




版权说明:本文档由用户提供并上传,收益归属内容提供方,若内容存在侵权,请进行举报或认领
文档简介
1、AMPK 和运动:骨骼肌摄取葡萄糖和胰岛素敏感性AMPK 是一个进化保守的细胞能量感受器,在运动过程中被激 活。激活的 AMPK 可以增加骨骼肌葡萄糖摄取、脂肪酸氧化、线粒 体生物合成和胰岛素敏感性, 这些过程在肥胖患者体内减弱, 从而易 引发胰岛素抵抗。 运动促进葡萄糖摄取的机制涉及 AMPK ,但不明确 AMPK 是否参与运动提高胰岛素敏感性的过程。 了解这些代谢过程将 为治疗肥胖和胰岛素抵抗提供新的契机,故本综述将讨论 AMPK 如 何参与调节骨骼肌代谢(葡萄糖的摄取和胰岛素敏感性) 。AMPK 和运动 运动时,为了给肌肉收缩提供足够的能量,骨骼肌中 ATP 代谢 速度增加(100倍)。
2、在这种情况下,AMP和ADP浓度迅速增加, 而 ATP 水平只略有下降。 AMPK 是细胞能量感受器,能被 AMP 和 ADP 激活,与此相一致,啮类动物和人类的骨骼肌中 AMPK 在运动 过程中被激活 2-5。运动通过 AMPK 介导的胰岛素非依赖性机制调节葡萄糖摄取 6。 重要的是,在 2型糖尿病患者的骨骼肌中,运动调节 GLUT4 转运的 通路没有受损 7,并且,运动可以提高胰岛素的敏感性。由于这些原 因,运动通常被建议用于预防和治疗胰岛素抵抗。因此,理解运动调 节葡萄糖的摄取潜在机制是一个重要的研究领域。骨骼肌摄取葡萄糖的调节 胰岛素促进骨骼肌摄取葡萄糖 胰岛素生物学效应通过信号转导而
3、 实现,随着分子生物学的发展, 人们对胰岛素信号转导途径中的的系列级联反应逐步明确。简言之,胰岛素通过 IR IRS PI3K Akt/PKC /AS160信号通路调节GLUT4转运到细胞膜上,从而促进葡萄糖的摄取。运动促进骨骼肌摄取葡萄糖同胰岛素,运动也是通过调节 GLUT4转运到质膜和横小管,增加骨骼肌葡萄糖摄取。但是,在骨骼肌中, 胰岛素和运动/收缩通过不同的机制调节对葡萄糖的摄取。此观点来 自于以下发现:1)PI3激酶抑制剂渥曼霉素(Wortmannin)抑制胰岛 素刺激的葡萄糖摄取,但不抑制收缩刺激的葡萄糖摄取。 收缩不促进 IRS-1自身磷酸化或增加PI3激酶的活性8-11。2)基
4、因敲除主要的胰 岛素信号蛋白IRS1和AKT2,不影响收缩介导的葡萄糖摄取42-43。3) 胰岛素与收缩刺激葡萄糖的摄取有叠加作用14-15。4)胰岛素抵抗患 者和啮齿动物,收缩介导的葡萄糖摄取不受影响16-19。相反,也有研 究发现离体骨骼肌收缩使Akt磷酸化水平上升,并且Goodyear等人 报道,PI3激酶抑制剂Wortmannin和LY294002可抑制收缩引起的 Akt活性增加。究竟运动/骨骼肌收缩是否激活PI3K-Akt还有待进一 步的研究证实。慢性运动训练虽然有研究表明肥胖者体内的 AMPK活性和蛋白表达降低,但 慢性运动训练仍能增强 AMPK的蛋白表达和活性30。因此,AMPK
5、 可能通过TBC1D1和TBC1D4的磷酸化,增强胰岛素的敏感性。基 于人类和大鼠的研究都表明,慢性运动训练增加了TBC1D4的蛋白表达和PAS磷酸化,这一结果支持了上述观点。正常情况下,肥胖2型糖尿病患者骨骼肌中 TBC1D4 的磷酸化被削弱,但 10 周的耐力训 练可以使 TBC1D4 的磷酸化恢复到非糖尿病患者的水平 31 。目前尚 不知 TBC1D1 是否有类似的发现。有趣的是,旨在为肥胖者减重的 两周的饮食干预改善了胰岛素敏感性,却没有影响 TBC1D1 的磷酸 化。而相反研究报道,饮食干预的确增加了 TBC1D1 Ser231和Ser660, 却没有像锻炼那样增加Ser700或PA
6、S的磷酸化32。肥胖的 2 型糖尿病患者的耐力训练和健康男性的耐力训练都导 致了 AMPKy3表达减少33。而敲除丫 3亚基则会损害锻炼后的糖元合 成。一种可能的解释是,丫 3表达的减少是一种对运动的应激反应, 提高了机体氧化能力和脂肪氧化, 而增加糖原利用率。 近期有研究认 为,考虑到丫 3的表达减弱,AMPK活性水平的增加可能是由于与 丫1 有关的复合物的形成。结论总之, AMPK 在运动调节葡萄糖摄取过程中起重要作用, 并可能 参与急性和慢性两种运动的胰岛素增敏作用。 许多研究已经提出了一 些介导运动的胰岛素增敏作用的可能机制,但明确定义 AMPK 在其 中的作用需要进一步的研究。 运动
7、为健康提供无限益处, 是预防和治 疗肥胖诱导的胰岛素抵抗最经济有效的方法之一。 因此,未来关于运 动的胰岛素增敏作用机制的研究至关重要, 它可以为相关疾病的药物 和非药物(如运动)治疗的发展提供新的策略。参考文献1 Sahlin K, Tonkonogi M and Soderlund K. Energy supply and musclefatigue in humansJ. Acta Physiol Scand, 1998, 162:261-266.2 Hayashi T, Hirshman MF, Kurth EJ, Winder WW and Goodyear LJ. Evidence
8、 for 5' AMP-activated protein kinase mediation of the effect of muscle contraction on glucose transportJ. Diabetes, 1998, 47:1369-1373.3 Hutber CA, Hardie DG and Winder WW. Electrical stimulation inactivates muscle acetyl-CoA carboxylase and increases AMP-activated protein kinaseJ. Am J Physiol,
9、 1997, 272:E262-266.4 Ihlemann J, Ploug T, Hellsten Y and Galbo H. Effect of tension on contraction-induced glucose transport in rat skeletal muscleJ. Am J Physiol, 1999, 277:E208-214.5 Rasmussen BB, Hancock CR and Winder WW. Postexercise recovery of skeletal muscle malonyl-CoA, acetyl-CoA carboxyla
10、se, and AMP-activated protein kinaseJ. J Appl Physiol, 1998, 85:1629-1634.6 O'Neill HM, Maarbjerg SJ, Crane JD, JeppesenJ, Jorgensen SB, Schertzer JD, Shyroka O, Kiens B, van Denderen BJ, Tarnopolsky MA, Kemp BE, Richter EA and Steinberg GR. AMP-activated protein kinase (AMPK) beta1beta2 muscle
11、null mice reveal an essential role for AMPK in maintaining mitochondrial content and glucose uptake during exerciseJ. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011,108:16092-16097.7 Kennedy JW, Hirshman MF, Gervino EV, Ocel JV, Forse RA, Hoenig SJ, Aronson D, Goodyear LJ and Horton ES. Acute exercise induces GLUT4
12、 translocation in skeletal muscle of normal human subjects and subjects with type 2 diabetesJ. Diabetes, 1999, 48:1192-1197.8 Yeh JI, Gulve EA, Rameh L and Birnbaum MJ. The effects of wortmannin on rat skeletal muscle. Dissociation of signaling pathways for insulin- and contraction-activated hexose
13、transportJ. J Biol Chem, 1995, 270:2107-2111.9 Meirhaeghe A, Crowley V, Lenaghan C, Lelliott C, Green K, Stewart A, Hart K, Schinner S, Sethi JK, Yeo G, Brand MD, Cortright RN, O'Rahilly S, Montague C and Vidal-Puig AJ. Characterization of the human, mouse and rat PGC1 beta (peroxisome-prolifera
14、tor-activated receptor-gamma co-activator 1 beta) gene in vitro and in vivoJ. Biochem J, 2003, 373:155-165.10 Lund S, Holman GD, Schmitz O and Pedersen O. Contraction stimulates translocation of glucose transporter GLUT4 in skeletal muscle through a mechanism distinct from that of insulinJ. Proc Nat
15、l Acad Sci U S A, 1995, 92:5817-5821.11 Brozinick JT, Jr. and Birnbaum MJ. Insulin, but not contraction, activates Akt/PKB in isolated rat skeletal muscleJ. J Biol Chem, 1998, 273:14679-14682.12 Dumke CL, Wetter AC, Arias EB, Kahn CR and Cartee GD. Absence of insulin receptor substrate-1 expression
16、does not alter GLUT1 or GLUT4 abundance or contraction-stimulated glucose uptake by mouse skeletal muscleJ. Horm Metab Res, 2001, 33:696-700.13 Sakamoto K, Arnolds DE, Fujii N, Kramer HF, Hirshman MF and Goodyear LJ. Role of Akt2 in contraction-stimulated cell signaling and glucose uptake in skeleta
17、l muscleJ. Am J Physiol Endocrinol Metab, 2006, 291:E1031-1037.14 Constable SH, Favier RJ, Cartee GD, Young DA and Holloszy JO. Muscle glucose transport: interactions of in vitro contractions, insulin, and exerciseJ. J Appl Physiol, 1988, 64:2329-2332.15 Gao J, Ren J, Gulve EA and Holloszy JO. Addit
18、ive effect of contractions and insulin on GLUT-4 translocation into the sarcolemmaJ. J Appl Physiol, 1994, 77:1597-1601.16 Martin IK, Katz A and Wahren J. Splanchnic and muscle metabolism during exercise in NIDDM patientsJ. Am J Physiol, 1995, 269:E583-590.17 Han X, Ploug T and Galbo H. Effect of di
19、et on insulin- and contraction-mediated glucose transport and uptake in rat muscleJ. Am J Physiol, 1995, 269:R544-551.18 King PA, Betts JJ, Horton ED and Horton ES. Exercise, unlike insulin, promotes glucose transporter translocation in obese Zucker rat muscleJ. Am J Physiol, 1993, 265:R447-452.19 B
20、rozinick JT, Jr., Etgen GJ, Jr., Yaspelkis BB, 3rd and Ivy JL. Contraction-activated glucose uptake is normal in insulin-resistant muscle of the obese Zucker ratJ. J Appl Physiol, 1992, 73:382-387.20 Arias EB, Kim J, Funai K and Cartee GD. Prior exercise increases phosphorylation of Akt substrate of
21、 160 kDa (AS160) in rat skeletal muscleJ. Am J Physiol Endocrinol Metab, 2007, 292:E1191-1200.21 Funai K, Schweitzer GG, Castorena CM, Kanzaki M and Cartee GD. In vivo exercise followed by in vitro contraction additively elevates subsequent insulin-stimulated glucose transport by rat skeletal muscle
22、J. Am J Physiol Endocrinol Metab, 2010, 298:E999-1010.22 Howlett KF, Mathews A, Garnham A and Sakamoto K. The effect of exercise and insulin on AS160 phosphorylation and 14-3-3 binding capacity in human skeletal muscleJ. Am J Physiol Endocrinol Metab, 2008, 294:E401-407.23 Pehmoller C, Treebak JT, B
23、irk JB, Chen S, Mackintosh C, Hardie DG, Richter EA and Wojtaszewski JF. Genetic disruption of AMPK signaling abolishes both contraction- and insulin-stimulated TBC1D1 phosphorylation and 14-3-3 binding in mouse skeletal muscleJ. Am J Physiol Endocrinol Metab, 2009, 297:E665-675.24 Jakobsen SN, Hard
24、ie DG, Morrice N and Tornqvist HE.5'-AMP-activated protein kinase phosphorylates IRS-1 on Ser-789 in mouse C2C12 myotubes in response to 5-aminoimidazole-4-carboxamide ribosideJ. J Biol Chem, 2001, 276:46912-46916.25 Zakikhani M, Blouin MJ, Piura E and Pollak MN. Metformin and rapamycin have dis
25、tinct effects on the AKT pathway and proliferation in breast cancer cellsJ. Breast Cancer Res Treat, 2010, 123:271-279.26 Chopra I, Li HF, Wang H and Webster KA. Phosphorylation of the insulin receptor by AMP-activated protein kinase (AMPK) promotes ligand-independent activation of the insulin signa
26、lling pathway in rodent muscleJ. Diabetologia, 2012, 55:783-794.27 Kamon J, Yamauchi T, Terauchi Y, Kubota N and Kadowaki T. The mechanisms by which PPARgamma and adiponectin regulate glucose and lipid metabolismJ. Nihon Yakurigaku Zasshi, 2003, 122:294-300.28 Yamauchi T, Kamon J, Minokoshi Y, Ito Y
27、, Waki H, Uchida S, Yamashita S, Noda M, Kita S, Ueki K, Eto K, Akanuma Y, Froguel P, Foufelle F, Ferre P, Carling D, Kimura S, Nagai R, Kahn BB and Kadowaki T. Adiponectin stimulates glucose utilization and fatty-acid oxidation by activating AMP-activated protein kinaseJ.Nat Med, 2002, 8:1288-1295.29 Geiger PC, Hancock C, Wright DC, Han DH and Holloszy JO. IL-6 increases muscle insulin sensitivity only at superphysiological levelsJ. Am J Physiol Endocrinol Metab, 2007, 292:E1842-1846.30 Lee-Young RS, Canny BJ, Myers DE and McConell GK. AMPK activatio
温馨提示
- 1. 本站所有资源如无特殊说明,都需要本地电脑安装OFFICE2007和PDF阅读器。图纸软件为CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.压缩文件请下载最新的WinRAR软件解压。
- 2. 本站的文档不包含任何第三方提供的附件图纸等,如果需要附件,请联系上传者。文件的所有权益归上传用户所有。
- 3. 本站RAR压缩包中若带图纸,网页内容里面会有图纸预览,若没有图纸预览就没有图纸。
- 4. 未经权益所有人同意不得将文件中的内容挪作商业或盈利用途。
- 5. 人人文库网仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对用户上传分享的文档内容本身不做任何修改或编辑,并不能对任何下载内容负责。
- 6. 下载文件中如有侵权或不适当内容,请与我们联系,我们立即纠正。
- 7. 本站不保证下载资源的准确性、安全性和完整性, 同时也不承担用户因使用这些下载资源对自己和他人造成任何形式的伤害或损失。
最新文档
- 陕西能源职业技术学院《室外空间设计方法》2023-2024学年第二学期期末试卷
- 小学生国防军事知识
- 2025年江西省赣州市大余县部分学校中考物理模拟试卷(二)(含解析)
- 学生招生助理培训
- 2025年济南天桥区九年级中考历史一模考试试题(含答案)
- 作坊小厂转让合同标准文本
- 摩托艇运动和比赛的魅力
- 入网合同属于合同标准文本
- 供暖锅炉设备出租合同范例
- 公司车辆销售合同样本
- 江苏省淮安市洪泽区2024-2025学年七年级下学期3月调研地理试题(含答案)
- 黄金卷02(广州专用)-【赢在中考·黄金预测卷】2025年中考数学模拟卷(考试版)
- 2025-2030年班用帐篷项目投资价值分析报告
- 生物会考试题及答案
- 2025年国家粮食和物资储备局垂直管理系统事业单位招聘701人历年自考难、易点模拟试卷(共500题附带答案详解)
- 血管活性药物静脉输注护理解读
- (一模)赣州市2025年高三年级摸底考试地理试卷(含答案详解)
- PLC应用技术课件 任务20 S7-1200 PLC控制步进电机
- 2025至2030年中国合成闸瓦数据监测研究报告
- 射线无损探伤合同范本
- 创意活动策划方案及执行流程
评论
0/150
提交评论