中山大学质粒提取技巧及常见问题分析2讲课文档

中山大学课件质粒提取技巧及常见问题分析第一页，共30页。（优选）中山大学课件质粒提取技巧及常见问题分析第二页，共30页。分子生物学实验所需基本工具高效菌株（E.Coli）：DH10B，Top10,DH5,XL-1blue,HB101等。各种基因（载体，质粒）超纯水（三蒸水）高效酶类（限制酶，连接酶，Taq酶，pfu等）分析纯（或化学纯）生化试剂。经典的分子生物学工具书：分子克隆（目前出到第三版），精编分子生物学实验指南（目前出到第四版）等。各种仪器设备：离心机、培养箱、PCR仪、灭菌锅等；第三页，共30页。基因（质粒）的获取1、从其它实验室获得；（首选）2、从商业公司购买；（次选）3、自己克隆；（末选）（1）RT-PCR克隆；（有原始材料）（2）合成全长基因；（无原始材料）（3）合成片段、拼接；（无原始材料）第四页，共30页。

什么是质粒？质粒是独立于染色体外的DNA分子，其大小范围在１KB至２００KB以上不等。大多数来自细菌细胞的质粒是双链、共价闭合的环状分子，以超螺旋形式存在。至少在实验室，大多数质粒是通过写信获取而并不需要自己动手构建。所有的质粒，无论来自于商家还是科技工作者，在用于实验以前一定要进行验证！第五页，共30页。获得基因（质粒）后的处理方法：1、如果得到的是质粒DNA，一般是沉淀在７０％乙醇中的DNA，将其离心并用TE缓冲液（PH８.０）溶解，转化大肠杆菌菌株，从转化子中提取质粒DNA，并进行酶切鉴定和琼脂糖电泳．根据赠予者或发表的文献中所提供的图谱，表交所观察到的条带的大小与预期中是否相符。2、如果质粒保存在细菌菌株中，通常以真空密闭的冻干粉或涂在无菌滤纸片上来邮寄。将上述菌种取少量，转移到３mL含有合适抗生素的液体培养基中，然后在合适温度下剧烈振荡１８－２４小时。待液体培养物长好后，在含合适抗生素和适当的必要添加物的琼脂糖培养皿中划线培养，于合适的温度保温过夜。检查皿中所有的克隆，确定其在外形和气味上是否与大肠杆菌相同（酸臭味，酵母土腥味或酒香味，致病菌不要闻！外形规则的圆形，半透明或微透明）。然后将分离的克隆进行小规模液体培养，提取质粒，用不同的限制酶消化质粒，并用琼脂糖凝胶电泳。根据赠予者或发表的文献中所提供的图谱，比较所观察到的条带的大小与预期中是否相符。3、大肠杆菌和酵母菌株必须保存在－70˚C冰箱中，菌种中必须含有15％以上（15％－20％）的甘油。。第六页，共30页。实验室常用提取质粒的方法：1、碱法提取；2、煮沸法提取；3、超快提取法（纯度不高，筛选、鉴定）；4、高纯提取法（Kit）第七页，共30页。碱法提取质粒的原理将细菌悬浮液暴露于高pH的强阴离子洗涤剂中，会使细胞壁破裂，染色体DNA和蛋白质变性，将质粒DNA释放到上清中．尽管碱性溶液使碱基配对完全破坏，闭环的质粒DNA双链仍不会彼此分离，因为它们在拓扑学是相互缠绕的．只要OH-处理的强度不要太过，当pH值恢复到中性时，DNA双链就会再次形成．在裂解过程中，细菌蛋白质、破裂的细胞壁和变性的染色体DNA会相互缠绕成大型复合物，后者被十二烷基硫酸盐（SDS）包盖。当用钾离子取代钠离子时，这些复合物就会从溶液中有效地沉淀下来。离心除去变性剂后，就可以从上清中回收复性的质粒DNA。第八页，共30页。煮沸法原理这个方法是将细菌悬浮于含有TritonX-100和能消化细胞壁的溶菌酶的缓冲液中，然后加热到１００C使其裂解。加热除了破坏细菌外壁，还有助于解开DNA链的碱基配对，并使蛋白质和染色体DNA变性。但是闭环质粒DNA由于具有互相缠绕的拓扑结构而不会分离。当温度下降后，闭环DNA的碱基又各就各位，形成超螺旋分子。离心除去变性的染色体DNA和蛋白质，就可从上清中回收质粒DNA。第九页，共30页。提质粒方法的选择从经济的角度讲，碱裂解法是首选，一般不建议用煮沸法，除非获得质粒的目的仅仅是初步的鉴定，而不是用于构建载体。碱裂解法所获得的质粒经酚：氯仿纯化后可满足绝大多数的分子生物学实验要求。试剂盒提取的质粒在纯度上比碱法更好，但比较昂贵。我们实验室建立的超快提质粒法一般只适用于大量转化子或质粒文库的快速筛选，一般不作为质粒制备的方法推荐。结合碱裂解法和试剂盒法，我发展出一种大量制备高纯度质粒的方法，将在本次课的后面介绍。第十页，共30页。碱法质粒抽提用到三种溶液：溶液I，50mM葡萄糖/25mMTris-Cl/10mMEDTA，pH8.0；溶液II，0.2NNaOH/1%SDS；溶液III，3M醋酸钾/2M醋酸。

第十一页，共30页。溶液I的作用分析

让我们先来看看溶液I的作用。任何生物化学反应，首先要控制好溶液的pH，因此用适当浓度的和适当pH值的Tris-Cl溶液，是再自然不过的了。那么50mM葡萄糖是干什么的呢？说起来不可思议，加了葡萄糖后最大的好处只是悬浮后的大肠杆菌不会快速沉积到管子的底部。因此，如果溶液I中缺了葡萄糖其实对质粒的抽提本身而言，几乎没有任何影响。所以说溶液I中葡萄糖是可缺的。那么EDTA呢？大家知道EDTA是Ca2+和Mg2+等二价金属离子的螯合剂，配在分子生物学试剂中的主要作用是：抑制DNase的活性，和抑制微生物生长。在溶液I中加入高达10mM的EDTA，无非就是要把大肠杆菌细胞中的所有二价金属离子都螯合掉。如果不加EDTA，其实也没什么大不了的，只要不磨洋工，只要是在不太长的时间里完成质粒抽提，就不用怕DNA会迅速被降解，因为最终溶解质粒的TE缓冲液中有EDTA。如果哪天你手上正好缺了溶液I，可不可以抽提质粒呢？实话告诉你，只要用等体积的水，或LB培养基来悬浮菌体就可以了。有一点不能忘的是，菌体一定要悬浮均匀，不能有结块。

第十二页，共30页。溶液II的作用分析轮到溶液II了。这是用新鲜的0.4N的NaOH和2％的SDS等体积混合后使用的。要新从浓NaOH稀释制备0.4N的NaOH，无非是为了保证NaOH没有吸收空气中的CO2而减弱了碱性。很多人不知道其实破细胞的主要是碱，而不是SDS，所以才叫碱法抽提。事实上NaOH是最佳的溶解细胞的试剂，不管是大肠杆菌还是哺乳动物细胞，碰到了碱都会几乎在瞬间就溶解，这是由于细胞膜发生了从bilayer（双层膜）结构向micelle（微囊）结构的相变化所导致。用了不新鲜的0.4NNaOH，即便是有SDS也无法有效溶解大肠杆菌（不妨可以自己试一下），自然就难高效率抽提得到质粒。如果只用SDS当然也能抽提得到少量质粒，因为SDS也是碱性的，只是弱了点而已。很多人对NaOH的作用误以为是为了让基因组DNA变性，以便沉淀，这是由于没有正确理解一些书上的有关DNA变性复性的描述所导致。有人不禁要问，既然是NaOH溶解的细胞，那为什么要加SDS呢？那是为下一步操作做的铺垫。这一步要记住两点：第一，时间不能过长，千万不要这时候去接电话，因为在这样的碱性条件下基因组DNA片断会慢慢断裂；第二，必须温柔混合（象对待女孩子一样），不然基因组DNA也会断裂。基因组DNA的断裂会带来麻烦。注意：往菌液中加入溶液II是碱法提质粒的关键步骤甚至是决定步骤，假如这一步失败了，就不用继续下面的步骤了，可以停下来准备下一次质粒提取实验了。思考题：如何判断这一步是成功还是失败呢？第十三页，共30页。溶液III的作用分析每个人都知道，溶液III加入后就会有大量的沉淀，但大部分人却不明白这沉淀的本质。最容易产生的误解是，当SDS碰到酸性后发生的沉淀。如果你这样怀疑，往1%的SDS溶液中加如2M的醋酸溶液看看就知道不是这么回事了。大量沉淀的出现，显然与SDS的加入有关系。如果在溶液II中不加SDS会怎样呢，也会有少量的沉淀，但量上要少得多，显然是盐析和酸变性沉淀出来的蛋白质。既然SDS不是遇酸发生的沉淀，那会不会是遇盐发生的沉淀呢？在1％的SDS溶液中慢慢加入5N的NaCl，你会发现SDS在高盐浓度下是会产生沉淀的。因此高浓度的盐导致了SDS的沉淀。但如果你加入的不是NaCl而是KCl，你会发现沉淀的量要多的多。这其实是十二烷基硫酸钠（sodiumdodecylsulfate）遇到钾离子后变成了十二烷基硫酸钾（potassiumdodecylsulfate,PDS），而PDS是水不溶的，因此发生了沉淀。如此看来，溶液III加入后的沉淀实际上是钾离子置换了SDS中的钠离子形成了不溶性的PDS，而高浓度的盐，使得沉淀更完全。大家知道SDS专门喜欢和蛋白质结合，平均两个氨基酸上结合一个SDS分子，钾钠离子置换所产生的大量沉淀自然就将绝大部分蛋白质沉淀了，让人高兴的是大肠杆菌的基因组DNA也一起被共沉淀了。这个过程不难想象，因为基因组DNA太长了，长长的DNA自然容易被PDS给共沉淀了，尽管SDS并不与DNA分子结合。第十四页，共30页。细菌的收获和裂解（1）

细菌的收获可通过离心来进行，而细菌的裂解则可以采用多种方法中的任意一种，这些方法包括用非离子型或离子型去污剂、有机溶剂或碱进行处理及用加热处理等。选择哪一种方法取决于3个因素：质粒的大小、小肠杆菌菌株及裂解后用于纯化质粒DNA的技术。尽管针对质粒和宿主的每一种组合分别提出精确的裂解条件不切实际，但仍可据下述一般准则来选择适当方法，以取得满意的结果。

1)大质粒(大于15kb)容易受损，故应采用温和裂解法从细胞中释放出来。将细菌悬于蔗糖等渗溶液[50mMTris-Cl(pH8.0),10%(m/V蔗糖)]中，然后用溶菌酶和EDTA进行处理，破坏细胞壁和细胞外膜，再加入SDS一类去污剂溶解球形体。这种方法最大限度地减小了从具有正压的细菌内部把质粒释放出来所需要的作用力。

2)可用普通的碱裂解法或更剧烈的方法来分离小质粒。在加入EDTA后，有时还在加入溶菌酶后让细菌暴露于去污剂，通过煮沸或碱处理使之裂解。这些处理可破坏碱基配对，故可使宿主的线状染色体DNA变性，但闭环质粒DNA链由于处于拓扑缠绕状态而不能彼此分开。当条件恢复正常时，质粒DNA链迅速得到准确配置，重新形成完全天然的超螺旋分子。3)一些大肠杆菌菌株(如HB101的一些变种衍生株)用去污剂或加热裂解时可释放相对大量的糖类，当随后用氯化铯－溴化乙锭梯度平衡离心进行质粒纯化时它们会惹出麻烦。糖类会在梯度中紧靠超螺旋质粒DNA所占位置形成一致密的、模糊的区带。因此很难避免质粒DNA内污染有糖类，而糖类可抑制多种限制酶的活性。故从诸如HB101和TG1等大肠杆菌蓖株中大量制备质粒时，不宜使用煮沸法。

第十五页，共30页。细菌的收获和裂解（2）4)当从表达内切核酸酶A的大肠杆菌菌株(endA株，如HB101)中小量制备质粒时，建议不使用煮沸法。因为煮沸不能完全灭活内切核酸酶A，以后在温育(如用限制酶消化)时，质粒DNA会被降解。但如果通过一个附加步骤(用酚：氯仿进行抽提)可以避免此问题。

5)目前这一代质粒的拷贝数都非常高，以致于不需要用氯霉素进行选择性扩增就可获得高产。然而，某些工作者沿用氯霉素并不是要增加质粒DNA的产量，而是要降低细菌细胞在用于大量制备的溶液中所占体积。大量高度粘稠的浓缩细菌裂解物，处理起来煞为费事，而在对数中期在增减物中加入氯霉素可以避免这种现象。有氯霉素存在时从较少量细胞获得的质粒DNA的量以与不加氯霉素时从较大量细胞所得到的质粒DNA的量大致相等。

第十六页，共30页。质粒DNA的纯化

常使用的所有纯化方法都利用了质粒DNA相对较小及共价闭合环状这样两个性质。例如，用氯化铯－溴化乙锭梯度平衡离心分离质粒和染色体DNA就取决于溴化乙锭与线状以及与闭环DNA分子的结合量有所不同。溴化乙锭通过嵌入奋不顾身碱基之间而与DNA结合，进而使双螺旋解旋。由此导致线状DNA的长度有所增加，作为补偿，将在闭环质粒DNA中引入超螺旋单位。最后，超螺旋度大为增加，从而阻止了溴化乙锭分了的继续嵌入。但线状分子不受此限，可继续结合更多的染料，直至达到饱和(每2个碱基对大约结合1个溴化乙锭分子)。由于染料的结合量有所差别，线状和闭环DNA分了在含有饱和量溴化乙锭的氯化铯度中的浮力密度也有所不同。多年来，氯化铯－溴化乙锭梯度平衡离心已成为制备大量质粒DNA的首选方法。然而该过程既昂贵又费时，为此发展了许多替代方法。除极少数特殊用途的质粒纯化需要用到密度梯度纯化方法外，大多数实验室用途的质粒的纯化可以用质粒纯化试剂盒或聚乙二醇方法纯化。第十七页，共30页。质粒DNA的碱裂解法小量制备（1）

（一）细菌的收获和裂解

1．收获

1）将2ml含相应抗生素的ＬＢ加入到容量为15ml并通气良好（不盖紧）的试管中，然后接入一单菌落，于37℃剧烈振摇下培养过夜。

2）将1.5ml培养物倒入微量离心管中，用微量离心机于4℃以12000g离心30秒，将剩余的培养物贮存于4℃。3）吸去培养液，使细菌沉淀尽可能干燥。除去上清的简便方法是用一次性使用的吸头与真空管道相连轻缓抽吸，并用吸头接触液面。当液体从管中吸出时，尽可能使吸头远离细菌沉淀，然后继续用吸头通过抽真空除去附于管壁的液滴。

第十八页，共30页。质粒DNA的碱裂解法小量制备（2）2．碱裂解

1）将细菌沉淀，所得重悬于100μl用冰预冷的溶液Ｉ中，剧烈振荡。

溶液Ｉ

50mmol/L葡萄糖

25mmol/LTris．Cl(pH8.0)

10mmol/LEDTA(pH8.0)

溶液Ｉ可成批配制，每瓶约100ml,在10lbf/in2(6.895×104Pa)高压下蒸气灭菌15分钟，贮存于4℃。须确使细菌沉淀在溶液Ｉ中完全分散，将两个微量离心管的管底部互相接触震荡（用Votex），可使沉淀迅速分散。含糖培养基的灭菌方法：1、8磅压力下（116C）灭菌25分钟[普通培养基一般是15磅压力下（121C

）灭菌20分钟]。2、配1M的葡萄糖母液，0.22µm口径的过滤器过滤除菌并储存在4C。然后加入灭菌后的培养基中稀释到终浓度。第十九页，共30页。质粒DNA的碱裂解法小量制备（3）2）加200μl新配制的溶液Ⅱ。

溶液Ⅱ

0.2mol/LNaOH（临用前用10mol/L贮存液现用现稀释）

1%SDS

盖紧管口，快速颠倒离心管5次，以混合内容物。应确保离心管的整个内表面均与溶液Ⅱ接触。不要振荡，将离心管放置于冰上。

3）加150μl用冰预冷的溶液Ⅲ

溶液Ⅲ

5mol/Ｌ乙酸钾

60ml冰乙酸

11.5ml水28.5ml

所配成的溶液对钾是3mol/L，对乙酸根是5mol/L。

盖紧管口，将管倒置后和地振荡10秒钟溶液Ⅲ在粘稠的细菌裂解物中分散均匀，之后将管置于冰上3－5分钟。

第二十页，共30页。质粒DNA的碱裂解法小量制备（4）4）用微量离心机于4℃12000g离心5分种，将上清转移到另一离心管中。

5）可做可不做：加等量酚：氯仿，振荡混匀，用微量离心机于4℃以12000g离心2分钟，将上清转移到另一良心管中。有些工作者认为不必用酚：氯仿进行抽提，然而由于一些未知的原因，省略这一步，往往会得到可耐受限制酶切反应的DNA。

6）用2倍休积的乙醇于室温沉淀双锭DNA。振荡混合，于室温放置2分钟。

7）用微量离心机于4℃以12000g离心5分钟。

8）小心吸去上清液，将离心管倒置于一张纸巾上，以使所有液体流出。再将附于管壁的液滴除尽。除去上清的简便方法是用一次性使用的吸头与真空管道相连，并用吸头接触液面。当液体从管中吸出时，尽量使吸头远离核酸沉淀，然后继续用吸头通过抽真空除去附于管壁的液滴。

9）用1ml70%乙醇于4℃洗涤双链DNA沉淀，按步骤8）所术方法去掉上清，在空气中使核酸沉淀干燥10分钟。

i.此法制备的高拷贝数质粒（如Ｘf3或pUC），其产量一般约为：每毫升原细菌培养物3－5μg。

ii．如果要通过限制酶切割反应来分析DNA，可取1μlDNA溶液加到另一含8μl水的微量离心管内，加1μl10×限制酶缓冲液和1单位所需限制酶，在适宜温育1－2小时。将剩余的DNA贮存于－20℃。

iii.此方法按适当比例放大可适用于100ml细菌培养物：

第二十一页，共30页。质粒DNA的煮沸法小量制备

1）将细菌沉淀，所得重悬于350μlSTET中。

STET

0.1mol/LNaCL

10mmol/LTris.Cl(pH8.0)

1mmol/LEDTA(pH8.0)

5%TritonX-100

2）加25μl新配制的溶菌酶溶液[10mg/ml,用10mmol/LTris.Cl(pH8.0)配制]，振荡3秒钟以混匀之。如果溶淮中pH低于8.0，溶菌酶就不能有效发挥作用。

3）将离心管放入煮沸的水浴中，时间恰为40秒。

4）用微量离心机于室温以12000g离心10分种。

5）用无菌牙签从微量离心管中去除细菌碎片。

6）在上清中加入40μl5mol/L乙酸钠（pH5.2）和420μl异丙醇，振荡混匀，于室温放置5分钟。

7）用微量离心机于4℃以12000g离心5分种，回收核酸沉淀。

8）小心吸去上清液，将离心管倒置于一张纸巾上，以使所有液体流出。再将附于管壁的液滴除尽。除去上清的简便方法是用一次性使用的吸头与真空管道相连，轻缓抽吸，并用吸头接触液面。当液体从管中吸出时，尽可能使吸头远离核酸沉淀，然后继续用吸头通过抽真空除去附于管的液滴。9）加1ml70％乙醇，于4℃以12000g离心2分钟。10）按步骤8）所述再次轻轻地吸去上清，这一步操作要格外小心，因为有时沉淀块贴壁不紧，去除管壁上形成的所有乙醇液滴，打开管口，放于室温直至乙醇挥发殆尽，管内无可见的液体（2－5）分钟。11）用50μl含无DNA酶的胰RNA酶（20μg/ml）的TE(pH8.0)溶解核酸稍加振荡，贮存于-20℃。注：当从表达内切核酸酶Ａ的大肠杆菌株（endA株，如HB101）中小量制粒尤其DNA时，建议舍弃煮沸法。因为煮沸步骤不能完全灭活内切核酸酶Ａ，以后在Mg2存在下温育（V中用限制酶时）质粒DNA可被降解。在上述方案的步骤9）之间增加一步，即用酚：氯仿进行抽提，可以避免这一问题。

第二十二页，共30页。碱裂解法和煮沸法提质粒中遇到的问题碱裂解法和煮沸法都极其可靠，重复性也很好，而且一般不会遇到麻烦（但我仍然强烈推荐碱裂解法而一般不要用煮沸法）。多年来，在我们实验室中日常使用这两种方法的过程中，只碰到过两个问题：

1）有些工作者首次进行小量制备时，有时会发现质粒DNA不能被限制酶所切割，这几乎总是由于从细菌沉淀或从核酸沉淀中去除所有上清液时注意得不够。大多数情况下，用酚：氯仿对溶液进行抽提可以去除小量备物中的杂质。如果总是依然存在，可用离心柱层析注纯化DNA。

2）在十分偶然的情况下，个别小时制备物会出现无质粒DNA的现象。这几乎肯定是由于核酸沉淀颗粒已同乙醇一起被弃去。

第二十三页，共30页。质粒DNA的大量碱裂解法制备（1）

（一）在丰富培养基中扩增质粒许多年来，一直认为在氯霉素存在下扩增质粒只对生长在基本培养基上的细菌有效，然而在带有pMBl或ColEl复制子的高拷贝数质粒的大肠杆菌菌株中，采用以下步骤可提高产量至每500ml培养物2－5mg质粒DNA，而且重复性也很好。

1）将30ml含有目的质粒的细菌培养物培养到对数晚期（DNA600约0.6)。培养基中应含有相应抗生素，用单菌落或从单菌落中生长起来的小量液体闭关物进行接种。

2）将含相应抗生素的500mlＬＢ或Terrific肉汤培养基（预加温至37℃）施放入25ml对数晚期的培养物，于37℃剧烈振摇培养25小时（摇床转速300转/分），所得培养物的OD600值约为0.4。

3）可做可不做：加2.5ml氯霉素溶液（34mg/ml溶于乙醇），使终浓度为170μg/ml。像pBR322一类在宿主菌内只以中等拷贝娄竿行复的质粒，有必要通过扩增。这些质粒只要从生长达到饷新一代的质粒（如pUC质粒）可复制达到很高的拷贝数，因此无需扩增。这些质粒只要从生长达到饱和的细菌培养物即可大量提纯。但用氯霉素进行处理，具有抑制细菌复制的优点，可减少细菌裂解物的体积和粘稠度，极大地简化质粒纯化的过程。所以一般说来，尽管要在生长中的细菌培养物里加入氯霉素略显不便，但用氯霉素处理还是利大于弊。4）于37℃剧烈振摇（300转/分），继续培养12-16小时。

第二十四页，共30页。质粒DNA的大量碱裂解法制备（2）（二）细菌的收获和裂解

1．收获

1）用合适转头于4℃以4000转/分离心15分钟，弃上清，敞开离心管口并倒置离心管使上清全部流尽。

2）将细菌沉淀重悬于100ml用冰预冷的STE中。

STE

0.1mol/LNaCl

10mmol/LTris.Cl(pH8.0)

1mmol/LEDTA(pH8.0)

2）按步骤1）所述方法离心，以收集细菌细胞。

第二十五页，共30页。质粒DNA的大量碱裂解法制备（3）2.碱裂解法

1）将冼过的500ml培养物的细菌沉淀物[来自收获细菌的步骤3]重悬于10ml（18ml）溶液Ｉ中。

溶液Ｉ

50mmol/L葡萄糖

25mmol/LTris.Cl(pH8.0)

10mmol/LEDTA(pH8.0)

溶液Ｉ可成批配制，在10lbf/in2(6.895x104Pa)高压下蒸气灭菌15分钟，贮存于4℃。

2）加1ml(2ml)新配制的溶菌酶溶液[10mg/ml,溶于10mmol/LTris.Cl(pH8.0)]。当溶液的pH值低于8.0时，溶菌酶不能有效工作。

3）加20ml(40ml)新配制的溶液Ⅱ。

溶液Ⅱ

0.2mol/LNaOH(临用前用10mol/L贮存液现用现稀释）

1％SDS

盖紧瓶盖，缓缓颠倒离心瓶数次，以充分混匀内容物。于室温放置5-10分钟。

第二十六页，共30页。质粒DNA的大量碱裂解法制备（4）4）加15nl(20ml)用冰预冷的溶液Ⅲ。

溶液Ⅲ

5mol/L乙酸钾

60ml冰乙酸

11.5ml水

28.5ml所配成的溶液对钾是3mol/L，对乙酸根是5mol/L。

封住瓶口，摇动离心瓶数次以混匀内容物，此时应不再出现分明的两个液相。置冰上放10分钟，应形成一白色絮状沉淀。于0℃放置后所形成的沉淀应包括染体DNA、高分子量RNA和钾－SDS－蛋白质－膜复合物。

5）用合适转头于4℃以4000转/分离心15分钟，不开刹车而使转头自然停转。如果细菌碎片贴壁不紧，可以5000转/分再度离心20分钟，然后尽可能将上清全部转到另一瓶中，弃去残留在离心管内的粘稠状液体。未能形成致密沉淀块的原因通常是由于溶液Ⅲ与细菌裂解物混合不充分[步骤4）]。

6）上清过滤至一250ml离心瓶中，加0.6体积的异丙醇，充分混匀，于室温放置10分钟。

7）用合适转头于室温以500转/分离心15分钟，回收核酸。如于4℃离心，盐也会了生沉淀。

8）小心倒掉上清，敞开瓶口倒置离心瓶使残余上清液流尽，于室温用70％乙醇洗涤沉积管壁。倒出乙醇，用与真空装置相联的巴期德吸出附于瓶壁的所有液滴，于室温将瓶倒置放在纸巾上，使最后残余的痕量乙醇挥殆尽。

9）用3mlTE(pH8.0)溶解核酸沉淀。

第二十七页，共30页。聚乙二醇沉淀法纯化质粒DNA氯化铯－溴化乙锭梯度平衡离心法纯化闭环DNA一般用不到，这里不列出。

（一）聚乙二醇沉淀法提取质粒DNA

1）将核酸溶液所得]转入15mlＣorex管中，再加3ml用冰预冷的5mol/LLiCl溶液，充分混匀，用合适转头于4℃下以10000转/