春生理生化实验生理部分

春生理生化实验生理部分1第1页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验室规则：1、认真预习实验。明确目的，掌握原理，列出步骤，提出问题。2、认真操作，仔细观察，从实记录。3、正确操作仪器，不乱开仪器。4、注意安全和清洁卫生（包括值日）。5、正确处理废物。2第2页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验报告要求：实验原理：简明扼要。材料：用什么？方法：实际操作过程。数据计算：原始数据，计算公式，结果。讨论和分析：针对自己的结果进行。实验报告在下一次实验时上交，但实验原始数据须经指导老师审核后才可离开。3第3页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验评分标准：（一）课上：50分1、预习报告；10分2、认真实验，操作规范，实验结果符合要求；30分3、不迟到，不早退，积极参与卫生清扫。10分4第4页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验评分标准：（二）课下：实验报告评分标准50分

1、卷面清洁，字迹工整；5分2、语句通畅，简明扼要，逻辑性强，表达准确无概念错误；5分3、预习报告、实验原始记录、实验报告齐全；10分4、实验报告格式规范，重点突出；10分5、实验原始记录要如实认真记录实际操作、观察及测定结果；10分6、对实验结果的讨论要充分有据，论点要正确，与该实验无关的内容不要写入报告中；10分7、抄袭别人报告者。0分5第5页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验项目实验一植物组织水势的测定实验二叶绿素a、b含量的测定实验三植物呼吸强度的测定实验四生长素对根芽生长的不同影响实验五种子生活力的快速测定实验六植物抗逆性的鉴定6第6页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验一植物组织水势的测定—小液流法7第7页，共82页，2023年，2月20日，星期五（一）实验目的掌握植物组织水势的测定方法；了解渗透系统中水势大小是水分移动方向的决定因素。8第8页，共82页，2023年，2月20日，星期五（二）实验原理植物生活细胞是一个渗透系统，当将植物细胞或组织放入外界溶液中时，水分将以水势差为动力在两者间流动，最终达到动态平衡。如果植物组织的水势小于外界溶液的水势，植物细胞吸水，使外界溶液浓度增大；反之，植物细胞失水，使外液浓度变小。若植物组织与外界溶液水势相同，将不改变外部溶液的浓度，此时外液的渗透势就等于植物组织的水势。可以利用外界溶液的浓度不同其比重也不同的原理来确定与植物组织水势相同的外液，根据公式计算植物组织的水势。9第9页，共82页，2023年，2月20日，星期五（三）实验用品1．植物材料玉米或菠菜叶片2．实验器材吸水纸、容量管（或10ml量筒）、试管、橡皮塞或软木塞、带盖青霉素小瓶、胶头细玻璃弯管（长滴管）、移液管、剪刀或打孔器、试管架、温度计和镊子。3．实验试剂

lmol/L的蔗糖溶液、甲烯蓝粉末。10第10页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤1.外界溶液的配制与渗透作用①配制0．1～0．8mol/L8个梯度的蔗糖溶液各10ml，注入8只试管中，并分别加上塞子后编号，作为对照组。②将8只青霉素小瓶编号，分别从对照组中相同编号的试管中取蔗糖溶液4ml注人各瓶，加上塞子作为实验组。③用剪刀或打孔器将玉米等植物的叶片剪成大小相同（约0．5cm）的小块，每瓶中投入40小块（约占1/4溶液体积），塞好塞子，放置30min。在此期间摇动小瓶数次。④用针尖挑取少许甲烯蓝粉末加入上述各青霉素瓶中，摇匀，此时溶液为浅蓝色。11第11页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤2．等渗溶液确定①用胶头细玻璃弯管从各小瓶中依次吸取少量的浅蓝色溶液，并用吸水纸吸掉管外壁上的溶液，然后将弯管伸入相同编号的对照组试管液体中部，缓慢放出溶液一滴，观察蓝色液滴的移动方向（见图）。②若有色液滴向上移动，表明组织失水，使蔗糖溶液浓度降低、比重减小；若有色液滴向下移动，表明组织吸水，使蔗糖溶液浓度升高、比重增大；如果有色液滴静止不动，则表明蔗糖溶液与植物组织水势相等，记录该蔗糖溶液的浓度。12第12页，共82页，2023年，2月20日，星期五（五）实验结果与计算计算公式：фW=-RTiC式中：фW为植物组织水势，以bar表示；

i为解离系数，蔗糖是1；

R为气体常数，0.083L•bar/mol•K；

T为绝对温度，K（即273℃＋t，t为实验温度）；

C为等渗溶液浓度，mol/L，可换算为质量摩尔浓度（mol/kg）。13第13页，共82页，2023年，2月20日，星期五（六）实验注意事项1．叶片投入小瓶要快，小瓶及时加盖，防止叶内或小瓶中水分蒸发影响实验结果。2．加入实验组的甲烯蓝粉末量不宜过多，以免影响溶液的比重。3．胶头细玻璃弯管要各溶液专用，如用一只弯管则应从低浓度到高浓度依次吸取溶液。4．释放蓝色液滴时要缓慢，防止过急挤压冲力影响液滴移动。5．观察液滴移动状况最好放在一个白色的背景下进行。14第14页，共82页，2023年，2月20日，星期五（七）思考题1、测定同一植物上部及下部叶片的水势有何差别？2、用小液流法测定植物组织水势与用质壁分离法测定植物细胞渗透势都是以外界溶液的浓度算出的溶质势为根据，它们之间的区别何在？15第15页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验二叶绿素a、b含量的测定—分光光度法16第16页，共82页，2023年，2月20日，星期五（一）实验目的掌握在未经分离的叶绿体色素溶液中测定叶绿素a和b的方法及其计算方法。17第17页，共82页，2023年，2月20日，星期五（二）实验原理根据叶绿体色素提取液对可见光谱的吸收，利用分光光度计在某一特定波长测定其吸光度，即可用公式计算出提取液中各色素的含量。在测定叶绿素a、b时为了排除类胡萝卜素的干扰，所用单色光的波长选择叶绿素在红光区的最大吸收峰。

18第18页，共82页，2023年，2月20日，星期五19第19页，共82页，2023年，2月20日，星期五（三）实验用品1、材料：新鲜（或烘干）的植物叶片2、仪器设备：分光光度计、电子顶载天平（感量0.01g）、研钵、25ml棕色容量瓶、小漏斗、定量滤纸、吸水纸、擦镜纸、滴管。3、试剂：96％乙醇（或80％丙酮）、石英砂、碳酸钙粉。20第20页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤1.取新鲜植物（菠菜）叶片（或其它绿色组织）或干材料，擦净组织表面污物，剪碎（去掉中脉），混匀。2.称取剪碎的新鲜样品0.2g，共3份，分别放入研钵中，加少量石英砂和碳酸钙粉及2-3ml95％乙醇，研成均浆，再加乙醇10ml，继续研磨至组织变白。静置3-5min。21第21页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤3.取滤纸1张，置漏斗中，用乙醇湿润，沿玻棒把提取液倒入漏斗中，过滤到25ml棕色容量瓶中，用少量乙醇冲洗研钵、研棒及残渣数次，最后用乙醇定容至25ml，摇匀。4.把叶绿体色素提取液倒入光径1cm的比色杯内。以95％乙醇为空白，在波长665nm、649nm下测定吸光度。22第22页，共82页，2023年，2月20日，星期五（五）实验结果与计算将测定得到的吸光值代入下面的式子：

Ca=13.95A665－6.88A649Cb=24.96A649－7.32A665Ct=Ca+Cb=18.08A649+6.63A665

（Ca、Cb：mg/L）叶绿素的含量（mg/g）=[叶绿素的浓度×提取液体积×稀释倍数]/样品鲜重（或干重）23第23页，共82页，2023年，2月20日，星期五24第24页，共82页，2023年，2月20日，星期五（六）实验注意事项1、若用丙酮提取，由于植物叶子中含有水分，可先用纯丙酮，以使色素提取液中丙酮的最终浓度近似80%。叶绿素a、b的80％丙酮提取液在红光区的最大吸收峰分别为663nm、645nm。可列出以下关系式：

Ca=12.75A663－2.59A645Cb=22.88A645－4.67A663Ct=20.29A645+8.05A663另外，由于叶绿素a、b在652nm的吸收峰相交，两者有相同的比吸收系数34.5，故也有以下公式：

Ct=（A652×1000）÷34.52、由于叶绿素a、叶绿素b的吸收峰很陡，仪器波长稍有偏差，就会使结果产生很大的误差。25第25页，共82页，2023年，2月20日，星期五（七）思考题1、试比较阴生植物与阳生植物的叶绿素a与叶绿素b的比值有何不同？2、分光光度法和比色法有何不同？3、叶绿素a与叶绿素b在红光区和蓝光区都有最大吸收峰，能否用蓝光区的最大吸收峰波长进行叶绿素a与叶绿素b的定量分析，为什么？26第26页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验三植物呼吸强度的测定—红外线CO2气体分析仪法27第27页，共82页，2023年，2月20日，星期五（一）实验目的1、了解植物呼吸强度测定的一般原理；２、了解红外线CO2气体分析仪；３、熟习红外线CO2气体分析仪具体操作。28第28页，共82页，2023年，2月20日，星期五（二）实验原理植物在生命活动过程中，常伴有CO2的释放与吸收。CO2量的变化能标志植物生理生化活性的强弱。红外线CO2气体分析仪（IRGA）工作原理：许多由异原子组成的气体分子对红外线都有特异的吸收带。CO2的红外吸收带有4处，其吸收峰分别在2.69μm、2.77μm、4.26μm、14.99μm处，其中只有4.26μm的吸收带不与H2O的吸收带重叠，红外仪内设置仅让4.26μm红外光通过的滤光片，当该波长的红外光经过含有CO2的气体时，能量就因CO2的吸收而降低，降低的多少与CO2的浓度有关，并服从朗伯-比尔定律。29第29页，共82页，2023年，2月20日，星期五

（二）实验原理分别供给红外仪含与不含CO2的气体，红外仪的检测器便可通过检测红外光能量的变化而输出反映CO2浓度的电讯号。30第30页，共82页，2023年，2月20日，星期五（二）实验原理萌发的种子呼吸作用增强，在密闭容器中，CO2浓度可用红外线CO2分析仪测定，从而算出呼吸强度。31第31页，共82页，2023年，2月20日，星期五（三）实验用品1、材料：萌发种子2、器材：红外线分析仪、天平、电炉、500ml呼吸瓶（带孔塞）、吸水纸32第32页，共82页，2023年，2月20日，星期五1、称蒸发种子10g2份1份煮死，作为对照，吸干表面水1份不煮悬挂于呼吸瓶中2、20分钟后，用红外线CO2分析仪测定二瓶中CO2浓度（四）实验步骤33第33页，共82页，2023年，2月20日，星期五（五）实验结果与计算呼吸强度=μlCO2/g鲜重（或干重）/h34第34页，共82页，2023年，2月20日，星期五（六）实验注意事项1、红外线的滤光效果并不十分理想，水蒸气是干扰测定的主要因素，因此，取样器干燥管内的CaCl2要经常更换，避免吸水溶解进入红外仪，污染分析气室，以保证测量精度，延长仪器寿命。2、用开放系统测定时要注意维持外源CO2浓度的稳定。注：空气中CO2浓度约为300ppm。35第35页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验四生长素对根芽生长的不同影响36第36页，共82页，2023年，2月20日，星期五（一）实验目的掌握植物激素和生长调节剂对植物生长发育的调节作用。了解不同浓度的生长素在种子萌发过程中对植物不同器官生长的影响。37第37页，共82页，2023年，2月20日，星期五（二）实验原理生长素及人工合成的类似物质如萘乙酸等对植物生长有很大的调节作用，在不同浓度下对植物生长的效应也不同。一般来说，低浓度的生长素促进生长，高浓度时则抑制生长。不同的植物器官对生长素的反应也不同，通常根比芽、茎对生长素更敏感。38第38页，共82页，2023年，2月20日，星期五（三）实验用品1、材料：水稻种子2、仪器设备：温箱；6套培养皿；试管；移液管；量筒；镊子；尺子；滤纸；标签纸。3、试剂：

10ppmNAA溶液39第39页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验准备：1、水稻种子的萌发：在30℃下浸种2－3天，然后在30℃以下保湿催芽至露白点（约1－2天）。

2、1000ppm母液的配制：在分析天平上称萘乙酸0.1克用95％酒精少许将其溶解后，倒入100ml容量瓶中，用蒸馏水定容至刻度。

3、10ppm萘乙酸溶液的配制：用移液管吸取母液1ml，加蒸馏水定容于100ml容量瓶中。40第40页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验操作步骤：1、在培养皿贴上标签，并相应加入不同浓度的NAA溶液9ml。具体步骤：a.将6套培养皿和试管洗净，干燥，编号。编号123456NAA浓度ppm

0

10-3

10-2

10-1

1

10

41第41页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验操作步骤：b.取10ppmNAA溶液

10ml→6号试管

1ml→5号试管+9ml蒸馏水

1ml→4号试管+9ml蒸馏水

1ml→3号试管+9ml蒸馏水

1ml→2号试管+9ml蒸馏水,弃去1ml;1号试管加9ml蒸馏水。（每管取液前均摇匀）。c.将6个试管内溶液对号入座倒入6套培养皿中。2、在培养皿中铺上一层滤纸，并在滤纸上播上已经萌动的水稻种子10粒/皿。盖好盖，置20-25℃恒温箱中。42第42页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤：3、于三天后观察并记录各培养皿中的下列项目：①平均根数：记录根长0.5cm的根的数目，算平均数。②平均根长：量取各苗最长根的长度，算平均数。③平均芽长：量取各苗芽长，算平均数。43第43页，共82页，2023年，2月20日，星期五（五）实验结果计算与分析：1、列表显示各种处理组及对照组中上述各项数据。2、对实验结果进行讨论分析。NAA浓度ppm010-310-210-1110平均根数

平均根长

平均芽长

44第44页，共82页，2023年，2月20日，星期五（六）、实验注意事项1、生长素浓度要尽量配制准确。2、试验中要防止生长素污染。45第45页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验五种子生活力的快速测定—氯化三苯基四氮唑(TTC)法46第46页，共82页，2023年，2月20日，星期五（一）实验目的1、了解种子生活力测定的实践意义；2、掌握氯化三苯基四氮唑(TTC)法测定种子生活力的原理及操作要点。47第47页，共82页，2023年，2月20日，星期五（二）实验原理凡有生活力的种胚在呼吸作用过程中都有氧化还原反应，而无生活力的种胚则无此反应。当TTC溶液渗入种胚的活细胞内，并作为氢受体被脱氢辅酶(NADH2或NADPH2)还原时，可产生红色的三苯基甲月替

(TTＦ)，胚便染成红色。当种胚生活力下降时，呼吸作用明显减弱，脱氢酶的活性亦大大下降，胚的颜色变化不明显，故可由染色的程度推知种子的生活力强弱。48第48页，共82页，2023年，2月20日，星期五（二）实验原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲月替（TTF），如下式：49第49页，共82页，2023年，2月20日，星期五（三）实验用品1、材料：水稻种子2、仪器：

培养皿、镊子、单面刀片、棕色试剂瓶、解剖针、搪瓷盘、PH试纸（6.5～7.5）、电炉、恒温箱。50第50页，共82页，2023年，2月20日，星期五（三）实验用品3、试剂：

TTC溶液的配制：取3gTTC溶于1L蒸馏水或冷开水中，配制成0.3％的TTC溶液。（药液PH应在6.5～7.5）

(若难溶，可先加少量酒精使其溶解)。51第51页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤1、将水稻新种子、陈种子或死种子，用温水(30℃)浸泡2～6H，使种子充分吸胀。2、随机取种子2份，每份200粒，沿种胚中央准确切开，取每粒种子的一半备用，另一半煮死作为对照。3、把切好的种子分别放在培养皿中，加TTC溶液，以浸没种子为度。52第52页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤4、放入30～35℃的恒温箱内保温30Min。也可在20℃左右的室温下放置40～60Min。5、保温后，倾出药液，用自来水冲洗2～3次，立即观察种胚着色情况，（关键是看胚根、胚盾片中央），判断种子有无生活力。53第53页，共82页，2023年，2月20日，星期五（五）实验结果与计算计算活种子的百分率。54第54页，共82页，2023年，2月20日，星期五（六）实验注意事项1、TTC溶液最好现用现配，如需贮藏则应贮于棕色瓶中，放在阴凉黑暗处，如溶液变红则不可再用。2、染色温度一般以25～35℃为宜。3、判断有生活力的种子应具备的特征：胚发育良好、完整、整个胚染成鲜红色；子叶允许有小部分坏死，但其部位不是胚中轴和子叶连接处；胚根尖虽有小部分坏死，但其他部位完好。4、判断无生活力的种子应具备的特征：胚全部或大部分不染色；胚根不染色部分不限于根尖；子叶不染色或丧失机能的组织超过1／2；胚染成很淡的紫红色或淡灰红色；子叶与胚中轴的连接处或在胚根上有坏死的部分；胚根受伤以及发育不良的未成熟的种子。5、对于不同作物种子生活力的测定，所需试剂浓度、浸泡时间、染色时间不同。55第55页，共82页，2023年，2月20日，星期五（七）思考题1、试验结果与实际情况是否相符？为什么？2、就你所知还有哪些快速方法可以测定种子的生活力？56第56页，共82页，2023年，2月20日，星期五实验六植物抗逆性的鉴定—电导仪法57第57页，共82页，2023年，2月20日，星期五（一）实验目的１、了解细胞膜透性测定在实际应用中的意义；２、掌握电导仪使用方法；３、掌握电导仪法测定植物细胞膜透性的原理及要点；４、观察高、低温因子对细胞透性的影响；58第58页，共82页，2023年，2月20日，星期五（二）实验原理

植物细胞膜对维持细胞的微环境和正常的代谢起着重要的作用。在正常情况下，细胞膜对物质具有选择透性能力。当植物受到逆境影响时，细胞膜遭到破坏，膜透性增大，从而使细胞内的电解质外渗，以致植物细胞浸提液的电导率增大。膜透性增大的程度与逆境胁迫强度有关，也与植物抗逆性的强弱有关。因此，电导法目前已成为作物抗性栽培、育种上鉴定植物抗逆性强弱的一个精确而实用的方法。59第59页，共82页，2023年，2月20日，星期五（三）实验用品1、材料：小麦、女贞叶片等。2、仪器设备：电导仪；天平；恒温箱；恒温水浴锅；带抽气泵的真空干燥器（或20ml注射器筒）；打孔器；纱布；吸水纸。3、试剂：

NaCl溶液。60第60页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤1、制作标准曲线：如需定量测定透性变化，可用纯NaCl配成0、10、20、40、60、80、100μg/ml的标准液，在20～25℃恒温下用电导仪测定，可读出电导度。2、选取小麦或其他植物在一定部位上生长叶龄相似的叶子若干，剪下后用纱布拭净，称取二份，各重2g。61第61页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤3、一份插入小杯中放在40℃恒温箱内萎蔫0.5～1h，另一份插入水杯中放在室温下做对照。处理后分别用蒸馏水冲洗二次，并用洁净滤纸吸干。4、然后剪成长约1cm小段放入小玻杯中（大小以够容电极为度），并用玻棒或干净尼龙网压住，在杯中准确加入蒸馏水20ml，浸没叶片。放入真空干燥器，用抽气机抽气7～8min以抽出细胞间隙中的空气；重新缓缓放入空气，水即被压入组织中而使叶下沉。62第62页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤或用6-8mm的打孔器打取圆片10片，放入注射器中，吸水10ml,排出空气后，手指堵住前端小孔，同时把活塞向外抽拉，即可造成减压排出组织中的空气。轻放活塞，水即进入组织。如此反复抽拉数次，叶片沉入水下。63第63页，共82页，2023年，2月20日，星期五（四）实验步骤5、将抽过气的小玻杯取出（或把注射器里叶子连水倒入试管），放在实验桌上静置20min，然后用玻棒轻轻搅动叶片，在20～25℃恒温水浴下，用电导仪测定溶液电导率S1（μΩ/cm)。6、测过电导率后，再放入100℃沸水浴中15min，以杀死植物组织，取出后用自来水冷却10min并摇匀，在20～25℃恒温水浴下再测其煮沸电导率S2。64第64页，共82页，2023年，2月20日，星期五（五）实验结果与计算

记录结果，比较不同处理（萎蔫处理与对照）的叶片细胞透性的变化情况，并加解释。

计算公式如下：65第65页，共82页，2023年，2月20日，星期五（五）实验结果与计算相对电导度（L)=S1/S2伤害度（%）=（L处理-L对照）/（1-L对照）×100注：测定中一般应用去离子水，若用蒸馏水，则需设一空白试管（蒸馏水作空白）：相对电导度（L)=（S1-空白电导度）/（S2-空白电导度）66第66页，共82页，2023年，2月20日，星期五（六）实验注意事项１、取样要有代表性（应注意叶龄、叶片的大小）；２、所用器材必须干净、干燥；３、叶片要用蒸馏水洗净、擦干，并剪成大致相同的小块；４、要抽去叶片间隙空气，使水分渗入细胞进行水分交换。5、测定电导时要尽量避免高CO2气源，以免影响结果的准确性。6、温度对溶液的电导影响很大，故S1和S2须在相同温度下测定。67第67页，共82页，2023年，2月20日，星期五请按时交实验报告！！实验报告包括如下内容：1、实验项目2、实验原理3、试剂和器材4、操作方法（主要步骤）5、实验结果6、分析与讨论等68第68页，共82页，2023年，2月20日，星期五附：电导仪的使用方法DDS-A型电导率仪测量原理：在电解质的溶液中，带电的离子在电场的影响下，产生移动而产生电流，因此具有导电作用。其导电能力的强弱称为电导S，电导是电阻的倒数。R=pL/AS=1/PqL:电极间距（cm）A:电极的截面积(cm2)Q:常数，（一个电杯）K=1/p:电导率(us/cm)69第69页，共82页，2023年，2月20日，星期五电导仪的使用方法使用方法：1.表针调零：仪器在未接电源之前，观察表针是否指零，如不指零，可调整表头上的螺丝，使表针指零。2.电极的配用及电极常数调节：选铂黑电极使电极常数调节器的指示值与配套电极与实际电极常数值相对应。70第70页，共82页，2023年，2月20日，星期五电导仪的使用方法3.“高周”“底周”选择：为了提高测量精度，设有“高周”“底周”选择按键开关。当被测溶液的电导率﹤300us/cm[]4.如果在测量时，预先不知道被测溶液电导率的大小，应先把量程开关置于最大电导率测量档，然后逐档下降，以防表针打弯。71第71页，共82页，2023年，2月20日，星期五电导仪的使用方法校正：1.根据被测溶液的电导率范围选择相应的电极，并将电极插头插入电极插口内，旋紧插口上的紧固螺丝，再将电极插入溶液中。2.根据被测溶液电导率范围选择“高周”或“低周”，并将电极常数调节器调节在实际电极的常数上面。根据被测溶液的电导率范围选择“量程”档别。3.将选择开关置“校正位置”。4.接通电源，预热10分钟，此时表针应有指示，调节“调正“电位器，使表针指示在满度位置。72第72页，共82页，2023年，2月20日，星期五电导仪的使用方法测量：1.将选择开关置“测量”位置，此时表针示值乘以量程开关的倍率即为被测溶液的实际电导率。2.如果测量过程中表针指示太小或者超过满度，应适当改变“量程选择”开关于适当位置，这时应重新进行“校正”。3.读量程，对黑关读黑线数值，1～8量程使Ks对低周；对红关读红线数值，9～11量程使Ks对低周。73第73页，共82页，2023年，2月20日，星期五电导仪的使用方法注意事项：1.电极插头要保持清洁，电极引线不能潮湿，否则将引起测量误差。2.高纯水被盛入容器后，应迅速测量，否则电导率降低很快，因为空气中的CO2溶于水中，变成CO32-。3.被测溶液的容器必须清洁，无离子污染。74第74页，共82页，2023年，2月20日，星期五附：722型分光光度计的使用方法

722S型分光光度计是一种数码显示的可见光分光光度计，采用衍射光栅作为单色器，卤素灯作光源，使用波长范围为340-1000nm。除了可直接进行透光率T%和吸光度A的测定，还具有浓度因子设定和浓度直读的功能。75第75页，共82页，2023年，2月20日，星期五722型分光光度计的使用方法1、插上插头，接通电源，打开暗箱盖，预热20min。

*注意：分光光度计在接通电源而不用时，必须打开暗箱盖，以免光电管老化。2、将准备好的试剂倒入比色杯中，用吸水纸擦去比色杯