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文档简介

1、角果木MnSOD基因分离及其在酵母中的功能鉴定摘 要 为明确抗氧化系统在植物抵御盐胁迫中的作用,采用RT-PCR的方法分离角果木抗氧化酶相关基因Mn-SOD,采用酶切连接法构建酵母表达载体pYES2/MnSOD,获得含有重组质粒的酵母菌INVSc(pYES2/MnSOD)能有效表达MnSOD特异蛋白带。高浓度盐胁迫筛选结果表明,Mn-SOD基因在酵母中的表达能明显提高酵母菌INVSC的耐盐性。【关键词】:p 角果木;耐盐性;Mn-SOD基因;酵母菌中图分类号 Q943 文献标识码 AAbstract To study the function of antio_idant system aga

2、inst salt stress, the MnSOD gene from Ceriops tagal was cloned by RT-PCR.The Mn-SOD gene was inserted into pYES2 and transformed into yeast cells.The MnSOD protein was successfully e_pressed in yeast by SDS- analysis.High concentration of salt stress tests indicated that e_pression of Mn-SOD gene in

3、 yeast could significantly improve the salt tolerance of yeast strain INVSc.Key words Ceriops tagal; Salt tolerance; Mn-SOD; Yeastdoi 10.3969/j.issn.1000-2561.20_.10.014正常生长条件下,植物体内活性氧产量较低,并且处于一种相对平衡状态,当环境条件发生改变时,这种动态平衡被打破,活性氧大量生成1。活性氧的大量爆发会导致核酸的损伤、蛋白质氧化、脂质过氧化,从而引起许多细胞丧失功能2。在长期进化过程中,植物细胞往往会进化出先进的防御系

4、统对抗活性氧,包括酶促和非酶促系统3。超氧化物歧化酶(SODs)是细胞对活性氧防御体系的第一道防线;这些酶迅速将超氧阴离子(O2·- )和水(H2O)转换为过氧化氢(H2O2)和分子氧(O2)4-5。大多数植物含有一系列的超氧化物歧化酶同功酶。根据金属辅因子的不同,超氧化物歧化酶分为3种类型:铁离子超氧化物歧化酶(Fe-SOD),锰离子超氧化物歧化酶(Mn-SOD),以及铜-锌超氧化物歧化酶(Cu/ ZnSOD),分别位于细胞不同组分中。有研究结果表明,细胞受到有害辐射、氧化还原试剂、病毒感染、逆境胁迫等伤害时,Mn-SOD含量及酶活性会明显增高,起到保护DNA、降低细胞癌变机率的作

5、用;过量表达Mn-SOD可以使植株在受到氧化胁迫时提高其抗逆性6。角果木属于红树科角果木属典型的非泌盐性红树植物,具有很强的耐盐性7。在长期的进化中形成了自己独特的耐盐机制,当受到盐胁迫时,其体内超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)、过氧化物酶(POD)等抗氧化酶类活性大大增加,且这些酶类的活性与受到盐胁迫的程度呈正相关性7。目前已经有相关研究结果表明,将柽柳Mn-SOD转入酵母INVSc I中可以提高酵母的抗盐、抗干旱、抗高温能力8-9。本课题组前期采用数字表达谱技术对盐胁迫下角果木根系差异表达基因进行了筛选,发现Mn-SOD受到盐胁迫时表达量显著增加(待发表数据)。为进一步研究该

6、基因的耐盐功能,本研究分离了Mn-SOD的全长cDNA序列,并转入酵母中过表达后进行酵母耐盐性功能验证,酵母作为最常用的的真核表达载体,相对于原核表达载体大肠杆菌,具有对表达的目的蛋白进行翻译后修饰的功能,比如信号肽的剪切、糖基化等,对于基因的功能研究更有意义。本研究在酵母中探索了Mn-SOD的耐盐性,为进一步阐明抗氧化系统在盐生植物耐盐中所发挥的作用及机理奠定理论基础。1 材料与方法1.1 材料角果木成熟胎生苗采自海南省东寨港红树林保护区。选择无病虫害,发育良好,形态大小且成熟度相似的胎生苗,在Hoagland营养液10中培育至幼苗长出第二对叶,在500 mmol/L NaCl溶液中分别处理

7、1、3、6、9、12、24 h,取根,加液氮充分研磨成粉末,-80 保存,用于RNA提取。1.2 方法1.2.3 酵母表达载体构建 根据引物末端添加的酶切位点,_ba I和Kpn I双酶切TA克隆,回收Mn-SOD基因片段;同样的酶组合酶切酵母表达载体pYES2,回收载体大片段,按外片段分子末端:载体片段分子末端=3 : 1的比例进行连接;连接产物热激法转化大肠杆菌DH5,重组菌落经PCR和酶切检测,阳性克隆命名为pYES2/MnSOD。重组质粒pYES2/MnSOD采用PEG介导的转化法导入缺陷型酵母表达菌株INVSc I,在尿嘧啶缺失的固体合成培养基(SC-Ura)上,30 倒置培养至长出

8、单克隆菌落,进行菌落PCR,1琼脂糖凝胶电泳检测。1.2.4 目的蛋白诱导表达检测 取鉴定后的重组酵母菌单克隆于SC-Ura液体培养基中,20_r/min,30 过夜培养至菌液浓度为OD600=0.5,按照1 500比例稀释于SC-Ura液体诱导培养基中(用2半乳糖替代碳葡萄糖),诱导培养20 h,取1.5 mL浓度为OD600=2.5的菌液于离心管中,8 000 r/min 离心5 min,收集菌体,100 L ddH2O重悬菌体,再加入100 L 0.2 mol/L NaOH溶液裂解细胞5 min,收集上清即为蛋白抽提液。经SDS-胶分离后考马斯亮蓝染色,拍照分析p 。1.2.5 重组酵母

9、菌的盐胁迫处理 酵母菌INVSc I(pYES2)和酵母菌INVSc I(pYES2/MnSOD)分别用SC-Ura液体培养基+1 mol/L NaCl溶液和SC-Ura液体培养基+3 mol/L NaCl溶液30 培养72 h,以SC-Ura液体培养基+ddH2O作为对照。取等体积菌液稀释105倍后接种在SC-U固体培养基上,30 培养,对平板上酵母菌INVSc I(pYES2)和INVSc I(pYES2/MnSOD)的盐胁迫后生长情况进行计数。2 结果与分析p 2.1 根部总RNA提取结果角果木根部总RNA 甲醛变性琼脂糖凝胶电泳检测结果见图1所示。提取024 h内7个时间点的RNA,其

10、均有明显的18 S和28 S RNA条带,且带形完整,无明显的扩散现象,表明所分离的RNA无污染,质量符合后续研究要求。2.2 Mn-SOD基因的分离及分析p 以反转录获得的第一链cDNA为模板,含有_ba I和Kpn I酶切位点的引物进行PCR扩增,1的琼脂糖凝胶电泳检测结果表明,扩增条带位于750 bp左右,与预期大小一致(图2)。阳性重组克隆测序(图3)结果表明,所扩增条带大小为799 bp,其中CDs序列全长717 bp,与角果木转录组测序结果100一致。GeneScan软件分析p 表明,该基因编码238个氨基酸残基,其中35115位氨基酸为Fe/Mn-SOD家族的发卡结构域,1252

11、30位氨基酸残基为Fe/Mn-SOD家族的C端保守结构域,该蛋白等电点为 6.79,蛋白质分子量为26.4 ku。利用推测的氨基酸序列进行同性分析p 显示,所搜索到的100条序列均为Mn-SOD基因的氨基酸序列,同性位于6877之间,其中同性最高(77)的为橡胶Mn-SOD基因(登录号:P35017)编码的氨基酸序列。应用ClustalW2软件对同性较高的前10个序列进行多重比较和进化分析p ,结果表明,本研究分离的Mn-SOD单独成一个分枝,与同性最高的橡胶Mn-SOD距离较远,却与同性较低的PRUPE较近(图4)。2.3 酵母表达载体构建Mn-SOD基因片段和酵母菌载体pYES2双酶切后相

12、连得到重组质粒,该重组子经过PCR鉴定后进行双酶切鉴定,1的琼脂糖凝胶结果表明,酶切获得729 bp的条带,与预期大小一致(图5)。证明Mn-SOD基因已经成功连入pYES2载体,该重组质粒命名为pYES2/MnSOD(图6)。2.4 重组质粒酵母转化的鉴定PEG介导的转化法将重组质粒转入酵母菌INVSc中,在SC-Ura培养基上直至长出单克隆菌落。菌落PCR检测,产物1琼脂糖凝胶电泳结果见图7。从图7可以看出,pYES2/MnSOD转化后长出的酵母均能扩增出预期大小的条带,编号为4的酵母扩增条带最亮,因而挑选4号酵母作为下一步研究的试验材料。2.5 目的蛋白诱导表达检测为检测Mn-SOD基因

13、在酵母菌INVSc中的表达情况,本研究提取了转入重组质粒和空载体的酵母菌INVSc I蛋白抽提液,SDS-电泳结果显示,含有重组质粒的酵母菌落蛋白提取液中有一条明显的蛋白带,而携带空载体的酵母菌INVSc中缺乏该条带,该条带位于2535 ku之间,表明Mn-SOD在酵母细胞中能有效表达特征条带(图8)。2.6 重组酵母菌的耐盐性分析p 菌落计数结果表明,这两种酵母都能够生长,但重组酵母菌的生长情况明显好于转入空载体的酵母菌,盐胁迫浓度越高,两者差异越明显(图9)。进一步对培养基上生长的酵母菌落进行计数分析p ,结果表明,盐胁迫抑制了酵母菌的生长,随着盐浓度的增加,抑制作用逐渐增强,未处理时,空

14、载体和转入Mn-SOD基因的酵母菌落数差异不显著,处理6 h和24 h后,INVSc(pYES2/MnSOD)菌落数量均极显著高于转入空载体的酵母菌INVSc(pYES2)(p【参考文献】:p 1 丁义峰, 靳 萍, 刘 萍.植物SOD的基因表达活性调节及抗逆作用研究进展J.生物学教学, 20_, 37: 6-7.2 Polle A.Dissecting the supero_ide dismutase-ascorbate-glutathione pathway in chloroplasts by metabolic modeling.Computer simulations as a st

15、ep towards flu_ analysisJ.Plant Physiol, 20_1, 126: 445-462.3 Alscher R G, Erturk N, Heath L S.Role of supero_ide dismutases(SODs)in controlling o_idative stress in plantsJ.J E_p Bot, 20_2, 53: 1 331-1 341.4 Bowler C, van C W, van Montagu M, et al.Supero_ide dismutases in plantsJ.Crit.Rev.Plant Sci,

16、 1994, 13: 199-218.5 Bowler C, van Montagu M, Inze D.Supero_ide dismutase andstresstoleranceJ.Annu Rev PlantPhysiol PlantMol Biol, 1992, 43: 83-116.6 魏宗波, 苗向阳, 杨鸣琦, 等.MnSOD基因表达调控的研究进展J.遗传, 2021, 30(7): 831-837.7 符秀梅.盐胁迫下红树植物-角果木耐盐生理及分子基础研究D.海南大学, 2021.8 常万霞.MnSOD基因的克隆及功能验证D.哈尔曼东北林业大学, 20_6.9 廖 岩, 陈桂

17、珠.盐度对红树植物影响研究J.湿地科学, 20_7, 5(3): 266-273.10 BenavidesM P, Marconi P L, Gallego S M, et al.Relationship between antio_idant defense systems and salt tolerance in Solanum tuberosumJ.Aust Plant Physio, 20_, 27: 273-278.11 Hernandez J, Jimenez A, Mullineau_ P, et al.Tolerance of pea plants(Pisum sativum

18、)to long term salt stress is associated with induction of antio_idant defensesJ.Plant Cell Environ, 20_(23): 853-862.12 Mittova V, Tal M, Volokita M, et al.Up-regulation of the leaf mitochondrial and pero_isomal antio_idative systems in response to salt induced o_idative stress in the wild salt-tolerant tomato species Lycopersicon pennelliiJ.Plant Cell Environ, 20_3, 26: 845-856.13 Hoagland D R, Arnon D I.The water-culture method for grog plan

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