基因突变的检测方法

1、基因突变的检测方法基因突变的检测方法 基因突变的研已成为当今生命科学研究的热点之一， 检测方法也随之迅速发展。 人类细胞癌 基因的突变类型已如上所述，对于基因突变的检测， 1985 以前，利用 Southern 印迹法，可 以筛选出基因的缺失、 插入和移码重组等突变形式。 对于用该法法不能检测的突变， 只能应 用复杂费时的 DNA序列测定分析法。多聚酶链反应( polymerase chain reaction,PCR )技 术是突变研究中的最重大进展， 使基因突变检测技术有了长足的发展， 目前几乎所有的基因 突变检测的分子诊断技术都是建立于 PCR的基础之上， 并且由 PCR衍生出的新方法不

2、断出现， 目前已达二十余种， 自动化程度也愈来愈高， 分析时间大大缩短， 分析结果的准确性也有很 大很提高。 其中包括单链构象多态性 ( single-strand comformational polymorphism,SSCP ) 和异源双链分析法( heteroduplex analysis,HA )。下面分别介绍几种 PCR衍生技术及经典 突变检测方法，可根据检测目的和实验室条件选择时参考。PCR-SSCP法 PCR-SSCP法是在非这性聚丙烯酰胺凝胶上， 短的单链 DNA和 RNA分子依其大街 基序列不同而形成不同构象， 一个碱基的改变将影响其构象而导致其在凝胶上的移动速度改 变。其

3、基本原理为单链 DNA在中性条件下会形成二级结构， 这种二级结构依赖于其碱基组成， 即使一个碱基的不同， 也会形成不同的二级结构而出刺同的迁移率。 由于该法简单快速， 因 而被广泛用于未知基因突变的检测。用PCR-SSCP法检测小于 200bp 的 PCR产物时，突变检出率可达 70-95 ，片段大于 400bp 时，检出率仅为 50左右，该法可能会存在 1的假 阳性率。应用 PCR-SSCP法应注意电泳的最佳条件，一般突变类型对检测的灵敏度无大的影 响，同时该法不能测定突变的准确位点，还需通过序列分析来确定。 Sarkar 等认为对于大 于 200bp 的片段， 用其 RNA分子来做 SSC

4、P会提高其录敏度。 应用 PCR-SSCP检测点突变已见 报道于人类大部分的肿瘤组织或细胞，如乳腺癌、食管癌、肺癌、胃癌、肝癌、胰腺癌等。 检测的基因包括多种癌基因及抑癌基因， 也是检测抑癌基因 p53 突变最常用的方法， 仅检测 第 5-8 外显子即可发现 85 以上的 p53 基因突变。由于该法简便快速，特别适合大样本基 因突变研究的筛选工作。异源双链分析法( HA) HA 法直接在变性凝胶上分离杂交的突变型一野生型DNA双链。由于突变和野生型 DNA形成的异源杂合双链 DNA在其错配处会形成一突起， 在非变性凝胶中电泳 时，会产生与相应的同源双 DNA不同的迁移率。 该法与 SSCP相似

5、， 所不同的是 SSCP分离的 是单链 DNA， HA法分离的是双链 DNA，也只适合于小片段的分析。但 HA对一些不能用 SSCP 检出的突变有互补作用，两者结合使用，可使突变检出率提高到近100。突变体富集 PCR法( mutant-enriched PCR )本法的基本原理是利用 ras 基因家族某个密码 子部位存在已知的限制性内切酶位点， 如 K-ras 基因第 12 密码子的 BstNI 位点， 第 13 密古 巴子有 Bg位点。 用链续二次的巢式 PCR来扩增包括 K-ras 第 12、13 密码子的 DNA片段， 在两次扩增反应之间用相应的内切酶消化扩增的DNA片段，野生型因被酶

6、切而不能进入第二次 PCR扩增，而突变型则能完整进入第二次PCR扩增并得到产物的富集。变性梯度凝胶电泳法( denaturing gradinent electrophoresis,DGGE) DGGE法分析 PCR产物，如果突变发生在最先解链的DNA区域，检出率可达 100，检测片段可达 1kb ，最适 围为 100bp-500bp 。基本原理基于当双链 DNA在变性梯度凝胶中进行到与 DNA变性湿度一致 的凝胶位置时， DNA发生部分解链， 电泳适移率下降， 当解链的 DNA链中有一个碱基改变时， 会在不同的时间发生解链，因影响电泳速度变化的程而被分离。 由于本法是利用温度和梯度凝胶迁移率

7、来检测， 需要一套专用的电泳装置， 合成 的 PCR引物最好在 5 末端加一段 40bp-50bp 的 GC夹，以利于检测发生于高熔点区的突变。 在 DGGE的基础上，又发展了用湿度梯度代替化学变性剂的TGGE法(温度梯度凝胶电泳temperature gradient gelelectrophoresis,TGGE )。 DGGE和 TGGE均有商品化的电泳装置， 该法一经建立，操作也较简便，适合于大样本的检测筛选。化学切割错配法( chemical cleavage of mismatch,CCM) CCM为在 Maxam-Gilbert 测序法的基础上发展的一项检测突变的技术， 其检测突

8、变的准确性可与 DNA测序相仿。 其基本原理 为将待测含 DNA片段与相应的野生型 DNA片段或 DNA和 RNA片段混俣变性杂交， 在异源杂合 的双链核酸分子中， 错配的 C能被羟胺或哌啶切割， 错配的 T 能被四氧化饿切割， 经变性凝 胶电泳即可确定是否存在突变。 该法检出率很高， 也是检片段最长的方法， 已有报功检测了 片段，如果同时对正、反义链进行分析，检出率可达100。应用荧光检测系统可增强敏感度，可检测到 10 个细胞中的 1 个突变细胞。该法中的化学试剂有毒，又发展了碳二亚胺检 测法( catodiimide,CDI ) ,CDI 为无毒物质，也可检测大片段 DNA的点突变。等位

9、基因特异性寡核苷酸分析法( allele-specific oligonucleotide,ASO ) ASO 为一种以 杂交为基础对已知突变的检测技术。以PCR和 ASO相结合，设计一段 20bp 左右的寡核苷酸片段，其中包含了发生突变的部位，以此为探针，与固定在膜上的经PCR拉增的样品 DNA杂交。可以用各种突变类型的寡核苷酸探针， 同时以野生型探针为对照， 如出现阳性杂交带， 则表运河样品中存在与该 ASO探针相应的点突变， ASO需严格控制杂交条件和设置标准对照 避免假阳性和假阴性。目前已有商品化的检测盒检测部分癌基因ASO突变。DNA芯片技术( DNA chip) DNA芯片技术是

10、90年代后发展的一项 DNA分析新技术，它集合 了集成电路计算机、 激光共聚焦扫描、 荧光标记探针和 DNA合成等先进技术。 可用于基因定 位、 DNA测序、物理图谱和遗传图谱的构建等。在基因突变检测方面DNA芯片也有广阔的前景，其基本原理为将许多已知序列的寡核苷酸DNA排列在 1 块集成电路板上， 彼此之间重叠1 个碱基，并覆盖全部所需检测的基因，将荧光标记的正常DNA和突变 DNA发别与 2 块 DNA芯片杂交， 由于至少存在 1 个碱基的差异， 正常和突变的 DNA将会得到不同的杂交图谱， 经 过共聚集显微镜分别检测两种 DNA分子产生的荧光信号， 即可确定是否存在突变， 该方法快 速简

11、单、 片动化程度高， 具有很大的发展潜力， 将在基因突变检测中心发挥非常重要的作用。连接酶链反应( ligase chain reaction,LCR ) 与其他核酸扩增技术比较，其最大特点为可 准确区分基因序列中单个基因突变，由 Landegree 于 1988 年首次应用于镰刀奖细胞贫血的 分子诊断。 LCR是以 DNA连接酶将某一 DNA链的 5- 磷酸与另一相邻链 3- 羟基连接为基础， 应用两对互补的引物，双链 DNA经加热变性后，两对引物分别与模板复性，若完全互补，则在连接酶的作用下，使相邻两引物的 5- 磷酸与 3- 羟基形成磷酸二酯二酯键而连接，前一 次的连接产物又作为下一次循

12、环反应的模板，如果配对的碱基存在突变则不能连接和扩增。 LCR产物检测最初是通过这 32p 标记上游引物 3未端，经变性凝胶电泳分离后放射自显影加 以鉴定，其检测敏感性达到 200个靶分子。也可设计 1 个横跨两引物的检测探针，用它与 LCR产物进行杂交检测。近年有应用荧光素、地高辛等非核素标记方法。Batt 在 1994 年发展了一种更为简的方法， 好微孔板夹心杂交法。由于 LCR的快速、 特蛋和敏感的特性， 以及 能检测单个碱基突变的能力， 因此被应用于肿瘤基因突变的分子诊断， 并与 PCR结合用以提 高其敏感性。等位基因特异性扩增法 ( Allele-specific amplifica

13、tion,ASA )ASA于 1989 年建立，是 PCR 技术应用的发展，也称扩增阻碍突变系统(amplification refractory mutationsystem,ARMS)、等位基因特性 PCR(allele-specificPCR,ASPC)R 等，用于对已知突变基因进行检测。该法通过设计两个 5 端引物，一个与正常 DNA互补，一个与突变 DNA互补， 对于纯合性突变， 分别加入这两种引物及 3 端引物进行两个平行 PCR，吸有与突变 DNA完互 补的引物才可延伸并得到 PCR扩增产物。如果错配位于引物的3 端则导致 PCR不能延伸，则称为 ARM。S ARMS和 ASPC

14、R借鉴多重 PCR原理，可在同一系统中同时检测两种或多种等位 基因突变位点。 ASA法的检出率依赖于反应条件的优化和可能发生的引物与靶DNA有氏配时错配延伸，特别是当错配碱基为 G：T时，这时可通过调整实验条件如引物靶DNA，Taq DNA聚合酶的浓度等来得高瓜在特异性。 在反应体系中加入甲酰胺也可减少非特异性扩增。 还可 通过在引物 3 端的第二个碱基引入一个错配碱基，使之与模板之间形成双重错配以阻止错 误延伸。RNA酶 A切割法( RNase A cleavage ) 在一定条件下， 氨基源双链核酸分子 RNA：RNA或 RNA： DNA中的错配碱基可被 RNaseA切割，切割产物可通过变

15、性凝胶电泳分离。当RNA探针上错配的碱基为嘌呤时， RNaseA在错配处的切割效率很低，甚至不切割，而当错配碱基为嘧啶 时，则其切割效率较高。故如果仅分析被检DNA的一个条链，突变检出率只有 30，如同时分析正义和反义二条链，检出率可达70。该法需要制备 RNA探针，增加了操作的复杂性，但可用于 1-2kb 的大片段进行检测， 并能确定突变位点。 于这些优越性，它仍被作为一 种经典方法用于对未知突变进行分析。染色体原位杂交( In situ hybridization of chromosome )染色体发现距今已有 150 多年 的历史， 染色体检测被广泛用于动、 植物及人类的细胞遗传学研究

16、， 随着染色体分技术和分 子生物学技术的发展。 染色体研究范围也不断扩大， 特别是用于肿瘤分子诊断。 肿瘤细胞的 染色体变化是一非常普遍的现象，可分为原发和继发两类。在肿瘤形成的生物学基础方面， 原发性的染色体变化与引起肿瘤的直接原因有关， 肿瘤细胞中可以发现各种形式的染色体畸 变，如缺失、重复、易位、重排、单体断裂及核内复制等；继发性变化主要是肿瘤细胞核型 的改变。染色体的检测对于肿瘤的诊断、 鉴别诊断、生物学行为判别等方面都重要意义。染 色体的检测方法进展很快，检测的精确率也不断提高，这里主要介绍荧光原位杂交和 PRINS 法。荧光原位杂交技术( fluorescent in situ h

17、ybridiaation,FISH )创建于 1986 年。 1969 年 Gall 和 Pardue 首先应用核素标记核苷酸制备探针，通过放射自显影检测杂交信号。应用核 素标记的探针其敏感性可以检测到中期染色体上几百 碱基的单拷贝靶核苷酸序列，敏感性虽高，但定位不够精确。 FISH 具有探针稳定、操作安 全，可快速、多色显示多个不同探针的杂交信号等优点。 FISH 的灵敏感与探针标记方法和 检测仪器性能有关，探针标记时掺入的修饰核苷酸比例直接影响杂交信号强度。 FISH 探针 一般采用随机引物法或切口翻译法，如将PCR技术引入 FISH 探针标记，可使其灵敏度提高到。应用慢扫描 CCD配合影

18、像处理理软件，增强信噪比，有利于检测微弱信号，如应用TSA系统( tyramide signal amplification )能将杂交信号再放大 1000 倍，可用于单拷贝基因 的定位。 FISH分辨率大约为 1-3Mb, 如果应用强变性剂处理染色体，让DNA分子从蛋白质中分离出来，使双 DNA完全伸展并粘附在玻片上，经引处理后，分辨率可达1-2kb 。还可采用对分裂中期染色体进行显微解剖( microdissect )法以提高分辨率。 FISH 的另一个特点是 可以联合庆用地高辛、生物素等多种标记系统， 在一次杂交中可检测多种探针在染色体上 的位置及探针间的相互关系， 即多色 FISH 或

19、多靶 FISH。FISH 技术已被广泛应用于肿瘤研究 中的基因扩增、 易位重排及缺失等的检测， 在肿瘤诊断和鉴别诊断、 预后和治疗监控等方面 都有重要意义。Klch 等于 1989 年发明了染色体上寡核苷酸引物原位DNA合成技术( oligonucleotide primedin situ DNA synthesis,PRINS) , 并成功地用于染色体特异 卫星 DNA标记。其基本原理是用非标记的寡核苷酸引物同染色体上靶序列特异性地杂交，在 DNA聚合酶作用下， 当引物延伸时，掺入标记的核革酸可直接或间接地检量标记位点。PRINS 技术的优点是不需克隆基因作探针， 且由于杂交反应在前， 标记

20、在后， 故非特异怀背景低。 缺点是信号弱， 灵敏度低， 为克服这一制眯， Terkelsen 等建立了重复引物原位标记技术( repeated PRINS ) , 重复进 行 PRINS反应，使信号号强度明显提高。基于FISH 的原理，发展了多色原位经物标记(multicolor PRINS), 可测定二个以上靶序列在 DNA分子上的相互的位置， 且特异性比 FISH 还高。DNA序列分析( DNA sequencing ) 应用各种突变检测技术检测到的基因突变，最后都需用 序列分析才能确定突变类型及突变位置，其效率可以达到100。现在的测序方法已与经典的方法有了很大的不同， 其基本原理虽仍是双脱氧终止法， 但自动化程度大为提高， 操作更 简便， 测序时间也大大缩短。随着 PCR技术与测序联合使用， 不需经过 M13亚克隆步骤，故 称为直接测序法( direct sequencing,DS )。 DS法测序的模板主主要来源于 PCR，应用不对 称 PCR( asymmetric PCR )和基因组扩增转录同步测序法( genomic amplification with transcript sequencing,GAWTS )等，使单链产物大大增加。近年来，PCR循环测序法的建立，使模板扩增与同步进行， 引物用四种不同前颜色的荧光标记， 使每个样品的四个测序反 应可在一个反应管