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1、实验九 蛋白质浓度的测定(四考马斯亮蓝染色法 目的要求 学习考马斯亮蓝(Coomassie Brilliant Blue)法测定蛋白质浓度的原理和方法。 实验原理 考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度,是利用蛋白质染料结合的原理,定量的测定微量蛋白浓度的快速、灵敏的方法。考马斯亮蓝G250存在着两种不同的颜色形式,红色和蓝色。它和蛋白质通过范德华力结合,在一定蛋白质浓度范围内,蛋白质和染料结合符合比尔定律(Beers law)。此染料与蛋白质结合后颜色有红色形式和蓝色形式,最大光吸收由465nm变成595nm,通过测定595nm处光吸收的增加量可知与其结合蛋白质的
2、量。蛋白质和染料结合是一个很快的过程,约2min即可反应完全,呈现最大光吸收,并可稳定1h,之后,蛋白质染料复合物发生聚合并沉淀出来。蛋白质染料复合物具有很高的消光系数,使得在测定蛋白质浓度时灵敏度很高,在测定溶液中含蛋白质5µL/ml时就有0.275光吸收值的变化,比Lowry法灵敏4倍,测定范围为10100µg蛋白质,微量测定法测定范围是110µg蛋白质。此反应重复性好,精确度高,线性关系好。标准曲线在蛋白质浓度较大时稍有弯曲,这是由于染料本身的两种颜色形式光谱有重叠,试剂背景值随更多染料与蛋白质结合而不断降低,但直线弯曲程度很轻,不影响测定。此方法干扰物少,
3、研究表明:NaCl,KCl,MgCl2,乙醇,(NH4)2SO4无干扰。强碱缓冲液在测定中有一些颜色干扰,这可以用适当的缓冲液对照扣除其影响。Tris,乙酸,2巯基乙醇,蔗糖,甘油,EDTA及微量的去污剂如Triton X100,SDS,玻璃去污剂有少量颜色干扰,用适当的缓冲液对照很容易除掉。但是,大量去污剂的存在对颜色影响太大而不易消除。 试剂与器材 一、试剂考马斯亮蓝试剂:考马斯亮蓝G250 100mg溶于50ml95%乙醇中,加入100ml85%磷酸,用蒸馏水稀释至1000ml,滤纸过滤。最终试剂中含0.01%(W/V考马斯亮蓝G250,4.7%(W/V乙
4、醇。 二、标准和待测蛋白质溶液1标准蛋白质溶液结晶牛血清蛋白,预先经微量凯氏定氮法测定蛋白氮含量,根据其纯度用0.15mol/LNaCl配制成1mg/ml,0.1mg/ml蛋白溶液。2未知蛋白质溶液。 三、器材试管及试管架, 移液管(0.1ml及5ml),UV2000型分光光度计。 操作方法 一、标准法制定标准曲线取14支试管,分两组按下表a平行操作。绘制标准曲线:以A595nm为纵坐标,标准蛋白含量为横坐标,在坐标纸上绘制标准曲线。表a试管编号01234561mg/ml标准蛋白溶液/ml00.010.020.030.040.050.060.
5、15mol/L NaCl/ml0.10.090.080.070.060.050.04考马斯亮蓝试剂/ml5ml摇匀,1h内以0号管为空白对照,在595nm处比色A595nm 二、微量法制定标准曲线取12支试管,分两组按下表b平行操作。绘制标准曲线:以A595nm为纵坐标,标准蛋白含量为横坐标,在坐标纸上绘制标准曲线。表b试管编号0123451mg/ml标准蛋白溶液/ml00.010.020.030.040.050.15mol/L NaCl/ml0.10.090.080.070.060.05考马斯亮蓝试剂/ml5ml摇匀,1h内以0号管为空白对照,在595nm处比色A595
6、nm 三、未知样品蛋白质浓度测定测定方法同上,取合适的未知样品体积,使其测定值在标准曲线的直线范围内。根据所测定的A595nm值,在标准曲线上查出其相当于标准蛋白的量,从而计算出未知样品的蛋白质浓度(mg/ml)。 注意事项 (1) (1) 如果测定要求很严格,可以在试剂加入后的520min内测定光吸收,因为在这段时间内颜色是最稳定的。(2) (2) 测定中,蛋白染料复合物会有少部分吸附于比色杯壁上,实验证明此复合物的吸附量是可以忽略的。测定完后可用乙醇将蓝色的比色杯洗干净。 思考题:根据下列所给的条件和要求,选择一种或几种常用蛋白质定量方法测定蛋白质的浓度:(1) (
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