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文档简介
细菌的荚膜染色,1,.,实验目的与要求,继续学习微生物制片方法学习并掌握荚膜染色的基本原理和方法,2,某些细菌生长到一定阶段,在一定营养条件下可向细胞壁表面分泌一层松散透明、疏松、柔软、粘液状或胶质状的物质,即为荚膜(Capsule)。荚膜的化学成分:主要是多糖、多肽、蛋白质、脂以及由它们组成的复合物脂多糖、脂蛋白等。荚膜的功能:是细胞外碳源和能源性贮藏物质,能保护细胞免受干燥的影响,同时能增加某些病原菌的致病能力,抵御宿主吞噬细胞的吞噬。细菌荚膜与生产生活:葡聚糖、黄原胶的提取,龋齿、面包发粘,等。,细菌的荚膜,3,染色原理与说明,荚膜的化学成分对染料结合力很弱,不容易着色,而且可溶于水,易在水洗时被除去。所以,一般采用衬托染色法(负染色法)使菌体和背景着色,而荚膜不着色,在菌体周围形成一透明圈(即荚膜)。荚膜很薄,涂片不要用力过猛,不要滴加水,以防破坏其荚膜原形。荚膜富含水分(90%以上),制片时应自然干燥,不可加热固定,以避免荚膜受热失水收缩而变形,影响观察。,4,材料,细菌培养物:胶质芽孢杆菌(或钾细菌)染色液与试剂:Tyler染色液、绘图墨水(必要时滤纸过滤后再用)、复红染色液、黑素、6%葡萄糖水溶液、1%甲基紫水溶液、甲醇、20%CuSO4水溶液、香柏油、二甲苯器材:载玻片、盖玻片、接种环、擦镜纸、吸水纸、显微镜、废液缸、等。,5,方法,负染色法湿墨水法干墨水法Tyler法,6,负染色法,制片:取洁净的载玻片一块,加蒸馏水一滴,取少量菌体放入水滴中混匀并涂布。干燥:将涂片放在空气中晾干,或用电吹风冷风吹干。染色:在涂面上加复红染色液染色23min。水洗:用水洗去复红染液。干燥:将染色片放空气中晾干,或用电吹风冷风吹干。涂黑素:在染色涂面左边加一小滴黑素,用一边缘光滑的载玻片轻轻接触黑素,使黑素沿玻片边缘散开,然后向右拖展,使黑素在染色涂面上成为一薄层,并迅速风干。镜检:先低倍镜,再高倍镜观察。结果:背影灰色,菌体红色,荚膜无色透明。,7,制菌液:加1滴墨水于洁净的载玻片上,挑少量菌体与其充分混合均匀。加盖玻片:放一清洁盖玻片于混合液上,然后在盖玻片上放一张滤纸,向下轻压,吸去多余的菌液。镜检:先用低倍镜、再用高倍镜观察。结果:背景灰色,菌体较暗,在其周围呈现一明亮的透明圈即为荚膜。,湿墨水法,8,制菌液:加1滴6%葡萄糖液于洁净载玻片一端,挑少量菌与其充分混合,再加1环墨水,充分混匀。制片:左手执载玻片,右手拿一边缘光滑的盖玻片,使其一边与菌液接触、菌液沿玻片接触处散开,然后以30度角,迅速而均匀地将菌液拉向玻片的一端,使菌液铺成一薄膜。干燥:空气中自然干燥。固定:用甲醇浸没涂片,固定1min,立即倾去甲醇。干燥:在酒精灯上方,用文火干燥。染色:用甲基紫染12min。水洗:用蒸馏水轻洗,自然干燥。镜检:先用低倍镜再高倍镜观察。结果:背景灰色,菌体紫色,荚膜呈一清晰透明圈。,干墨水法,9,涂片:按常规法涂片,可多挑些菌体与水充分混合,并将粘稠的菌液尽量涂开,但涂布的面积不宜过大。干燥:在空气中自然干燥。染色:用Tyler染色液染57min。脱色:用20%CuSO4水溶液洗去结晶紫,脱色要适度(冲洗2遍)用吸水纸吸干立即加12滴香柏油于涂片处,以防止CuSO4结晶的形成。镜检:先用低倍镜再用高倍镜观察。结果:背景蓝紫色,菌体紫色,荚膜无色或浅紫色。,Tyler法,10,涂片方法,11,加盖玻片时不可有气泡,否则会影响观察。应用干墨水法时,涂片要放在火焰较高处并用文火干燥,不可使玻片发热。在采用Tyler法染色时,标本经染色后不可用水洗,必须用20%CuSO4冲洗。,注意事项,12,
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