Abp1对Treg发育及功能的影响机制,免疫学论文

Abp1对Treg发育及功能的影响机制,免疫学论文摘要：目的讨论肌动蛋白连接蛋白1(actin-bindingprotein1,Abp1)对调节性T细胞〔Treg〕发育及功能的影响。方式方法通过流式细胞术检测野生型小鼠〔WT组〕和Abp1基因敲除小鼠〔KO组〕的胸腺、脾脏、浅表淋逢迎及肠系膜淋逢迎中T淋巴细胞及Treg细胞的比例、数量以及相关功能性分子的表示出，并利用体外抑制试验检测Abp1缺失对Treg抑制功能的影响。结果与WT小鼠相比，Abp1KO小鼠的胸腺、脾脏、浅表淋逢迎及肠系膜淋逢迎中的Treg的比例和细胞数目均没有明显的变化，同时缺失Abp1的Treg细胞的主要功能性分子ICOS、CTLA4、PD-1和NRP-1的表示出亦没有显着的差异，进一步实验发现缺失Abp1的Treg细胞对初始T细胞向活化T细胞分化的抑制作用较WT相比无明显变化。结论Abp1对Treg细胞的发育和功能没有显着影响。本文关键词语：肌动蛋白连接蛋白1;调节性T细胞;抑制功能;Abstract：Thisstudywasdesignedtoinvestigatetheeffectofprogranulinactin-bindingprotein1(Abp1)onthedifferentiationandfunctionofregulatoryTcell,andthemoleculemechanism.Wedetectedtheproportion,numberandfunctionalmoleculeexpressionofTlymphocytesandTregcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesofwild-typemice(WTgroup)andAbp1knockoutmice(KOgroup)bycytometryflow,andtheeffectofAbp1deletionontheinhibitoryfunctionofTreginvitrowasmeasuredaswell.ComparedwithWTmice,Abp1KOmicehadnosignificantdifferencesontheproportionandnumberofTregsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes,meanwhile,theexpressionofthemainfunctionalmoleculesICOS,CTLA4,PD-1andNRP-1inTregcellslackingAbp1werenotsignificantlydifferent.Furthermore,Abp1-absentTregcellsshowednosignificantchangesininhibitingTcellsactivationascomparingwithWTTregcells.Inconclusion,Abp1hasnosignificanteffectonthedevelopmentandfunctionofTregcells.Keyword：Actin-bindingprotein1;RegulatoryTcell;Suppressivefunction;肌动蛋白结合蛋白1(actin-bindingprotein1,Abp1〕也称为HIP-55或SH3P7，是一种由436个氨基酸组成，相对分子质量为48600的肌动蛋白效应蛋白。Abp1主要包含4个构造域，包括N端肌动蛋白解聚因子同源区〔ADF-H〕、带电荷的-螺旋形构造域〔chargedhelix〕、富含脯氨酸的构造域〔PRD〕和C末端Src同源性3(SH3〕构造域[1],Abp1可通过ADF-H和chargedhelix可直接结合F-actin，在各种组织中广泛表示出[2,3,4]。早期的研究发现Abp1介入酵母细胞的增殖和生存[5]，在成纤维细胞中，研究发现Abp1可通过其SH3区域与GTP酶dynamin直接结合进而介入细胞的内吞[6]。在大脑皮层发育经过中Abp1可通过调控N-钙黏附素的表示出进而影响神经元细胞的迁移、多极形态和细胞极性[7]，并且在神经元突触的构成和形态控制经过中也同样发挥重要作用[8]。在癌细胞中加强Abp1的表示出能够促进肺癌细胞的增殖、集落构成、迁移和侵袭，而抑制Abp1的表示出则可逆转这些作用[9,10]。但另有文献报道，Abp1与FHL2(fourandahalfLIMdomainprotein2〕的互相作用可抑制乳腺癌细胞的侵袭[11]。同时，Abp1在淋巴细胞中也发挥重要作用。B细胞激活后BCR信号可诱导Abp1的磷酸化并促进Abp1和与其结合的dynamin2向胞膜聚集，使其定位于细胞膜上的BCR与F-actin、dynamin2与细胞骨架的互相作用进一步促进了B细胞的抗原处理和递呈[12]。缺失Abp1后不仅引起BCR介导的B细胞抗原递呈功能受损，而且因Abp1缺失所致的肌动蛋白重塑异常致使与B细胞早期活化密切相关的BCR小体聚集及B细胞收缩亦遭到显着影响，导致缺失Abp1小鼠的边缘区B细胞、生发中心B细胞的数量以及本身免疫抗体的水平显着增加[13]。在T细胞中Abp1是TCR信号传导的重要调节分子，通过将肌动蛋白、细胞骨架和内吞作用[13]联络起来共同调节T细胞的激活[14,15]。调节性T细胞〔regulatoryTcell,Treg〕是一群具有免疫抑制功能的CD4+T细胞亚群，而Abp1对Treg功能的影响机制当前尚不清楚。Treg是调节免疫系统维持本身抗原耐受性和预防本身免疫性疾病的T细胞亚群。根据来源不同，Treg细胞可分为由胸腺分化的自然性Treg(naturalTreg,nTreg〕和主要存在于肿瘤组织和外周血中的诱导性Treg(inducedTreg,iTreg〕，早期称为抑制性T细胞[16]。Treg能够抑制T细胞增殖和细胞因子产生，并且在预防本身免疫中起关键作用[17]。然而当前尚未建立起Abp1敲除小鼠模型来研究其对Treg发育及功能的影响。本研究旨在讨论Abp1对Treg的发育及功能的影响机制。因而，使用Abp1敲除小鼠来进行实验分析在Abp1缺失的情况下对Treg的发育和功能所产生的影响。1、材料与方式方法1.1、实验小鼠本实验所用Abp1KO小鼠为Balb/c背景，饲养在IVC环境中。所有的小鼠实验均遵循重庆医科大学动物管理委员会和重庆医科大学儿童医院伦理委员会的规定。1.2、试剂和仪器HBSS、1640培养基均购于Hyclone公司；胎牛血清购于Gibco公司；流式抗体以及染色剂分别购于BD、Biolegend、eBioscience公司，分别为FITC-AnnexinV、PE-ICOS(TE.17G9〕、Percp/CY5.5-CD44(IM7〕、Percp-7AAD(BBllifescience〕、APC-CD25(PC61〕、APC/CY7-TCR〔H57-597〕、PE/CY7-CD62L(MEL-14〕、PB-CD4(RM45〕、BV510-CD8a(53-6.7〕、FITC-FOXP3(FJ-16s〕、PE-CTLA4(UC10-4B9〕、PE/CY7-PD-1(RMP1-30〕、PE-CD103(2E7〕、APC-neuropilin(3E12〕、PE-CY7-KI67、PE-CD4(GK1.5〕、APC-IL-4(11B11〕、BV421-IL-17(TC11-18H10.1〕、PE/CY7-IFN〔XMG1.2〕；普通流式固定打孔剂购于美国BD公司；Foxp3固定打孔剂购于eBioscience公司；PMA、离子霉素均购于美国Sigma公司；高尔基体阻断剂购于BDBioscience公司；小鼠淋巴细胞分离液Ficoll购于GEHealthcare公司。生物安全柜〔Forma〕、高压灭菌锅〔TomyES-315〕、超纯水系统〔Millipore〕、流式细胞仪〔BD〕、台式冷冻离心机〔ThermoScientific〕、室温台式离心机〔HettichMikro〕、细胞计数仪〔Countstar〕。1.3、单个核细胞的制备用CO2麻醉小鼠后将其断颈处死，分别取出小鼠脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎，在无菌条件下研磨，脾脏细胞悬液用3ml的Ficoll进行密度梯度离心，汲取单个核细胞层计数。1.4、流式细胞术检测细胞外表分子提取脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎单个核细胞分别取1106个单个核细胞于96孔细胞培养板中，将抗体用不同浓度混于含有2%FBS的PBS缓冲液中。用50?l/孔配制的抗体稀释液垂悬单个核细胞，冰上避光孵育30min后用PBS缓冲液洗涤细胞2次，用200?lPBS缓冲液将细胞重悬后转移至流式管中，上机。使用FlowJoTMV10软件分析数据。1.5、流式细胞术检测细胞内分子提取脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎单个核细胞，分别取2106个细胞于96孔细胞培养板中，用200?l细胞固定剂固定30min，打孔剂洗涤1次后用打孔剂打孔5min。将抗体用不同稀释比例混于打孔剂。用50?l/孔配制的抗体稀释液垂悬单个核细胞，冰上避光孵育30min后用PBS缓冲液洗涤细胞2次，用200?lPBS缓冲液将细胞重悬转移至流式管中，上机。使用FlowJoTMV10软件分析数据。1.6、体外检测Treg细胞抑制功能提取WT及Abp1KO小鼠脾脏单个核细胞，在无菌条件下使用鼠CD4/CD25阳性T细胞分选试剂盒〔Miltenyibiotec,5190702555〕分选出Treg细胞，使用小鼠初始CD4+T细胞分选试剂盒〔Miltenyibiotec,5191209633〕分选出初始T细胞。将使用Celltracer(Technologies,1702579〕标记后的初始T细胞后与不同浓度的Treg细胞共培养于96孔板中，用1640+10%FBS培养基补足200?l，每孔参加1?lCD3/CD28-Beads(Gibco,11456D〕刺激，在37℃的5%CO2培养箱共培养72h。72h后收集细胞用流式细胞术检测初始T细胞的增殖情况。使用FlowJoTMV10软件分析数据。1.7、T细胞刺激后检测胞内细胞因子配制刺激剂：1640培养基中参加胎牛血清〔100?l/ml〕、离子霉素〔1?mol/L〕、GolgiSTOP(1∶1000〕、PMA(50ng/ml〕。提取脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎单个核细胞，分别取2106个细胞于24孔板中，每孔参加1ml配制好的刺激剂垂悬后置于37℃的5%CO2培养箱中培养5h。5h后收集细胞，将PB-CD4、BV510-CD8a、APC/CY7-TCR、Percp/CY5.5-CD444种抗体以不同稀释比例混于2%FBS的PBS缓冲液中，然后取50?l/孔的抗体稀释液重悬细胞进行染色。冰上避光孵育30min后用PBS缓冲液洗涤细胞1次。然后，用200?l细胞固定剂固定30min，打孔剂洗涤1次后用打孔剂打孔5min。将APC-IL-4、PE/CY7-IFN-、BV421-IL-173种抗体用不同稀释比例混于打孔剂中，并取50?l/孔配制的抗体稀释液垂悬单个核细胞，冰上避光孵育30min后用PBS缓冲液洗涤细胞2次，用200?lPBS缓冲液将细胞转移至流式管中，上机。使用FlowJoTMV10软件分析数据。1.8、统计学分析实验数据均用GraphPadPrism5统计软件分析，组间差异不同采用两独立样本t检验，以P0.05以为差异有统计学意义。2、结果2.1、Abp1敲除后对CD4+T细胞和CD8+T细胞数量的影响为了研究Abp1敲除后对CD4+T细胞和CD8+T细胞数量的影响，我们使用流式细胞术对来自胸腺、脾脏、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎的单个核细胞进行检测。我们发现Abp1KO鼠与野生型小鼠〔WT〕相比，CD4+和CD8+T细胞在脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎中细胞比例和数量差异均不明显〔图1〕，这与文献报道的Abp1缺失后对胸腺和脾脏中T细胞的影响结果一致[15]。由此我们能够揣测，Abp1敲除后对T淋巴细胞中CD4+和CD8+的细胞比例和数量没有显着影响。2.2、Abp1敲除后对CD4+T淋巴细胞活化的影响为了研究Abp1敲除后对CD4+T细胞中细胞活化的影响，我们使用多种抗体对来自脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎单个核细胞进行染色来区分CD4+T细胞的不同细胞亚群，并使用流式细胞术检测。我们发现Abp1KO鼠与WT鼠相比，初始CD4+T细胞〔CD44-CD62L+〕与活化的CD4+T细胞〔CD44+CD62L-〕的比例和数量在脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎中均没有明显的差异〔图2〕。由此我们以为，Abp1敲除后对T淋巴细胞中CD4+细胞的活化影响不大。2.3、Abp1敲除后对CD8+T淋巴细胞活化的影响为了进一步研究Abp1敲除后对CD8+T细胞中细胞活化的影响，我们使用多种抗体对来自脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎单个核细胞进行染色来区分CD8+T细胞的不同细胞亚群，并使用流式细胞术检测。我们发现Abp1KO鼠与WT鼠相比，幼稚的CD8+T细胞〔CD44-CD62L+〕与活化的CD8+T细胞〔CD44+CD62L-〕在脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎中均无明显的差异〔图3〕。因而能够揣测，Abp1敲除后对T淋巴细胞中CD8+细胞的活化影响同样较小。2.4、Abp1敲除后对Treg的影响为了研究Abp1敲除后对Treg的影响，我们使用多种抗体对来自脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎单个核细胞进行染色，并用流式细胞术来检查Treg的变化。分别使用CD4+CD25+和CD4+FOXP3+抗体来标记Treg。我们发如今脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎中，无论是使用CD4+CD25+或使用CD4+FOXP3+标记的Abp1KO小鼠的Treg比例及细胞数与WT鼠相比变化均不大〔图4、图5〕。由此能够揣测出Abp1的缺失对小鼠T细胞外周稳态影响不大。图1小鼠缺失Abp1对CD4+T细胞和CD8+T细胞数量的的影响Fig1TheeffectofAbp1deletiononthenumberofCD4+TcellsandCD8+Tcellsinmicea)FlowcytometryanalysisofCD4+andCD8+Tcellsinthymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesfromwildtypeandAbp1KOmice;b)thepercentageofCD4+cellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);c)thenumberofCD4+cellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);d)theproportionofCD8+cellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);e)thenumberofCD8+cellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4).1Abp1CD4+TCD8+T2.5、Abp1缺失对Treg功能的影响为了进一步确认Abp1缺失对小鼠Treg功能分子的影响，我们使用流式细胞术分别检测了Treg细胞中诱导共刺激分子〔induciblecostimulatory,ICOS〕、细胞毒性T淋巴细胞相关抗原〔cytotoxicTlymphocyteassociatedantigen4,CTLA4〕、程序性死亡分子1(programmeddeath-1,PD-1〕和神经纤维毛蛋白-1(neuropilin-1,NRP-1〕的表示出。华而不实，ICOS能够稳定表示出在CD4+CD25+Treg细胞外表促进T细胞的增殖和分化，CTLA4是表示出于活化的CD4+和CD8+T细胞的外表分子，能够下调或终止T细胞活化，PD-1表示出于活化的T细胞并抑制T细胞的增殖和细胞因子的产生，NRP-1具有负向免疫调节作用。检测结果发现,ICOS、CTLA4、PD-1、NRP-1这4种功能分子在Abp1KO小鼠的脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎中的表示出均没有差异〔图6a～6d〕。为了进一步了解Abp1的缺失对Treg的抑制功能能否产生影响，我们将分选出的WT小鼠的初始T细胞同Abp1缺陷小鼠的Treg或野生型小鼠的Treg共培养,并参加CD3/CD28刺激初始T细胞增殖,共培养3d后检测初始T细胞的增殖情况。结果显示WT小鼠组和KO小鼠组的初始T细胞增殖没有明显差异〔图6e〕。这些结果表示清楚Abp1对Treg的功能没有明显的影响。图2小鼠缺失Abp1对CD4+T淋巴细胞的活化的影响Fig2TheeffectofAbp1deletionontheactivationofCD4+Tlymphocyteinmicea)FlowcytometryanalysisofnaiveCD4+TcellsandactivatedCD4+Tcellsinthymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesfromwildtypeandAbp1KOmice;b)theproportionofnaiveCD4+Tcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);c)thenumberofnaiveCD4+Tcellsinthymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);d)theproportionofactivatedCD4+Tcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);e)thenumberofactivatedCD4+Tcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4).2.6、缺失Abp1的Treg对活化的CD4+T以及CD8+T细胞产生的细胞因子能力的影响为了进一步了解缺失Abp1的Treg的对活化的CD4+T以及CD8+T细胞产生的细胞因子的能力的影响。我们使用PMA和离子霉素对Abp1KO小鼠和WT小鼠的脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎的单个核细胞进行刺激，并使用流式细胞术检测刺激后的细胞产生的细胞因子。我们分别检测了CD4+T细胞产生的-干扰素〔IFN-〕、白介素4(IL-4〕和白介素17(IL-7〕以及CD8+T细胞中的IFN-。IFN-介入介导细胞免疫应答，诱导T细胞活化，促进IgG的生产；IL-4促进CD4+T细胞的分化，主要介导体液免疫；IL-17介入固有免疫和炎症的发生。结果显示，KO小鼠的脾脏、胸腺、浅表淋逢迎和肠系膜淋逢迎CD4+T细胞产生IFN-、IL-4和IL-17以及CD8+T细胞产生IFN-与WT鼠相比均没有差异。〔图7〕由此可知，缺失Abp1的Treg对活化的CD4+T以及CD8+T细胞产生细胞因子的能力没有显着影响。图3小鼠缺失Abp1对CD8+T淋巴细胞的活化的影响Fig3TheeffectofAbp1deletionontheactivationofCD8+TlymphocyteinAbp1KOmicea)FlowcytometryanalysisofnaiveCD8+TandactivatedCD8+Tcellsinthymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesfromWTandAbp1KOmice;b)theproportionofnaiveCD8+Tcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);c)thenumberofnaiveCD8+Tcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);d)theproportionofactivatedCD8+Tcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);e)thenumberofactivatedCD8+Tcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4).3、讨论Abp1是一种能够直接结合F-actin的肌动蛋白效应蛋白，广泛分布于各类细胞中。由于与肌动蛋白密切相关，Abp1不仅介入调控细胞的内吞作用[6]，同时介入调节多种细胞的伸展和迁移。有研究发现Abp1的缺失不仅影响小鼠白细胞的黏附，同时抑制白细胞向内皮细胞的扩散，进一步研究发现，在b2整合素的刺激下Abp1主要聚集在极化的中性粒细胞前缘，同时增加了与肌动蛋白的结合进而促进中性粒细胞的迁移[18]。同时，Abp1对神经元细胞和乳腺癌细胞的迁移均有调控作用[7,11]。固然有报道Abp1的缺失会导致小鼠出现明显的体质量下降和较高的死亡率[15]，但是我们的Abp1小鼠模型在饲养经过中并没有发现类似的现象。图4Abp1的缺失对CD4+CD25+Treg细胞的影响Fig4TheeffectofAbp1deletiononCD4+CD25+Tregcellsa)CD25expressioninthymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesCD4+TcellsfromWTandAbp1KOmice;b)theproportionofCD4+CD25+Tregsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);c)thenumberofCD4+CD25+Tregcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4).图5Abp1的缺失对CD4+Foxp3+Treg细胞的影响Fig5TheeffectofAbp1deletiononCD4+Foxp3+Tregcellsa)Foxp3expressioninthymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesCD4+TcellsofWTandAbp1KOmice;b)theproportionofCD4+Foxp3+Tregsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);c)thenumberofCD4+Foxp3+Tregcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4).图6Abp1缺失对Treg功能的影响Fig6TheeffectofAbp1deletiononthefunctionofTrega)wildtypeandAbp1KOmice(n=4);b)themeanfluorescenceintensityofCTLA4inCD4+Foxp3+Tregcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);c)themeanfluorescenceintensityofPD-1inCD4+Foxp3+Tregcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);d)themeanfluorescenceintensityofNRP-1inCD4+Foxp3+Tregcellsinthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodes(n=4);e)naiveTandTregcellsinspleenfromWTandAbp1KOmiceweresortedseparately,andtheproliferationofnaiveTcellswasdetectedbyflowcytometryafterco-cultivationinacertainproportionunderCD3+CD28stimulationfor3days.在T细胞的研究中发现，Abp1可通过抑制TCR信号对NFAT的激活以及下调TCR的表示出对TCR信号进行负向调控[14]。同时，T细胞的增殖亦遭到Abp1的影响[15]。在活化的T细胞中，Abp1聚集于T细胞与抗原递呈细胞接触的免疫突触中[14]，亦有研究报道Abp1与F-actin在空间上的分离可抑制T细胞的运动和活性，进而降低了T细胞浸润以实现异源嵌合分子的免疫抑制活性[19]。这些研究讲明Abp1对于T细胞的迁移有显着的影响。Treg细胞是一群主要在胸腺发育具有免疫抑制作用的T细胞亚群，其在胸腺发育成熟后迁移到外周各淋巴器官发挥其调节作用，因而，我们猜想Abp1有可能调控Treg从胸腺至外周的迁移。然而通过流式细胞术对胸腺、脾脏、皮下淋逢迎以及肠系膜淋逢迎的Treg进行分析后发现，Abp1缺失小鼠的Treg细胞在胸腺及外周淋巴器官内的Treg比例和数量与野生型小鼠相比没有明显差异，讲明Abp1的缺失对于Treg的外周迁移并没有明显的影响，提示Abp1固然是结合F-actin的效应分子，与肌动蛋白重组有密切关系，然而肌动蛋白重组对于Treg的迁移可能主要通过其他分子进行调控，Abp1通过肌动蛋白重组对Treg外周迁移的影响可能被其他肌动蛋白调节相关分子的调节所代偿。已有报道，在生长因子的刺激下，Abp1主要聚集在F-actin富集的迁移细胞的前缘，并且主要定位于Arp2/3复合物处[3]，而Abp1又能够与WIP通过其SH3区域直接结合[1]，在淋巴细胞中，WIP和另一重要肌动蛋白调控分子WASP亦可通过Arp2/3调控肌动蛋白重组，并且已报道WASP对于Treg的迁移和归巢具有显着影响[20]，因而我们猜想，Abp1对于Treg的影响有可能遭到WIP和WASP的补偿。图7缺失Abp1的小鼠Treg对活化的CD4+T以及CD8+T细胞产生的细胞因子的影响Fig7TheeffectofTregfromAbp1KOmiceontheabilityofactiveCD4+TandCD8+Tcellstoproducecytokinesa)IFN-,IL-4andIL-17productioninthymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesCD4+TcellsfromWTandAbp1KOmice.IFN-inthymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesCD8+Tcells;b)theproportionofIFN-inthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesCD4+Tcells(n=4);c)theproportionofIL-4inthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesCD4+Tcells(n=4);d)theproportionofIL-17inthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesCD4+Tcells(n=4);e)theproportionofIFN-inthethymus,spleen,peripherallymphnodesandmesentericlymphnodesCD8+Tcells(n=4).7Abp1TregCD4+TCD8+T另外，IL-2是调控Treg的分化和功能重要的细胞因子，IL-2能够促进Treg的发育、生存以及对T细胞的抑制功能[21]。有研究报道Abp1缺失的小鼠T细胞分泌的IL-2含量明显减少[15]，因而我们使用体外抑制试验检测缺失Abp1的Treg的抑制功能能否遭到影响，结果同样显示Treg的功能在缺失Abp1的情况下没有显着的变化，这与我们检测到胸腺及各外周淋巴器官中幼稚CD4与活化CD4的比例变化以及Treg外表功能分子的表示出未有明显改变相一致。讲明Abp1导致的IL2改变并不能影响Treg的抑制功能。总之，固然Abp1是调控肌动蛋白重要的效应分子，并且可调节多种细胞的迁移以及淋巴细胞的信号，然而Abp1对于Treg的迁移及功能的影响是有限的。以下为参考文献[1]CortesioCL,PerrinBJ,BenninDA,eta1.Actin-bindingprotein-1interactswithWASp-interactingproteintoregulategrowthfactor-induceddorsalruffleformation[J].MolBiolCell,2018,21(1):186-197.[2]LarboletteO,WollscheidB,SchweikertJ,eta1.SH3P7isacytoskeletonadapterproteinandiscoupledtosignaltransductionfromlymphocyteantigenreceptors[J].MolCellBiol,1999,19(2):1539-1546.[3]KesselsMM,EngqvistGoldsteinAE,DrubinDG.Associationofmouseactin-bindingprotein1(mAbp1/SH3P7),anSrckinasetarget,withdynamicregionsofthecorticalactincytoskeletoninresponsetoRac1activation[J].MolBiolCell,2000,11(1):393-412.[4]EnsenatD,YaoZ,WangXS,eta1.Anovelsrchomology3domain-containingadaptorprotein,HIP-55,thatinteractswithhematopoieticprogenitorkinase1[J].JBiolChem,1999,274(48):33945-3350.[5]LilaT,DrubinDG.EvidenceforphysicalandfunctionalinteractionsamongtwoSaccharomycescerevisiaeSH3domainproteins,anadenylylcyclase-associatedproteinandtheactincytoskeleton[J].MolBiolCell,1997,8(2):367-385.[6]KesselsMM,EngqvistGoldsteinAE,DrubinDG,eta1.MammalianAbp1,asignal-responsiveF-actin-bindingprotein,linkstheactincytoskeletontoendocytosisviatheGTPasedynamin[J].JCellBiol,2001,153(2):351-366.[7]InoueS,HayashiK,FujitaK,eta1.Drebrin-like(Dbnl)controlsneuronalmigrationviaregulatingN-Cadherinexpressioninthedevelopingcerebralcortex[J].JNeurosci,2022,39(4):678-691.[8]HaeckelA,AhujaR,GundelfingerED,eta1.TheactinbindingproteinAbp1controlsdendriticspinemorphologyandisimportantforspineheadandsynapseformation[J].JNeurosci,2008,28(40):10031-10044.[9]LiZ,ParkHR,ShiZ,eta1.Pro-oncogenicfunctionofHIP-55/Drebrin-like(DBNL)throughSer269/Thr291-phospho-sensormotifs[J].Oncotarget,2020,5(10):3197-3209.[10]YangC,LiZ,ShiZ,eta1.RegulationofcellsurvivalbytheHIP-55signalingnetwork[J].MolBiosyst,2020,10(6):1393-1399.[11]BoatengLR,BenninD,DeOliveiraS,eta1.Mammalianactin-bindingprotein-1/Hip-55interactswithFHL2andnegativelyregulatescellinvasion[J].JBi