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文档简介

1、1,PPT学习交流,实例图解简并引物设计,一、序言 设计一对合适的引物是PCR 扩增目的基因成功的关键,但许多人往往过度依赖 Primer Premier(以下简称PP)或Oligo 等引物设计软件,有时候引物没设计成,却身陷软件之中无法自拔。其实,不论特异性引物或简并引物,只要掌握了几个关键点,手动也可以设计出一对好引物。如果不是大批量设计引物或设计复杂的引物序列,下面的四个常用工具即可轻松胜任引物设计任务。下文以马铃薯Y 病毒CP 基因简并引物设计为示例,分享一些个人经验,希望对初学者能起个抛砖引玉作用。受专业领域及水平所限,文中有不当之处,敬请各位同仁、同学批评指正。 二、相关工具 ME

2、GA5-多重序列比对、选取基因区域、序列编辑; DNAMAN8-检测两引物的互补性; Oligo Calc-评估引物的属性; Web Logo 3-直观显示简并碱基。,2,PPT学习交流,三、基本原则 设计一对好的引物,归结起来就是 5端引物、3端引物之间以及两者与模板的关系处理得恰到好处: 两引物的序列要与模板的序列紧密互补; 两引物不能在模板的非目的位点发生错配; 两引物之间尽量减少二聚体或发夹结构生成。 四、延伸原则 引物长度:常用为 18-27bp,最大不可超过 38bp,否则容易导致延伸温度过高,不适合 DNA 聚合酶反应; GC 含量:一般介于 40%-60%之间,且两个引物之间的

3、 GC 含量相差不能过于悬殊; 碱基分布:随机分布最佳,但避免连续的 GC,GC 富集区容易导致错误引发反应。,3,PPT学习交流,五、特别注意,5端引物的作用主要限定 PCR 产物的长度,对扩增特异性影响不大;引物的延伸是从3端开始的,所以 3端引物是影响特异性扩增的最关键因素,因此,在实际设计过程中,设计3端引物时,需要综合考虑以下几个内容: 不要终止于密码子的第 3 位; 末位碱基避免使用碱基 A; 避免出现3 个以上连续的G 或C,如GCG 或CCC 或GGG; G 的绝对值不可超过 9; 与非特异扩增的序列同源性不能超过70%或有连续8 个互补碱基源; 不能进行任何修饰。,4,PPT

4、学习交流,六、设计流程,5,PPT学习交流,七、示例背景,马铃薯Y 病毒(Potato virus Y,PVY)是侵染马铃薯、烟草、辣椒等茄科作物并造成严重危害的病毒之一,广泛分布全球各马铃薯种植区。RT-PCR 技术具有高度的特异性和灵敏性等特点,已经成为 PVY 检测最常见的方法。但由于PVY 株系分化严重,不断有新的重组株系产生,单一的特异性引物无法适应PVY 不同株系的检测需求,需要设计一对简并引物以能够满足生产上的检测需求。,6,PPT学习交流,八、详细图解,1. 序列准备: (1)GenBank 下载PVY 全基因组序列; (2)由于基因序列比较大,且数量多,推荐用MAFFT 多重

5、序列比对; (3)扩增片段区域选择,CP 基因长度及位置如下图所示:,7,PPT学习交流,先将光标定位在第一条序列任意位置,然后在左下角Site处直接输入CP 基因上游分界点位置(8391)后回车。接着点击“Speicaes/Abbrv”和8391 那一列的交界点时按下键盘上“Shift”不放,移动光标到“1”那一列,此时点击鼠标右键“Delete”删除冗余序列。,8,PPT学习交流,裁切后得到CP 基因编码区序列,“Export Alignment”导出CP 基因序列(推荐fasta 格式)。,9,PPT学习交流,2. 引物设计,推荐先设计3端引物,至于原因,上面的【特别注意】中已提到,这里

6、不再赘述。 (1)选择引物序列 综合考虑引物设计原则及特别注意,在CP 基因3端位置选取一段合适的序列(784-803bp),804bp 位置为A 且是第三个密码子位置,所以弃去末位的 A 碱基。,10,PPT学习交流,PS:是否位于密码子的第3 位,可以通过“Tranlated Protein Sequences”-“DNA sequences”切换查看,如右图,CP 基因的末端3 个碱基是终止密码子所在的位置,A 是第三位密码子。,11,PPT学习交流,(2)生成 Seq Logo 选定序列后,参考上述步骤,删除冗余序列,保留CP 基因3端序列,同样导出为Fasta文件,将序列粘贴入Web

7、 Logo3的文本框内或直接上传序列文件,设置相关参数后点击“Create”生成 Seq Logo 格式的文件CP-3.fas。 参数设置: “Output format”(输出格式)推荐用“PDF”,“Color scheme”(颜色方案)推荐用“Classic (NA)”,设置完毕,点击右下角“Create Logo“即可得下图的Seq Logo 格式文件。,12,PPT学习交流,通过Web Logo 生成的多重比对图片可以很直观得到3端序列为CTTGGAGT(C/T/G)AA(G/A)AACATGTG,查询简并碱基代码表(下图),可知C/T/G=B,G/A=R,简并度=3 2 =6,整理

8、后3端序列为 CTTGGAGTBAARAACATGTG,故而需要合成的3端引物序列: CACATGTTYTTVACTCCAAG (与原序列是反向互补关系)。,简并碱基代码,13,PPT学习交流,3. 质量评估,(1)参数评估 将初步得到的引物序列,粘贴入Oligo Calc 的文本框内,按下“Calculate”按钮,得到引物的相关参数,如:长度、GC 含量、Tm 值等信息。 (2)自身互补性(Check Self-Complementarity) 点击“Check Self-Complementarity”,检测引物自身互补性,主要查看“Potential hairpin formation

9、”、“3 Complementarity”、“All potential self-annealing sites are marked in red (allowing 1 mis-match)”下方显示内容,如果三项均为“none”,则说明引物自身不会形成发夹结构且引物自身不会互补,引物没问题!,14,PPT学习交流,15,PPT学习交流,(3)BLAST 比对回检,点击“Blast”可以对引物进行BLAST 比对检测,结果显示,都是PVY CP 基因相关的序列,表明所设计的引物特异性良好。,16,PPT学习交流,17,PPT学习交流,(4)两引物互补性检查,同样方式,得到5端序列:GSA

10、AAYGAYACAATYGATGC,根据引物设计原则,需要检测两引物之间是否存在序列互补。 打开DNAMAN,依次在“Primer”-“Load primer”,粘贴任意一端引物序列,如:5端序列-GSAAAYGAYACAATYGATGC,确定。,18,PPT学习交流,19,PPT学习交流,接着,在“Primer”-“Two primers Complementarity”-“Second Primer From Input”,粘贴入另一端序列,这里为3端引物序列:CACATGTTYTTVACTCCAAG,如下图:,20,PPT学习交流,结果显示,两引物间仅有3 个碱基互补,且自由能仅为1.8

11、 Kcal/mol。,21,PPT学习交流,(5)实验验证,PCR 扩增采用的 50L 反应体系为:10 TransTaq HiFi Buffer II 5 L,2.5nM dNTPs 4 L, 5端引物(10 mol/L)2 L,3端引物(10 mol/L)2 L,ddH2O 34.75 L,TransTaq HiFi Polymerase(5 U/L)0.25 L,cDNA 2 L。 PCR 扩增程序条件为:94预变性5min,94变性30s,55复性30s,72延伸1min,共30 个循环,最后一轮循环后72延伸10min。反应结束后,1%琼脂糖凝胶电泳检测PCR扩增产物,如下图所示:,22,PPT学习交流,M.DNA 分子量标准(100bp);泳道1-5:PVY 的不同株系(C、O、N、NTN、N-Wi);泳道6-7:阴性对照(健康马铃薯)和空白对照;泳道8-12:PVX、PVM、PVA、PVS、PLRV,23,PPT学习交流,九、延伸阅读,1 吴祖建, 高芳銮, 沈建国. 生物信息学分析实践. 科学出版社, 2010

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