实验六植物总RNA的提取及检测

1、实 验 六 植物总RNA的提取 1实验原理：LiCl最终浓度为2 mol/L 0.8 mol/L直接沉淀大分子RNA（包括rRNA和mRNA）需要注意的是Li离子对反转录酶有抑制作用，而Cl离子能抑制蛋白质合成的起始步骤，所以在mRNA反转录和体外翻译实验前不要使用LiCl沉淀DNA和RNA2所用所有试剂：Tris- CTAB：与RNA结合-巯基乙醇：防止被氧化Tris饱和酚、氯仿：去蛋白质5L LiCl、无水乙醇、70%乙醇、3 mol/L NaAc：使RNA沉淀1TAE、 BW：配制凝胶Gol-rad或gold-view和6loading buffer :前沿指示剂ddH2O 所有材料 用

2、具试剂瓶 、250烧杯 玻璃棒 250容量瓶 记号笔 天平 一次性手套 钥匙、液氮 研钵、冰、线手套、枪、枪头、高压锅、电泳照相系统离心机 、混摇机、恒温水浴、电泳仪、电泳槽3实验准备：1、CTAB 5g 直接加入试剂瓶（防止起泡）2、NaCl 20.44g + 0.5M EDTA 12.5ml 用ddH2O 定容至225ml3、空瓶贴标签加适量（100或50ml）的ddH2O LiCl NaAc 70%乙醇 氯仿 ddH2O 4、6个瓶 + 0.1%DEPC 在通风橱里戴双层手套，充分摇匀，气泡不很快消失5、37度保温过夜4注意事项：试剂瓶用洗洁精水浸泡一个小时，然后清水冲到不起泡，壁上不挂

3、水珠，再用ddH2O冲两次，量筒等量器清洗后都用ddH2O冲洗两次Tris 不可用0.1%DEPC处理，等其他组分处理完再加到CTAB中所有瓶子用0.1%DEPC处理，除了-巯基乙醇，Tris饱和酚（购买时小瓶装，直接用即可）所有水溶试剂用ddH2O配置加样器100-1000规格的，小于100则不准确5实验流程1. 3-5倍体积（650ul Tris-CTAB提取缓冲液，50ul-巯基乙醇）的65度预热的提取缓冲液，混匀2. 根据实验需要，取每管0.1-0.5g叶片置液氮中冷冻，研磨成粉末。首先将研钵、杵和钥匙充分冷冻（浇3-4次），加入叶片，加液氮，不超过五次。液氮多的时候轻磨，快没时用劲快

4、磨，至白色为止。3. 粉末加入准备好的离心管中，大概2匙柄，充分混匀，放在65度恒温浴中15min，每隔2-3min摇一次，研钵和杵放水下冲，氯仿瓶放在冰中。4. 加入一倍体积（700ul）的氯仿，用混摇机摇匀，12000rpm,离心10min,取上清。5. 在冰中准备好离心管和氯仿，重复一次。66. 准备好550ul 5mol/L LiCl，350 ul冷无水乙醇，60ul 3 mol/L NaAc， 加入430ul上清液，静置15-30min，沉淀RNA7. 12000 rpm离心10min，注意放的方向，抽去上清，RNA沉淀为无色胶体状8. 用70%乙醇漂洗两次，切忌快速抽打，开口在通风橱里风干（大概15min），再加入20ul的ddH2O，反复抽打混匀，置于冰中备用。7注意事项1、整个实验过程禁止说话，即在没有条件的情况下，尽量创造一个无RNA酶的环境2、实验提取过程尽量缩短时间,尽可能放在冰上3、RN