基因工程实验流程课件

基因工程实验流程总览DNA提取，纯化限制图谱琼脂糖电泳检测片段体外扩增PCR目的基因制备载体选择DNA重组片段连接未知核酸序列须DNA片段大小估计互补性黏性不互补性黏性末端平末端限制性核酸内切酶酶切分离法简单基因组分离如质粒和病毒物理化学法构建基因组文库PCR扩增基因的化学合成双抗体免疫法酶促反应mRNA-cDNA

目的基因分离双酶切部分酶切Bal31逐步切割转座子基因定位克隆酵母双杂交前处理防止自连RNA提取RT-PCRTA克隆蓝白选择胶回收表达引物PCR载体PCR产物回收转化感受态细胞油菜TOC33基因片的克隆实验项目背景国家自然科学基金项目（油菜叶绿体蛋白质转运突变体中差异表达基因的克隆，编号：）。实验目的

通过本综合实验，掌握植物基因组DNA的制备技术、PCR技术、限制性内切酶酶切技术、重组DNA技术、克隆鉴定技术、质粒DNA的制备、琼脂糖凝胶电泳技术、测序技术、生物信息技术等，得到一个与科学研究过程相近的分子生物学综合技能训练。具体实验步骤Ⅰ.植物基因组DNA的制备Ⅱ.TOC33基因片段的PCR扩增Ⅲ.DNA的琼脂糖凝胶上回收与纯化IV.DNA片段的体外重组与转化V.克隆的筛选与鉴定VI.序列分析Ⅰ.植物基因组DNA的制备取0.2g样品嫩叶至1.5mLEP管中，放在液氮中冷冻处理后，在EP管中充分捣碎，加入0.6mL抽提缓冲液，65℃水浴处理10min。12,000rpm离心3min，取上清，加入二倍体积预冷的无水乙醇沉淀，遇有絮状沉淀，4,000rpm离心5min。沉淀用50ulTE-RNase（5.0mMTris.HClpH8.0，1.0mMEDTApH8.0，RNaseA30ug/mL）溶解，37℃保温处理15min。加入二倍体积预冷的无水乙醇，-20℃下沉淀10min，4,000rpm离心3min，加适量70%乙醇洗沉淀，自然干燥或37℃烘干，加入50ulddH2O溶解备用。Ⅱ.TOC33基因片段的PCR扩增引物设计，为扩增Toc33片段，用OLIG05.0设计1对PCR引物:上游引物P1:5'一ATGGGGTCTCTCGTTCGTGAAT-3'，下游引物P2：5'一TTAAAGTGGCTTTCCACTTGTC一3'。在0.2mLEppendorf管内配制25ul反应体系：10×PCRBuffer2.5ulMg2+1.5ul

dNTP1.0ulPrimer11.0ulPrimer21.0ul

Taq

酶0.5ul

模板1.0ulddH2O16.5ul1)

94oC预变性5min2)

94oC变性30sec3)

55oC退火30sec4)

72oC延伸45sec5)

重复步骤2)-4)30次6)

72oC延伸10min电泳染色后，在紫外分析仪上切取所需要的条带，按1克胶：1000添加提取缓冲液，放在60度的金属浴中溶解。然后把溶液转移到试剂盒专用管中，6000转/分离心1分钟；倒掉上清，再加入500微升的extractionbuffer,12000r/min离心1分钟；倒掉上清，加入750微升的washbuffer,12000r/min离心1分钟；倒掉上清，重复步骤三；倒掉上清，在12000r/min下空转1分钟；把带有膜的管子换到新的EP管中，加入30~50微升的水，静置1分钟，12000r/min离心一分钟，即得到所要回收的片断。此样品可用来做酶切等。Ⅲ.琼脂糖凝胶上DNA的回收与纯化IV.DNA片段的体外重组加试剂顺序由上到下（用500ul的EP管装），加完之后混匀，短时离心，用封口胶封口。将EP管放入金属浴当中37度酶切两个半小时左右，取出酶切产物，用试剂盒进行割胶回收进一步纯化酶切片断以进行连接反应。酶切体系：40.0ulddH2O9.0ul10×Buffer4.0ulDNA25.0ulXbaI、1.0ulHindIII1.0ul

连接反应：连接体系：（20.0ul）酶切产物3.0ulBuffer1.0ul载体14.0ulLiagse2.0ul加试剂顺序由上到下（用500ul的EP管装），加完之后混匀，短时离心，用封口胶封口。将EP管放入金属浴当中16度连接过夜。V.克隆的筛选与鉴定1.

用移液枪在1.5mlEP管中加入液体LB培养基500ul，再用灭过菌的牙签在生长蓝白斑的平板上挑取阳性克隆放于EP管中，丢弃牙签，盖紧管口，用报纸包好放到37OC，200r/min的摇床中过夜培养；2.

EP管出现混浊，用质粒提取试剂盒提取质粒。3.

对于得到的质粒再酶切电泳检测阳性克隆，如果酶切后的电泳图上出现了与插入片断相应大小的条带，证明是此单菌落是阳性克隆，否则是假阳性的。试剂盒质粒回收过程

把过夜培养菌液，10000r/min离心1分钟，倒掉上清液；向菌体中加入质粒回收试剂盒中的SolutionI400微升，震荡，直到沉淀的菌体完全悬浮；然后加入400微升的SolutionII，轻轻地颠倒混匀，然后在室温下放置2分钟；加入525微升的SolutionIII，颠倒混匀，直到出现白色的絮状沉淀，10000r/min离心10分钟；把上清液转移到试剂盒专用管中，10000r/min离心1分钟;倒掉溶液，向管子中加入600微升的bufferHB，10000r/min离心1分钟；倒掉溶液，加入750微升的washbuffer,10000r/min离心1分钟;重复上一步骤7次；倒掉溶液后空转一次，以尽量除尽残余的washbuffer;将带有膜的管子转移到新的EP管中，加入100微升的水，静置1分钟，10000r/min离心1分钟，即得到所需要的质粒。VI.序列分析获得的阳性单克隆送样测序，测序结果的同源性比较采用GenBank中的BLAST分析程序，基因序列比较运用DNAsist软件。一、实验起始材料的选取和准备水稻卵细胞的分离分离准备工作材料的速冻长期保存人工气候箱、制冰机超净工作台、显微操作系统RNase-free耗材、液氮罐超低温冰箱RNase抑制剂二、卵细胞mRNA的提取、纯化Oligotex系列试剂盒细胞裂解匀浆去蛋白和细胞残渣温浴并结合洗脱去盐和回收旋涡混匀器离心机恒温水浴锅离心机、旋涡混匀器200℃烘箱DEPC、RNase-freeDNaseI、RNase-free耗材三、目标片段的克隆和分析利用SMARTcDNA文库构建试剂盒构建水稻卵细胞cDNA文库；目标基因的获得；通过噬菌体载体自切割或T-Vector、平末端载体克隆获得目标质粒；利用测序仪和通用引物对克隆的目的基因测序；2.目标基因的克隆利用特异探针，通过核酸杂交的方法或利用特异的抗体，通过抗原-抗体反应进行文库目标基因的筛选将培养于平板的噬菌斑通过印迹转于尼龙膜，并于核酸交联仪中固定。在杂交箱中利用特定探针杂交。最后在恒温摇床中洗膜（探针标记：放射性和非放射性）将噬菌体培养于平板，于42℃培养几小时后，于37℃用IPTG诱导融合蛋白的表达并印记于尼龙膜上，利用抗原-抗体反应进行杂交利用GSP（基因特异引物）通过PCR扩增出目标基因利用GSP，以文库为模板通过PCR扩增出目标基因，并通过电泳、凝胶成像系统检测。利用文库载体序列和已知的目标基因的序列设计通用引物和GSP，通过5’RACE和3’RACE扩增出目标基因的5’和3’端序列。并通过电泳、凝胶成像系统检测。通过5‘RACE和3’RACE克隆已知部分序列的目标基因四、DNA、RNA的提取、纯化和分析包含有目标基因的质粒的获得对于通过筛库技术获得的目标基因，通过噬菌体载体的自切割作用生成目标质粒。水稻基因组DNA的提取、纯化和分析水稻各器官TotalRNA的提取、纯化和分析水稻基因组DNA的提取、纯化和分析利用SDS法或Qiagen提供的基因组提取试剂盒提取水稻基因组DNA：利用SDS在高钾离子浓度的情况下能沉淀蛋白和多糖等杂质的原理提取基因组DNA利用酚-氯仿抽提或过滤柱纯化基因组DNA水稻基因组文库的构建利用特异的探针，通过Southernblotting检测目标基因的拷贝数水稻各器官TotalRNA的提取、纯化和分析分离所需的水稻各器官组织，并利用Qiagen的RNeasy系列试剂盒提取总RNA：将材料裂解后，通过过滤柱纯化出总RNA在RNase-free的情况下，通过甲醛变性胶电泳检测总RNA的质量利用特异性的探针，通过Northernblotting检测目标基因在各器官的表达情况克隆化基因的表达基因的克隆：利用高保真的Taq酶和合适的反应系统，通过PCR获得与目标基因完全一致的DNA片段（通过测序确证）体内表达：选择合适的表达载体插入目标片段。利用化学方法或电转化仪等手段转入细胞表达体外转录和翻译系统：兔网织红细胞裂解物、小麦胚芽提取物等表达蛋白的纯化SDS聚丙烯酰胺胶回收：利用SDS聚丙烯酰胺胶分离不同大小的的蛋白。利用6×HIS、GST（谷胱甘肽）等和亲和树脂纯化：通过表达目标基因的融合蛋白，利用亲和层析洗脱出目标蛋白自动核酸/蛋白纯化工作站目标蛋白功能分析抗体的制备：多抗、单抗DNA-蛋白质相互作用研究：Gel-shift实验、蛋白质磷酸化分析、酵母单杂交系统等蛋白质-蛋白质相互作用研究：酵母双杂交系统、噬菌体表面展示技术等蛋白体内表达研究Westernblotting：利用抗原-抗体反应，对蛋白质混合物中的目标蛋白进行鉴别和定量免疫组织化学研究：通过切片技术和免疫反应，利用特异抗体检测特定蛋白在组织细胞内的表达和定位蛋白质芯片系统基因转化实验和转基因结果分析转基因载体的构建：载体、农杆菌、特殊抗生素植株的转化：叶盘转化法、基因枪植株的筛选：荧光检测、GUS染色、PCR法基因功能分析：激光共聚焦显微镜、FISH等连接反应⑴在灭菌的0.5mL离心管中进行。

⑵10μL体积反应体系中：2×快速连接缓冲液5μL目的基因的双酶切产物XμLpMal-c2x质粒双酶切产物XμLT4-DNA连接酶0.3μL⑶轻轻混匀，室温下放置过夜。注意事项：目的基因和c2x质粒双酶切产物的加入比例应根据电泳结果而定，使加入的2片段的浓度比为1：1剩下的酶切片段不要丢掉，留做转化时做对照感受态菌的制备（1）E.coliTB1菌株37℃过夜培养以复苏菌种，取过夜培养的菌液1mL加入到50mLLB培养基中，37℃，230r/min振荡培养3h，至A600约为0.4左右。（2）无菌条件下，将50mL菌液转移至离心管中，冰上放置10min，使培养物冷却至0℃。（3）在预冷4℃的离心机上以4000r/min离心10min，弃去上清，加入5mL预冷的0.1mol/LCaCl2溶液重悬沉淀，冰浴上放置10min。（4）以4000r/min在4℃离心10min，弃去上清，每50mL初始培养物用2mL预冷的含有10%~20%甘油的0.1mol/LCaCl2溶液重悬细胞沉淀，100μL/管分装，于-70℃条件下，可保存半年。注意事项：细胞一旦离开培养基，实验操作要轻柔。整个实验过程中注意将细胞置于冰上不能摇过了！！！选用处于对数生长期的细胞预先冷却pMal-ade重组质粒的转化（1）向分装有100μLE.coliTB1菌株感受态细胞的EP管中加入2μL的上步中得到的连接混合物，轻轻旋转以混合内容物，冰浴上放置30min。（2）将该EP管放入预加温至42℃的水浴中，放置90s，快速转移到冰浴中，使细胞冷却1~2min。（3）向EP管加入900μLLB培养基，转移至37℃摇床上，150r/min，温育45min以复苏菌株。（4）将200μL上述培养物加到含100μg/mL氨卞青霉素的LB平板上（平板表面涂有20mg/mL的X-gal40μL和20mg/mL的IPTG40μL），以玻璃涂布棒轻轻地将转化细胞平铺于琼脂平板表面。（5）将平板置于室温下至液体被完全吸收，倒置平皿，37℃过夜培养；水浴温度要准确，热击时不要摇动EP管UNIQ-10柱式质粒小量抽提将过夜培养的1～2ml细菌12,000rpm离心15秒，彻底去除上清。加入100lSolutionI，用枪头或振荡器充分悬浮细菌。加入200lSolutionII，立即温和混匀（倾斜45度角，顺一个方向，慢慢旋转离心管），使细菌裂解，室温放置2分钟。加入350lSolutionIII，立即上下颠倒5～10次，使之充分中和，室温放置2分钟。12,000rpm，离心5分钟。

将步骤5中上清转移到套放于2.0-ml收集管内的UNIQ-10柱中，8,000rpm室温离心15秒。弃收集管中的废液，将UNIQ-10柱放入同一支收集管中，吸取500lWashSolution到UNIQ-10柱，10,000rpm室温离心30秒。重复步骤7。弃收集管中的废液，将UNIQ-10柱放入同一支收集管中，10,000rpm室温离心30秒以彻底去除WashSolution。将UNIQ-10柱放入新的洁净1.5-ml离心管中，加50lElutionBuffer，室温放置2分钟后，10,000rpm室温离心1分钟。离心管中的溶液即为所抽提的质粒DNA。注意：对于低拷贝数的质粒，请用2～5ml细胞，同时按比例相应提高SolutionI，II和III的用量。在执行步骤5后，将上清分批加入到UNIQ-10柱中，重复步骤6，直至处理完所有样品。不能剧烈混合，否则会出现基因组DNA污染。不要吸取沉淀，否则会出现基因组DNA和蛋白质污染。：（1）如果要提高质粒的浓度，可以用30lElutionBuffer，37℃或50℃下放置2分钟，10,000rpm室温离心1分钟。（2）55~80℃洗脱可提高回收率10~20个百分点。PCR筛选1、调整模板（pMal-ade重组质粒）浓度至5ng/μL。2、按下列体系配制反应混合液，混匀，TemplateDNA

1.0μL（20ng）10×buffer

2.0μLMgCl2（25mmol/L）

1.5μLPrimer1(10μmol/L)

0.5μLPrimer2(10μmol/L)

0.5μLdNTPs（2mmol/L）

2.0μLTaq酶（5U/μL）

0.5μL加ddH2O至

20μL外源基因的特异引物：引物1（5`--CCGGAATTCTTGAATAAAGAAGCGCTAGTC—3`）和引物2（5`--CGGGGATCCGTCGACTTATTGCAGTGATATGTGTTG—3`）。3．PCR反应循环条件设置94℃变性反应1min；55℃退火反应45s；72℃延伸反应1min。进行25个循环后，最后一个循环72℃延长至10min。迅速冷却4℃。4、检测加2μL溴酚蓝和10μL反应产物，混匀，取15μL反应产物点样电泳。5、成像分析在1%的琼脂糖凝胶上点样电泳0.5~1h，电泳结束后EB染色15～20min，凝胶成像分析结果。

pMD18-TVectorpMD18-TVector是一种高效克隆PCR产物(TACloning)的专用载体。这种载体由pUC18载体改建而成，在pUC18载体（参见第12章基因工程的载体）的多克隆位点处的XbaI和SalI识别位点之间插入了EcoRV识别位点，用EcoRV进行酶切反应后，再在两侧的3'端添加"T"而成。因大部分耐热性DNA聚合酶进行PCR反应时都有在PCR产物的3'末端添加一个"A"的特性，所以使用这种制品可以大大提高PCR产物的连接、克隆效率。EcoR

V←--T-cloningsitecDNA

文库应用分离新基因的方法

发现并分离克隆新基因始终是分子生物学研究的主要任务和目的，虽然

cDNA

文库的用途很多，但是，应用于分离新基因是其最重要的用途。前述的不管是哪种类型的

cDNA

文库，都可以用于分离新基因，只是使用的方法有差异。分离方法主要有两种：第一，对于非全长

cDNA

文库，即不管是经典的

cDNA

文库方法或差减法构建的

cDNA

文库，需要利用已经获得的新

cDNA

序列片段，通过

RACE

方法获得新基因的全长序列。第二，利用全长

cDNA

文库与目的基因片段作为探针的杂交筛选。

从非全长

cDNA

文库中筛选新基因

3.1.1

RACE

法

RACE

文库即快速扩增

cDNA

末端法(

Rapid

Amplification

of

cDNA

End，RACE

)只需知道

mRNA

内很短的一段序列即可扩增出其

cDNA

的5'(5'

RACE

)和3'端(3'

RACE

)。该法的主要特是利用一条根据已知序列设计的特异性引物和一条与

mRNA

的

PolyA

(3'

RACE

)或加至第一链

cDNA

3'端的同聚尾(5'

RACE

)互补的通用引物，由于同聚体并非良好的

PCR

引物，同时为了便于

RACE

产物的克隆，可向同聚体引物的5'端内加入一内切酶位点。所用的

cDNA

模板可以使用多聚

dT

引物延伸合成(3'，5'-RACE

均可)。当

RACE

PCR

产物为复杂的混合物时，可取部分产物作模板，用另一条位于原引物内侧的序列作为引物与通用引物配对进行另一轮

PCR

(巢式

PCR

)。早在1988年，FROHMAN

等即用此方法成功地获得了4种

mRNA

的5'合3'末端序列。

用

PCR

法从

cDNA

文库中快速克隆基因

通过对文库的筛选或适用简并引物进行

PCR

反应，常常只能获得不完整的

cDNA

片段。为了得到

cDNA

全长，常常要重新筛选文库。重新筛选文库工作量大，RACE

虽然为此提供可方便，但应用该方法需重新提取

mRNA

和反转录。而用

PCR

法从

cDNA

文库中快速克隆基因的方法，只需提取

λ

噬菌体

DNA，按保守序列设计

PCR

引物便可将未知片段进行克隆。特别是在基因的两端变异较大而中间某区域保守的情况下，用

P