小鼠解剖之欧阳学文创作_第1页
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文档简介

1、实验一小鼠大体解剖 欧阳学文 注意事项:请按教师的指令进行操作,谨防被小鼠咬伤; 如发生 意外,请立即报告老师! 一、 实验目的 1. 掌握小鼠的抓取和固定方法; 2. 掌握小鼠的解剖方法; 3. 熟悉脏器系数的测定方法 4. 了解一般实验动物的抓取和固定方法 5. 了解一般实验动物的生物样本的采集方法 二、 实验内容 1. 小鼠的抓取和固定 正确的抓取固定动物,是为了不损害动物健康,不影响 观察 指标,并防止被动物咬伤,保证实验顺利进行。抓取固 定动物的 方法依实验内容和动物类而定。抓取固定动物前, 必须对各种动 物的一般习性有所了解,抓取固定时既要小心 仔细,不能粗暴, 又要大胆敏捷,确实

2、达到正确抓取固定动 物的目的。 (1)单手抓取固定法 小鼠性情较温顺, 挣扎力小,比较容易抓取和保定。 抓 取时, 用左手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部 (图 1)放在格 板或铁笼上。 趁着小鼠试图挣脱的瞬间,迅速用另外三个手 指压住小鼠的尾巴 根部握入手掌(图 2); 放松拇指和食 指,用另外三个手指控制小 鼠,然后用食指和拇指捏住小鼠 头部两边疏松的皮肤提起小鼠 (图 3) ,完成抓取保定。注 意,抓小鼠尾巴应抓住尾巴中部或根部, 不能仅捏住小鼠尾 巴的尾端,因为这时小鼠的重量全部集中到尾 端,如果小鼠 挣扎,有可能弄破尾端。 在进行解剖、手术、心脏采血、尾静脉注射时,可将小 鼠用 线绳捆绑在

3、木版上,或固定在尾静脉注射架及粗试管 中。 2)双手抓取固定法 抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后 拉, 在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和 颈部皮肤 (图 4),将鼠体置于左手心中, 把后肢拉直, 以 无名指按住鼠尾, 小指按住后腿即可(图 5) o 这种在手中 固定方式,能进行实验 动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射 以及其他实验操作。 如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时,则需将 小鼠 作一定形式的固定,解剖手术和心脏采血等均可使动物 先取背卧 位(必要时先行麻醉),再用大头针将鼠前后肢依 次固定在腊板 上。尾静脉注射时,可用小鼠尾静脉注射架固 定(图 6)

4、 ,先根据 动物大小选择好合适的固定架,并打开 鼠筒盖,手提鼠尾巴,让 动物头对准鼠筒口并送入筒内, 调 节鼠筒长短合适后, 露出尾巴,固定筒盖即可进行尾静脉注 射或尾静脉采血等操作 图6 2.小鼠的处死方法 (1)颈椎脱臼处死法 此法是将实验动物的颈椎脱臼,断离脊髓致死,为小鼠 最常 用的处死方法。操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并 将其提起, 放在鼠笼盖或其他粗糙面上,用左手拇指、食指 用力向下按压鼠 头及颈部,右手抓住鼠尾根部用力拉向后上 方,造成颈椎脱臼, 脊髓与脑干断离,实验动物立即死亡。 (2)断头处死法 此法适用于鼠类等较小的实验动物。操作时,实验人员 用左 手按住实验动物的背部, 拇指夹住实验动物右腋窝, 食 指和中指 夹住左前肢,右手用剪刀在鼠颈部垂直将鼠头剪 断,使实验动物 因脑脊髓断离且大量r / 7 固定筒盖即可进行尾静脉注 射或尾静脉采血等操作 出血死亡。 3 ? 小鼠解剖步骤 (1)处死小鼠 将小鼠采用颈椎脱臼法处死后,置台秤上称重。 (2) 皮肤消毒 用酒精棉球将小鼠腹部的皮肤消毒。 (3) 打开腹腔、胸腔 用手术剪将小鼠的腹部和胸部的皮肤剪开,然后用手术剪 将腹腔和胸腔剪开,仔细观察小鼠腹腔和胸腔的各内脏器 (4) 计算脏器系数 用眼科剪小心分离肝脏和卵巢, 分别用生理盐水洗净, 纸将水吸干后置台秤上称重。分别

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