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文档简介

机能实验学总论

Introductionof

FunctionalExperiment南京医科大学机能实验学总论

IntroductionofFunct机能实验学的学习目的掌握机能学实验的基本技能和操作学会采集生物信号,并对其进行分析机能实验学的学习目的掌握机能学实验的基本技能和操作离体实验在体实验机能学实验的基本方法活体解剖实验慢性实验离体实验机能学实验的基本方法活体解剖实验慢性实验机能学实验常用仪器生物体生物信号放大器A/D微机刺激器程控换能器程控机能学实验常用仪器生物体生物信号放大器A/D微机刺激器程控换机能学实验常用手术器械1、滴管2、玻璃分针3、气管插管4、动脉夹5、动脉插管6、手术刀7、直(头)止血钳8、弯(头)止血钳9、眼科镊10、蛙心夹11、手术剪12、金属探针13、铜锌弓13机能学实验常用手术器械1、滴管13A神经干动作电位-课件3刺激器刺激方式:单次,连续,定时,串刺激刺激参数:刺激强度,波宽,频率刺激器刺激方式:单次,连续,定时,串刺激实验报告书写实验名称实验目的实验原理实验结果(附图)结果分析与思考实验报告书写实验名称神经干动作电位的引导、传导速度测定和

不应期的观察神经干动作电位的引导、传导速度测定和

不应期的观察动作电位(AP):

可兴奋细胞,在静息状态下,如果受到阈上刺激,其膜电位会发生迅速的一过性波动,这种膜电位的波动,称AP。动作电位(AP):动作电位的记录方法细胞内记录(单向动作电位)

细胞外记录(双向动作电位)基础知识动作电位的记录方法细胞内记录细胞外记录基础知识实验目的掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。观察机械损伤对神经兴奋和传导的影响掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法。实验目的掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形神经干由许多神经纤维组成。其动作电位是以膜外记录方式记录到的复合动作电位如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面,兴奋波先后通过两个电极处,便引导出两个方向相反的电位波形,称双相动作电位实验原理实验原理双相动作电位兴奋区细胞外引导电极检流计双相动作电位兴奋区细胞外引导电极检流计方法和步骤制备坐骨神经干标本

1.破坏脑和脊髓

2.剪除躯干上部及内脏

3.剥去皮肤(手及用过的器械用自来水冲洗)

4.分离两腿

5.制坐骨神经干标本连接实验装置方法和步骤制备坐骨神经干标本

1.破坏脑和脊髓观察项目1.引导神经干双相动作电位观察刺激强度对动作电位幅度的影响找出阈强度和最大刺激强度2.测量动作电位传导速度:v=s/t。3.观察不应期:双刺激(串数2);间隔↓4。观察单向动作电位:机械损伤观察项目1.引导神经干双相动作电位动作电位传导速度的测定

MeasurementofConductionVelocityofAP-+SΔt

传导速度测定

υ=

SACΔt刺激器输入通道R1-Rr1+R2-R2+动作电位传导速度的测定

MeasurementofCon注意事项抓取蟾蜍时,禁忌挤压两侧耳部的毒腺,禁止将蟾蜍头部对着自己及他人,以免其眼后线处分泌毒液射入眼中。剥皮后须将手及用过的器械洗净,再进行下一步操作用玻璃分针去除神经周围的结缔组织,避免用力牵拉神经或用金属器械夹捏神经,以防神经损伤。标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使神经兴奋性稳定。实验过程中也需经常用任氏液湿润标本,以防影响标本的机能。注意事项注意事项神经干要有足够的长度,制成后须放在任氏液(Ringer’ssolution)中浸泡数分钟一定要将神经干粗端放于刺激电极一侧(why?)标本应平直地放在电极上与电极密切接触,保持湿润,但要用滤纸吸去屏蔽盒中过多的任氏液,以防短路

注意事项神经干要有足够的长度,制成后须放在任氏液(Ringe结果与讨论双相动作电位图结果与讨论双相动作电位图传导速度传导速度应为最快的Aα类神经纤维的传导速度,约30-40m/s,普通实验条件下测得应为15-30m/s之间绝对不应期的时程约相当于峰电位的时程,数ms不等传导速度思考与探讨实验中所得动作电位是否符合“全或无(allornone)”的性质?为什么?两个记录电极之间的神经损伤后,动作电位有何变化?为什么?为何要将神经的中枢端放置在靠近刺激电极处?如果反放会有何结果?思考与探讨实验中所得动作电位是否符合“全或无(allor机能实验学总论

Introductionof

FunctionalExperiment南京医科大学机能实验学总论

IntroductionofFunct机能实验学的学习目的掌握机能学实验的基本技能和操作学会采集生物信号,并对其进行分析机能实验学的学习目的掌握机能学实验的基本技能和操作离体实验在体实验机能学实验的基本方法活体解剖实验慢性实验离体实验机能学实验的基本方法活体解剖实验慢性实验机能学实验常用仪器生物体生物信号放大器A/D微机刺激器程控换能器程控机能学实验常用仪器生物体生物信号放大器A/D微机刺激器程控换机能学实验常用手术器械1、滴管2、玻璃分针3、气管插管4、动脉夹5、动脉插管6、手术刀7、直(头)止血钳8、弯(头)止血钳9、眼科镊10、蛙心夹11、手术剪12、金属探针13、铜锌弓13机能学实验常用手术器械1、滴管13A神经干动作电位-课件3刺激器刺激方式:单次,连续,定时,串刺激刺激参数:刺激强度,波宽,频率刺激器刺激方式:单次,连续,定时,串刺激实验报告书写实验名称实验目的实验原理实验结果(附图)结果分析与思考实验报告书写实验名称神经干动作电位的引导、传导速度测定和

不应期的观察神经干动作电位的引导、传导速度测定和

不应期的观察动作电位(AP):

可兴奋细胞,在静息状态下,如果受到阈上刺激,其膜电位会发生迅速的一过性波动,这种膜电位的波动,称AP。动作电位(AP):动作电位的记录方法细胞内记录(单向动作电位)

细胞外记录(双向动作电位)基础知识动作电位的记录方法细胞内记录细胞外记录基础知识实验目的掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。观察机械损伤对神经兴奋和传导的影响掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法。实验目的掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形神经干由许多神经纤维组成。其动作电位是以膜外记录方式记录到的复合动作电位如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面,兴奋波先后通过两个电极处,便引导出两个方向相反的电位波形,称双相动作电位实验原理实验原理双相动作电位兴奋区细胞外引导电极检流计双相动作电位兴奋区细胞外引导电极检流计方法和步骤制备坐骨神经干标本

1.破坏脑和脊髓

2.剪除躯干上部及内脏

3.剥去皮肤(手及用过的器械用自来水冲洗)

4.分离两腿

5.制坐骨神经干标本连接实验装置方法和步骤制备坐骨神经干标本

1.破坏脑和脊髓观察项目1.引导神经干双相动作电位观察刺激强度对动作电位幅度的影响找出阈强度和最大刺激强度2.测量动作电位传导速度:v=s/t。3.观察不应期:双刺激(串数2);间隔↓4。观察单向动作电位:机械损伤观察项目1.引导神经干双相动作电位动作电位传导速度的测定

MeasurementofConductionVelocityofAP-+SΔt

传导速度测定

υ=

SACΔt刺激器输入通道R1-Rr1+R2-R2+动作电位传导速度的测定

MeasurementofCon注意事项抓取蟾蜍时,禁忌挤压两侧耳部的毒腺,禁止将蟾蜍头部对着自己及他人,以免其眼后线处分泌毒液射入眼中。剥皮后须将手及用过的器械洗净,再进行下一步操作用玻璃分针去除神经周围的结缔组织,避免用力牵拉神经或用金属器械夹捏神经,以防神经损伤。标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使神经兴奋性稳定。实验过程中也需经常用任氏液湿润标本,以防影响标本的机能。注意事项注意事项神经干要有足够的长度,制成后须放在任氏液(Ringer’ssolution)中浸泡数分钟一定要将神经干粗端放于刺激电极一侧(why?)标本应平直地放在电极上与电极密切接触,保持湿润,但要用滤纸吸去屏蔽盒中过多的任氏液,以防短路

注意事项神经干要有足够的长度,制成后须放在任氏液(Ringe结果与讨论双相动作电位图结果与讨论双相动作电位图传导速度传导速度应为最快的Aα类神经纤维的传导速度,约3

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