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文档简介

1、    糖皮质激素诱导体外人嗜酸性粒细胞凋亡的研究        嗜酸性粒细胞(Eos)是支气管哮喘等过敏性疾病的关键效应细胞,Eos浸润增加是这些疾病的病理特征。白细胞介素(IL)-5、粒-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)和IL-3是Eos的主要存活因子。糖皮质激素(GCS)是目前治疗Eos增多性炎症最有效的抗炎药物,用药后体内Eos迅速降低,其机制尚未完全清楚。我们采用体外细胞培养方法,观察了GCS和细胞因子对Eos凋亡的作用,以探讨GCS治疗哮喘的机制。 材料和方法

2、1主要试剂人重组(rh)IL-3、IL-5、GM-CSF由美国遗传研究所Meg O'Donell教授惠赠。Percoll分离液购自北京中山公司(Pharmacia公司产品),淋巴细胞分离液购自上海生化公司,fMLP、地塞米松(DM)为Sigma公司产品,原位细胞凋亡检测试剂盒为宝灵曼公司产品。2Eos分离方法采用改良的Percoll分离液密度梯度分离Eos。抽取健康献血者外周静脉血50ml,枸橼酸钠(130mmol/L,pH 7.4)抗凝,将稀释血液加在淋巴细胞分离液上面(相对密度1.077),1000×g离心20min。取下层粒细胞和红细胞,加入NH4Cl溶液冰浴15min

3、。400×g离心7min。Hanks液漂洗沉淀细胞。将10nmol/L fMLP与细胞悬液37孵育10min。将细胞悬液加于Percoll分离液上面,上层相对密度1.082,下层相对密度1.010。1000×g离心15min。收集界面细胞。分离后所得Eos 细胞活力和纯度>97%。3Eos培养纯化的Eos悬浮于含体积分数为10%胎牛血清(FCS)的RPMI 1640培养基,置于96孔平底培养板,每孔细胞数2.0×105,总体积200l。体积分数为5%CO2、37条件下培养。分别加入不同浓度的细胞因子IL-5、IL-3、GM-CSF(0.1100.0U/ml)

4、和DM(10-1010-6mol/L),以不加入细胞因子或药物的培养孔作为对照,动态观察Eos活力和变化。Eos活力检测方法采用锥虫蓝(台盼蓝)拒染法,计算活细胞百分率。4原位细胞凋亡检测参照试剂盒说明略加改进。将细胞置于含体积分数为0.3% H2O2、1g/L NaN3的溶液中封闭15min。用体积分数为0.1%的Triton X-100 4通透2min。加入由末端脱氧核苷酸转移酶(TdT)、脱氧三磷酸核苷(dNTP)和荧光素标记的脱氧三磷酸尿苷(dUTP)组成的混合物30l,37反应60min。加入过氧化物酶(POD)连接的抗荧光素抗体30l,37反应30min。加入50l 0.5g/L

5、DAB/体积分数为0.01% H202显色10min,苏木素复染,光镜下观察至少5个视野,计数200个细胞以上,计算阳性细胞百分率。5统计学处理结果1IL-3、IL-5、GM-CSF对Eos活力的影响在缺乏细胞因子的条件下,体外培养的Eos活力迅速降低,第3天几乎全部死亡。细胞因子IL-3、IL-5或GM-CSF(10U/ml)与Eos共同培养时,可显著抑制Eos活力的下降,至第10天仍有相当部分Eos存活,其中IL-5可使50%的Eos存活10d以上。不同浓度的细胞因子与Eos培养3d,IL-3、IL-5、GM-CSF对Eos的作用呈浓度依赖性,1U/ml IL-5可使50的Eos存活,IL

6、-5浓度为10U/ml时,其对Eos的作用达到最大。IL-3、GM-CSF浓度为10U/ml时,对Eos的作用尚未达到最大。2DM对Eos活力的影响在加入细胞因子IL-5、IL-3、GM-CSF(1U/ml)的条件下,不同浓度的DM(10-1010-4mol/L)与Eos共同培养,3d后观察Eos的活力。DM呈浓度依赖性抑制IL-5、IL-3、GM-CSF对Eos的作用(1)。10-6mol/L DM可以显著抑制IL-5增强Eos活力的作用,抑制率达(90±4)%;10-8mol/L DM即可显著抑制IL-3、GM-CSF的作用(P<0.01)。DM抑制IL-5(1U/ml)延

7、长Eos存活时间的作用呈时间依赖性,第2天开始Eos活力显著下降,DM组(43±6)%与对照组(72±6)%相比,差异显著(P<0.01)。         1DM对IL-5、GM-CSF、IL-3增强Eos活力作用的影响Eos体外培养3d,观察DM(10-6mol/L)对不同浓度IL-5增强Eos活力作用的影响,发现随着IL-5浓度的增高,DM对Eos活力的抑制作用逐渐减弱,1000U/mlIL-5几乎完全抑制了DM的作用(表1)。表1DM(10-6组别样本数IL-5(U/ml)1101

8、001000对照组647±1075±1274±1482±9DM组65±321±559±8*69±10     注:与对照组相比,* P<0.05,#P<0.01 3原位末端标记凋亡检测为了进一步证实DM的促Eos凋亡作用,采用原位末端标记方法检测Eos凋亡。在IL-5(1U/ml)存在的条件下,DM(10-6mol/L)与Eos培养,检测细胞凋亡率。结果发现DM作用24,48h后,Eos凋亡率分别为(59±7)%、(87±6)%,与对照组(22

9、±5)%、(37±6)%相比,差异有显著性(P<0.01)。讨论本研究结果表明,体外培养Eos存活时间很短,至第3天已接近全部死亡。IL-3、IL-5、GM-CSF可使Eos存活时间显著延长,并呈浓度依赖性。支气管哮喘时,支气管粘膜和外周血激活的淋巴细胞增加,表达IL-3、IL-5、GM-CSF mRNA和蛋白的细胞数显著增加1,2,还有研究发现,支气管肺泡灌洗液(BALF)内IL-5、GM-CSF水平增加3。Simon等4最近对过敏性鼻炎合并鼻息肉患者鼻息肉组织研究表明,IL-5抑制了组织内Eos的凋亡。虽然尚无直接证据表明体内IL-3、IL-5、GM-CSF抑制E

10、os凋亡,但结合体外培养结果推测,这些细胞因子在体内同样延长Eos的存活时间,导致哮喘肺组织Eos增加。本研究表明DM能够拮抗IL-3、IL-5、GM-CSF的作用,诱导Eos凋亡,这可能是GCS能够迅速降低体内Eos数量及有效治疗哮喘的一个重要机制。根据本实验的研究结果,相当于生理浓度(10-6mol/L)的DM即可显著抑制Eos的存活,但作用时间需要48h。我们认为除了体内和体外实验本身存在差别外,这与锥虫蓝检测Eos凋亡不够敏感有关。采用原位末端标记凋亡检测方法观察DM作用24h Eos的变化,发现50%以上的Eos发生凋亡,此时锥虫蓝检测Eos活力与对照组无明显差别。本研究还表明,随着

11、细胞因子IL-5浓度的增高,DM的促Eos凋亡作用逐渐减弱,高浓度的细胞因子显著抑制了DM的作用。某些Eos增高性疾病、少数严重支气管哮喘患者血清和BALF IL-5浓度高达22000fmol/L(1000pg/ml)3。由此推测,某些哮喘患者的皮质激素依赖可能与体内IL-5浓度显著增高有关。 基金项目:国家自然科学基金资助项目(39670337)赖克方(广州呼吸疾病研究所510120)郭晓明(400037重庆,第三军医大学新桥医院全军呼吸研究所)王长征(400037重庆,第三军医大学新桥医院全军呼吸研究所)郭先健(400037重庆,第三军医大学新桥医院全军呼吸研究所)钱桂生(400

12、037重庆,第三军医大学新桥医院全军呼吸研究所)参 考 文 献1,Ying S, Durham SR, Corrigan CJ, et al. Phenotype of cells expressing mRNA for Th2-type (interleukin 4 and interleukin 5) and Th-1type (interleukin 2 and interferon gama) cytokines in bronchoalveolar lavage and bronchial biopsies from atopic asthmatic and normal contr

13、ol subjects. Am J Respir Cell Mol Biol, 1995, 12: 477-487.2,Lai CWKK, Ho AS, Chan CH, et al. Interleukin-5 messenger RNA expression in peripheral blood CD4+ cells in asthma. J Allergy Clin Immunol, 1996, 97: 1320-1328.3,Virchow Jr JC, Kriegel C, Walker C, et al. Inflammatory determinants of asthma severity: mediator and cellular changes in bronchoalveolar lavage fluid of patients with severe asthma. J Allergy Clin

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