或露水未干时取材料。因为健壮的植株和晴天光合呼吸旺盛的组织，有自身消毒作用，这种组织一般是无菌的。培养材料的 消毒从外界或室内选取的植物材料，都不同程度地带有各种微生物。这些污染源一旦带人培养基，便会造成培养基污染。因此，植物材料必须经严格的表面灭菌处理，再经无菌操 作手续接到培养基上。试剂 ？乙醇。 ？吲哚乙酸（IAA）或2，4 - D （生长素类似物）。?氯

9、化汞（升汞）或次氯酸钠。？6-苄基氨基腺嘌吟（6-BA ）?MS培养基 ？ 0.1 mol/L NaOH与0.1 mol/L HCl 配制培养基 （1 ）愈伤组 织诱导培养基：MS培养基（蔗糖含量为10 g/L， 2,4 - D含量为2 mg/L，琼脂10 g/L ）。（ 2 ）试验培养基：在MS培养基中加入IAA和6-BA。吲哚乙酸（IAA）先用少量0.1 mol/L NaOH溶解，6-苄基氨基腺嘌吟先用少量0.1 mol/L HCl溶解，然后 用蒸馏水稀释，再加入培养基中。仪器设备培养室，高压灭菌锅，水浴锅，解剖刀，三角烧瓶（100mL ），烧杯，量筒，培养皿，棉线，接种箱或超净工作台，分

10、析天平， 长镊子，剪刀，容量瓶，移液管，牛皮纸。培养基灭菌将配好的培养基加入琼脂加热溶解，调至pH 5.8，趁热分装于100 mL三角烧瓶中，每瓶约20 mL。待培养基冷却 凝固后，用一层称量纸和一层牛皮纸包扎瓶（管）口，并用棉线扎牢，然后在高压灭菌锅中 121 C（ 1 kg/cm 2 ）下灭菌20 min。取出三角烧瓶放在台子上，冷却后备用。接种操作 所需的一切用具（如长镊子、解剖刀、剪刀等）及灭菌水，需同时灭菌。编辑本段植物组织培养步骤第一步，将采来的植物材料除去不用的部分，将需要的部分仔细洗干净，如用适当的刷 子等刷洗。把材料切割成适当大小，即灭菌容器能放人为宜。置自来水龙头下流水冲洗

11、几分 钟至数小时，冲洗时间视材料清洁程度而宜。易漂浮或细小的材料，可装入纱布袋内冲洗。 流水冲洗在污染严重时特别有用。洗时可加入洗衣粉清洗，然后再用自来水冲净洗衣粉水。 洗衣粉可除去轻度附着在植物表面的污物，除去脂质性的物质，便于灭菌液的直接接触。当 然，最理想的清洗物质是表面活性物质一吐温。第二步是对材料的表面浸润灭菌。要在超净台或接种箱内完成，准备好消毒的烧杯、玻璃棒、70%酒精、消毒液、无菌水、手表等。 用70%酒精浸1030秒。由于酒精具有使植物材料表面被浸湿的作用，加之70%酒精穿透力 强，也很易杀伤植物细胞，所以浸润时间不能过长。有一些特殊的材料，如果实、花蕾、包 有苞片、苞叶等的

12、孕穗，多层鳞片的休眠芽等等，以及主要取用内部的材料，则可只用70% 酒精处理稍长的时间。处理完的材料在无菌条件下，待酒精蒸发后再剥除外层，取用内部材 料。第三步是用灭菌剂处理。表面灭菌剂的种类较多，可根据情况选取12种使用见表。第四步是用无菌水涮洗，涮洗要每次3min左右，视采用的消毒液种类，涮洗3-l0次左 右。无菌水涮洗作用是免除消毒剂杀伤植物细胞的副作用注意：酒精渗透性强，幼嫩材料 易在酒精中失绿，所以浸泡时间要短，防止酒精杀死植物细胞。老熟材料，特别是种子等 可以在酒精中浸泡时间长一些，如种子可以浸泡5分钟。升汞的渗透力弱，一般浸泡10 分钟左右，对植物材料的杀伤力不大。漂白粉容易导致

13、植物材料失绿，所以对于幼嫩材料 要慎用。在消毒液中加入浓度为0.080.12%的吐温20或80 （一种湿润剂），可以降低植 物材料表面的张力，达到更好的消毒效果。编辑本段植物组织培养的特点1、培养条件可以人为控制组织培养采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长，摆 脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响，且条件均一，对植物生长极为 有利，便于稳定地进行周年培养生产。2、生长周期短，繁殖率高植物组织培养是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的不同要求而提供不同 的培养条件，因此生长较快。另外，植株也比较小，往往20-30天为一个周期。所以，虽然 植物组织培养需要一定设备及能源消耗，但由于植物材料能按几何级数繁殖生产，故总体来 说成本低廉，且能及时提供规格一致的优质种苗