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发酵液体饲料在养猪生产中的应用发酵液体饲料在养猪生产中的应用相对于传统的干饲料和湿拌料,发酵液体饲料(FLF)在养猪生产有诸多优势。发酵液体饲料减少胃肠道大肠杆菌的数量(Hansen等,2000),抑制猪痢疾短螺旋体(Lindecrona等,2003)和胞内劳森菌(Boesen等,2004)等肠道病原微生物的繁殖;另外,液体饲料在发酵过程中可以产生大量的乳酸和挥发酸(如乙酸等)等酸性物质,使饲料酸度增强,抑制或杀灭沙门氏菌和大肠杆菌。液体饲料原料来源广泛,可以使用食品发酵工业副产物,降低饲料成本;在饲喂体系建立之后,可以大大减少饲喂的劳动量,同时还能减少饲喂过程中的粉尘对人体和动物造成的危害(Canibe等,2008)。本文对发酵液体饲料在养猪生产上的应用及其在应用中存在的问题和解决方案作一综述,为发酵液体饲料在我国养猪生产上的推广与科学应用提供参考。1发酵液体饲料在断奶仔猪上的应用1.1维持肠道菌群微生态平衡,促进消化道健康断奶应激可破坏肠道菌群微生态平衡,增加大肠杆菌、沙门氏菌等有害菌的数量,减少乳酸菌等有益菌的数量,极易导致仔猪腹泻和肺炎等疾病。Kiyoshi等(2010)研究证明,通过给4周龄的断奶仔猪饲喂发酵液体饲料可显著增加仔猪回肠和盲肠的菌群结构多样性,且回肠中的乳酸菌数多于对照组。李永明等(2010)通过对144头(14±2)日龄的超早期断奶仔猪进行试验发现,发酵谷物液体饲料能促进14日龄超早期断奶仔猪在经历断奶应激后建立消化道微生物菌群的多样性和肠道微生态系统的平衡。李芳等(2010)利用荧光定量PCR技术分析显示,饲喂发酵谷物液体饲料使仔猪粪中大肠杆菌含量降低84.9%(P<0.1),乳杆菌含量提高145.9%(P>0.05),乳杆菌/大肠杆菌比值提高10.3倍(P<0.05),从而使仔猪在应对由各种因素引起的消化道微生态紊乱时具有更强的抵抗能力。断奶仔猪由于饲料的改变,消化道发生一系列变化,小肠绒毛缩短,小肠腺体隐窝细胞增生,这种变化将维持1~2周,严重影响仔猪的吸收和分泌能力(Deprez等,1987)。陈鲜鑫和王金全(2010a)报道,饲喂小麦发酵液体饲料能增加断奶仔猪的小肠绒毛长度,可较好地保护断奶仔猪肠黏膜以防被破坏,Missotten等(2010)也得到类似的结果。1.2提高饲料适口性,改善生长性能饲料在液体发酵过程中,产生大量乳酸和挥发酸等酸性物质,使饲料酸度增强,不但能抑制或杀灭沙门氏菌和大肠杆菌等有害微生物,而且营养均衡,混合均匀,可通过改善饲料适口性提高采食量(Canibe[摘要]本文综述了发酵液体饲料在养猪生产中的应用,并简要介绍了当前我国发酵液体饲料应用上存在的问题和解决方案。[关键词]发酵液体饲料;乳酸菌;大肠杆菌;生长性能;养猪生产[中图分类号]S816.6[文献标识码]A[文章编号]1004-3314(2012)03-0028-03[Abstract]Theapplicationoffermentedliquidfeed(FLF)inswineproductionwerereviewedanditsproblemsandso-lutioninapplicationinChinawerebrieflyintroduced.[Keywords]FLF;lacticacidbacteria;E.coli;growthperformance;swineproduction发酵液体饲料在养猪生产中的应用湖南农业大学动物科学技术学院畜禽遗传改良湖南省重点实验室长沙科利康饲料科技有限公司范永辉覃春富李佳玲张佩华*龚郁动物营养28中国饲料2012年第3期等,2007)。李芳(2010)认为,谷物发酵液体饲料可显著改善仔猪断奶后2周的生长性能,使仔猪日采食量提高41.7%(P<0.01),日增重提高107.5%(P<0.01),饲料转化率提高36.9%。此外,李永明等(2010)研究也发现,饲喂发酵谷物液体饲料能显著提高超早期断奶仔猪的日采食量和日增重。2发酵液体饲料在生长育肥猪上的应用相对于断奶仔猪来说,由于生长育肥猪的消化道和免疫系统已经发育完善,故发酵液体饲料在生长育肥猪上的应用效果要差于仔猪。但发酵液体饲料对生长育肥猪的微生物菌群和生长性能也是有影响的。乳酸菌发酵液体饲料的pH为3.8~4.0,并且含有大量乳酸(150~250mmol/L),优势菌群(乳酸菌)建立起来之后,就可以抑制有害微生物(如沙门氏菌)的繁殖与生长(Beal等,2002)。陈鲜鑫和王金全(2010b)研究发现,对生长育肥猪使用乳酸菌发酵液体饲料能显著提高其粪中的乳酸菌水平,显著降低大肠杆菌和沙门氏菌的水平;并且能显著提高日增重和降低料重比。杨雪芬和李浩波(2009)研究,干料和水料比为1∶3的发酵液体饲料对公猪饲喂效果,结果表明,干料组的平均日增重为831g/d,发酵液体饲料组为963g/d,二者差异极显著(P<0.01)。3发酵液体饲料在母猪上的应用3.1对哺乳母猪粪中大肠杆菌数量的影响Brooks等(1996)研究表明,饲料经过发酵后,能降低饲料中沙门氏菌和大肠杆菌的水平。Jensen和Mikkelsen(1998)研究发现,给猪饲喂发酵饲料后,回肠和盲肠中的大肠杆菌数量明显减少,这可能与发酵饲料能改变消化道内环境有关。Demecková等(2002)将18头临产母猪(杜×长×大)分成3组,分别饲喂发酵液体饲料、湿拌料和干饲料,结果表明产后第7天发酵液体饲料组粪样中的大肠杆菌水平明显低于其他两组。因此,哺乳母猪饲喂发酵液体饲料能减少仔猪生存环境中的大肠杆菌数量,对增强哺乳仔猪体质具有很大的影响。3.2对哺乳母猪初乳质量的影响对于新生仔猪来说,母体初乳的质量至关重要,初乳不仅为新生仔猪提供营养和抗体等物质,还能激发黏膜免疫系统。Demecková等(2002)在对发酵液体饲料、湿拌料和干料对母猪初乳质量的研究中发现,发酵液体饲料组的小肠黏膜上皮细胞(IEC-6)和血淋巴细胞的促有丝分裂活性均极显著高于干料组(P<0.01),而发酵液体饲料组和湿拌料组之间差异不明显(P>0.05)。由此可见,相对于饲喂干料,饲喂发酵液体饲料的母猪的初乳含有较多的促生长和免疫活性物质,但其作用机理尚未清楚。3.3发酵液体饲料对哺乳仔猪粪中微生物区系的影响微生物区系对动物本身尤其是消化道健康具有重要作用,哺乳仔猪主要通过母乳获得营养物质,其消化道微生物区系的建立受母乳和生活环境影响,乳头上的粪污、垫料等杂物含有多种微生物,这些微生物能影响仔猪体内微生物菌群的建立与平衡。Muralidhara等(1977)报道,消化道微生物区系中乳酸菌与大肠杆菌的比值越高,动物的生长性能就越好。Demecková等(2002)研究表明,饲喂发酵液体饲料的母猪,其7日龄哺乳仔猪粪中的乳酸菌数量显著高于饲喂干料的母猪所带仔猪(P<0.01),大肠杆菌数量也显著降低(P<0.01),说明母猪饲喂发酵液体饲料能提高其仔猪粪中郛酸菌与大肠杆菌的比值,但无数据说明该处理与哺乳仔猪生长性能之间的关系。4发酵液体饲料在应用中存在的问题和解决方案4.1菌种质量发酵液体饲料的发酵控制是一项极为关键的技术,特别是菌种的质量将直接影响发酵液体饲料的饲喂效果。目前在生产实践中应用发酵液体饲料普遍存在的问题有:饲喂系统含有大量杂菌;菌种含量太低不足以抑制有害菌;菌种不易存活;饲喂效果不稳定;菌种掺假等。可见为发酵液体饲料开发一种受环境条件影响小、耐高温、耐抗生素、耐胃酸和胆盐、效果稳定、见效快的优质菌种势在必行。另外,做好市场监控,规范饲喂系统,也是今后研究的重点。4.2调控操作液体饲料在发酵过程中要求相对严格的条件,在发酵过程中,氧气过多、密封不良、发酵温度过低、时间过短、发酵系统杂菌过多或有抗生素残留、原料酸碱度不佳都将导致发酵不良甚至终止发酵(陈文斌和艾薇,2004)。因此,应该设计出一个简易的调控发酵的标准操作程序,制定相关标准,从而促使发酵液体饲料的正常发酵,使发酵液体饲料保持一个相对稳定的品质。5小结发酵液体饲料作为一种新型饲料,具有改善29中国饲料2012年第3期饲料的消化特性,改善猪的消化道健康状况,提高猪的免疫力和生产性能,预防仔猪腹泻等方面的优点。随着对发酵液体饲料理论研究的不断深入和发酵系统、饲喂系统的不断完善,发酵液体饲料将得到越来越广发的推广应用。参考文献[1]陈文斌,艾薇.发酵液体饲料-一种新型饲料的应用研究[J].饲料研究,2004,3:27~29.[2]陈鲜鑫,王金全,王春阳,等.乳酸菌发酵液体饲料对生长猪生长性能和粪中微生物区系的影响[J].饲料工业,2010b,31(4):40~42.[3]陈鲜鑫,王金全.发酵液体饲料在断奶仔猪和生长育肥猪上的应用[J].饲料与畜牧,2010a,2:21~23.[4]李芳.饲料的液态发酵处理及其对仔猪生长性能和消化道微生态的影响:[硕士学位论文][D].金华:浙江师范大学,2010.[5]李永明,徐子伟,李芳,等.发酵谷物液体饲料对超早期断奶仔猪生长性能和肠道微生物多样性的影响[J].动物营养学报,2010,22(6):1650~1657.[6]杨雪芬,李浩波.不同水料比液体饲料对生长肥育猪生长性能的影响[J].广东饲料,2009,18(2):36~39.[7]BealJD,NivenSJ,CampbellA,etal.TheeffectoftemperatureonthegrowthandpersistenceofSalmonellainfermentedliquidpigfeed[J].Interna-tionalJournalofFoodMicrobiology,2002,79:99~104.[8]BoesenHT,JensenTK,SchmidtAS,etal.TheinfluenceofdietonLaw-soniaintracellulariscolonizationinpigsuponexperimentalchallenge[J].Vet,Microbiol,2004,103:35~45.[9]BrooksPH,GearyTM,MorganDT,etal.Newdevelopmentsinliquidfeeding[J].PigVetJ,1996,36:43~64.[10]CanibeN,JensenBB.Fermentedliquidfeedandfermentedgraintopiglets-effectongastrointestinalecologyandgrowthperformance[J].LivestockScience,2007,108:198~201.[11]CanibeN,MiettinenH,JensenBB.EffectofaddingLactobacillusplan-tarumoraformicacidcontaining-producttofermentedliquidfeedongas-trointestinalecologyandgrowthperformanceofpiglets[J].LivestockScience,2008,114:251~262.[12]DemeckováV,KellyD,CouttsAGP,etal.Theeffectoffermentedliq-uidfeedingonthefaecalmicrobiologyandcolostrumqualityoffarrowingsows[J].InternationalJournalofFoodMicrobiology,2002,79:85~97.[13]DeprezP,DerooseP,VandenHende,etal.Liquidversusdryfeedinginweanedpiglets:theinfluenceofsmallintestinalmorphology[J].VetMed,1987,34:254~259.[14]HansenLL,MikkelsenLL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