氯化钙法制备大肠杆菌感受态细胞

1、氯化钙法制备感受态细胞下面的方案是Clhen 等（ 1972 ）所用方法的变通方案，常用于成批制备感受态细菌，这些细菌可使每微克螺旋质粒产生5x106-2x10 7 个转化菌落， 这样的转化效率足以满足所有在质粒中进行的常规克隆的需要。该方法完全适用于大多数大肠杆菌菌株，并且快速，重复性更好。该法制备的感受态细胞可贮存于-70 ，但保存时间过长会使转化效率在一定程度上受到影响。）从于 37培养 16-20 小时的新鲜平板中挑取一个单菌落（直径mm），转到一个含有100mlLB 或 SOB培养基的1L 烧瓶中。于37剧烈振摇培养约小时（旋转摇床，300 转 / 分）。为得到有效转化，活细胞数不应

2、超过108 细胞 /ml ，可每隔 20-30 分种测量OD600值来监测培养物的生长情况。在菌株与菌株之间，600 值和每毫升中活细胞数间的关系变化很大，因此有必要通过测量特定大肠杆菌菌株的生长增减物在生长周期的不同时相的600 值，并将各浓度的增减物铺于无抗生素的琼脂平皿以计算每一时相的活细胞数，从而使分光光度读数得到标化。）在无菌条件下将细菌转移到一个无菌、一次性使用的、用冰预冷的50ml 聚丙烯管中，在冰上放置 10 分钟，使培养物冷却至。切记：下述所有步骤均需无菌操作。）于以4000 转 / 分离心 10 分钟，以回收细胞。）倒出培养液，将管倒置分钟以使最后残留的痕量培养液流尽。）以

3、 10ml 用冰预冷的0.1mol/LCaCl2 重悬每份沉淀， 放置于冰浴上。 我们发现将mol/L CaCl2贮存液 用纯水（ ille-Q级或与其相当的级别）配制 以 10ml 小份贮存于 -20 煞是方便。制备感受态细胞时，取一小份融化，用纯水稀释至100ml，用 Nalgene 滤器（ 0.45 m 孔径）过滤除菌，然后骤冷到即可。对于大多数大肠肝菌菌株（除1061 外），在这一步采用TFB 代替氯化钙可得到相同的或更好的结果。）于以4000 转 / 分离心 10 分钟，以回收细胞。）倒出培养液，将管倒置分钟以使最后残留的痕量培养液流尽。）每 50ml 初始培养物用2ml 用冰预冷的

4、0.1mol/L CaCl2或重悬每份细胞沉淀。此时，可将细胞分成小份，放于-70 冻存 加 DMSO保存感受态细胞的方法与步骤：每4ml 感受态细胞加 0。75mlDMSO冰上放置 10min 再分装放入 -70 冰箱 。在这些条件下，尽管长期保存后转化效率会稍有下降，但细胞仍可保持处于感受态。Dagert 和 Ehrlich(1979) 曾表明细胞可以于在CaCl2 溶液中保存24-48 小时，在贮存的最初12-24 小时内，转化效率增加倍，然后降低到初始水平。）用冷却的无菌吸头从每种感受态细胞悬液中各取200l 转移到无菌的微量离心管中，每管加（体积 10l, 50ng） ，轻轻旋转以混

5、匀内容物，在冰中放置30 分钟。110）将管放到预加温到42的循环水浴中放好的试管回上，恰恰放置90 秒，不要摇动试管。11）快速将管转移到冰浴中，使细胞冷却分钟。12）每管加800l 培养基。用水溶将培养基加温至37，然后将管转移到37摇床上，温育45 分钟细菌复苏，并且表达质粒编码的抗生素抗性标记基因。如果要求更高的转化效率，在复苏期中，应温和地摇动细胞（转速不超过225 转/ 分）。13）将适当体积（每个90mm平板可达200l ）已转化的感受态细胞转移到含20mmol/L MgSO4和相应抗生素的琼脂培养基上。如培养物体积太小（10l ）。可再加肉汤培养基，用一无菌的弯头玻棒轻轻地将转

6、化的细胞涂到琼脂平板表面。如在一个90mm平板上铺200l以上的感受态细胞，应离心浓缩细胞，然后用适量轻轻重悬细胞。如用四环素抗性作为选择标记，全部的转化混合物可以铺在一个单独的平皿上（或铺在软琼脂中）。然而如选用氨苄青霉素抗性，则只能将一部分培养物（根据实验决定）铺在单独的平皿上。氨苄青霉素抗性功的增加与平皿上所加细菌数的增加并无线性比例关系，这可能是因为被抗生素杀死的细胞可释放生长掏物质的缘故。14）将平板置于室温直至液体被吸收。15）倒置平皿，于37培养， 12-16 小时后可出现菌落。如检查氨苄青霉素抗性，用转化细胞铺增板时密度较低 （每个 90mm平板不超过104 菌落），于 37培养平板时不应超过20 小时。 氨苄青霉素抗性的转化可将内酰胺酶分泌到培养基中，迅速灭活菌落周围区域中的抗生素。这样，铺平板时密度