用正交法测定几种因素对酶活力的影响实验报告(共10页)

1、精选优质文档-倾情为你奉上用正交法测定几种因素对酶活力的影响一、前言正交实验法正交实验法就是利用排列整齐的表-来对试验进行整体设计、综合比较、统计分析，实现通过少数的实验次数找到较好的生产条件，以达到最高生产工艺效果。正交表能够在因素变化范围内均衡抽样，使每次试验都具有较强的代表性，由于正交表具备均衡分散的特点，保证了全面实验的某些要求，这些试验往往能够较好或更好的达到实验的目的。包括两部分内容:第一，是怎样安排实验;第二，是怎样分析实验结果。（enzyme activity）也称为，是指一定反应的能力。酶活力的大小可用在一定条件下，酶催化某一的速度来表示，酶催化愈大，酶活力愈高，反之活力愈低

2、。测定酶活力实际就是测定的速度。促反应速度可用单位时间内、单位中底物的减少量或产物的增加量来表示。在一般的酶促反应体系中，底物往往是过量的，测定初速度时，底物减少量占总量的极少部分，不易准确检测，而产物则是从无到有，只要测定方法灵敏，就可准确测定。二、实验目的1.学习并掌握正交法应用原理。2.采用正交法测定多种因素对酶活力的影响。三、实验原理酶促反应常常同时受到多种因素(包括激活剂和抑制剂等)的交互影响，可采用正交法进行综合研究，即通过少量试验收到更好的效果：多快好省。本实验以正交法同时测定S、E、温度和pH值对trypsin活性的影响，以求得酶活最大时相应影响因素的最佳值(水平)，并借此初步

3、掌握正交法的使用。四、实验器材和试剂实验器材：专心-专注-专业试管漏斗温度计吸管恒温水浴锅分光光度计实验试剂：2%血红蛋白液(Hb)15%三氯醋酸液(TCA)trypsin酶液0.04mol/L巴比妥缓冲液(pH 7, 8, 9)考马斯亮蓝染液 五、实验操作1.实验设计本实验为四因素三水平(总试验次数34=81)，可选用L9正交表（仅需9次试验)，展开后其特性为均衡搭配（1）每列中水平数1、2、3出现次数相同，均为3次；（2）每两列的横行数对(1-1/1-2/3-2/3-3)各出现一次。列号试验号1234111112122231333421235223162312731328321393321

4、2.将各因素及其相应水平参数依次填入得到实验安排表 试验号试剂/ml1682493572%血红蛋白液0.20.50.80.20.50.80.20.50.8缓冲溶液pH72.6pH81.7pH91.7pH82.3pH92.3pH72.0pH92.0pH72.0pH82.037预温5min50预温5min60预温5min酶液0.20.80.50.50.20.80.80.50.237反应10min50反应10min60反应10min（1）各试管编号，分别加入对应容量的底物(2% Hb)和相应pH值的缓冲液，混匀；（2）同温处理的3支试管同时预温5min；（3）各试管依序分别加入对应容量的trypsi

5、n酶液(统一加样时间间隔)，混匀；（4）同温处理的3支试管置对应恒温水浴中反应10min；（5）各试管依次加入15%三氯醋酸液2ml，混匀以终止反应；（6）非酶促对照：另取一试管，先加入2%血红蛋白液0.5ml及pH8缓冲液2.0ml，再加15%三氯醋酸液2.0ml，混匀静置10min后再加入酶液0.5ml；（7）上述各管反应液室温静置15min后过滤，取滤液待测酶活；（8）酶活测定(考马斯亮蓝法，标准曲线制备略)：取试管若干支编号，分别加入对应的样品滤液1.0ml及考马斯亮蓝液4.0ml，混匀，室温静置3min，以非酶促对照管为空白，于波长595nm比色测定。3.数据记录及分析将各管测定所得

6、光密度值对应填入表格，分别算出各因素一、二及三水平的试验结果总和、和，并分别取其平均值计算相应的极差(各列中最大与最小值之差)；比较各因素极差的大小以评估各因素对酶活的影响，并对酶活最高时的各因素水平作一直观分析。六、实验结果及数据处理1.实验数据： pH值温度pH7pH8pH9测量值平均值测量值平均值测量值平均值370.0030.00230.0680.06670.1850.18400.0020.0660.1850.0020.0660.182500.0590.05600.0960.09670.0790.08100.0580.0970.0820.0510.0970.082600.1400.141

7、70.1630.16100.0650.06600.1410.1590.0640.1440.1610.0692.实验数据处理分析：列号试验号1S/ml2E/ml3温度/（）4pH试验结果A680nm1234567891 0.21 0.21 0.22 0.52 0.52 0.53 0.83 0.83 0.81 0.22 0.53 0.81 0.22 0.53 0.81 0.22 0.53 0.81 372 503 602 503 601 373 601 372 501 72 83 93 91 72 82 83 91 70.00230.05600.14170.09670.16100.06670.06

8、600.18400.0810（一水平试验结果总和）（二水平试验结果总和）（三水平试验结果总和）0.20000.92470.33100.16500.40100.28940.25300.23370.36870.24430.18870.4224/3/3/30.06670.30820.11030.05500.13370.09650.08430.07790.12290.08140.06290.1408极差0.24150.07870.04500.0779由上述表格各因素极差大小可看出，底物浓度对于酶活力影响最大，其次是酶浓度，再次是pH，最后是温度。根据上表数据，以吸光度值（/3、/3、/3）为纵坐标，因

9、素的水平数为横坐标作图图一 底物浓度对酶活力的影响从图一可看出，在一定浓度范围内，随着底物浓度的增大，酶活力是逐渐降低的，约在底物浓度为0.5mol/ml时酶活力达到最低。图二 酶浓度对酶活力的影响从图二可看出，在一定浓度范围内，随着酶浓度升高，酶活力是逐渐降低的，约在酶浓度为0.55mol/ml时酶活力达到最低。图三 温度对酶活力的影响从图三可看出，在一定浓度范围内，随着温度升高，反应速率是逐渐升高的，即酶活力是逐渐升高的，约在温度为50时酶活力达到最高。图四 pH对酶活力的影响从图四可看出，在一定浓度范围内，随着pH升高，反应速率是逐渐升高的，即酶活力是逐渐升高的，约在pH为8时酶活力达到最高。七、实验注意事项1.每加入一种试剂都需要充分混匀。2.应确保酶促反应的温度及反应时间的准确性。八、思考题1.正交法有何优点？答：通过少数的实验次数找到较好的生产条件，能够在因素变化范围内均衡抽样，使每次试验都具有较强的代表性，保证了全面实验的某些要求，这些试验往往能够较好或更好的达到实验的目