水体及土壤样品中类固醇激素的高效检测方法,分析化学论文

水体及土壤样品中类固醇激素的高效检测方法,分析化学论文类固醇激素是一类由胆固醇衍生而来的具有内分泌干扰效应的物质。环境中类固醇激素的主要来源包括人及脊椎动物的排泄、人工合成含类固醇激素药物的使用以及医院或制药厂废水的排放[1-4].人类来源的类固醇激素主要通过污水处理厂处理后排入水体，动物来源的类固醇激素主要通过粪便排泄进入环境体[5-7].由于这类物质具有较强的生物活性，一旦进入水体就可能对非目的生物正常的内分泌功能产生干扰。有报道表示清楚，长期暴露在低浓度的类固醇激素下会对鱼类的生殖系统产生负面影响并导致雌性特征在雄性鱼中出现[8-9].类固醇激素在环境介质中残留的准确测定是对其进行风险评价和污染防治的基础。当前类固醇激素的分析有气相色谱法、液相色谱法和酶联免疫分析法等[10-12].由于类固醇激素在环境中的浓度通常较低，通常需要对样品进行富集。当前主要采用的富集方式方法包括固相萃取〔SPE〕和固相微萃取法〔SPME〕[13-14].对于土壤及沉积物等固体样品中类固醇激素的测定还需通过溶剂提取。超声提取〔USE〕，加速溶剂提取〔ASE〕都有运用[15-16].本文采样丹磺酰衍生化的方式方法提高类固醇激素的电离效率并结合固相萃取和加速溶剂萃取技术，建立了水体及土壤样品中类固醇激素准确、灵敏的检测方式方法。1材料和方式方法1.1仪器与试剂Varian1200LLC-MS/MS电喷雾〔ESI〕三重四级杆液相色谱质谱联用仪〔Varian公司，美国〕。Di-onexASE200加速溶剂萃取系统〔Dionex公司，美国〕。NovaPackC18〔1504.6mm,4m〕色谱柱〔Waters公司〕。ENVI-18〔6mL,500mg〕和LC-18〔3mL,500mg〕固相萃取小柱〔Supelco公司〕。标准物质孕酮〔progesterone〕，醋酸美伦孕酮〔melengestrolacetate〕，雌酚酮〔estrone〕，17-雌二醇〔17-estradiol〕，17-雌二醇〔17-estradiol〕，雌三醇〔estriol〕和17乙炔雌二醇〔17-ethinylestra-diol〕购于Sigma公司。内标物质氘代17-雌二醇〔17-estradiol-D3〕和氘代雌三醇〔estriol-D2〕购于C/D/NIsotopes公司。分析纯药品和色谱纯有机溶剂均购于Fisher公司。1.2样品采集地表水样品采自天然河道，用1L玻璃瓶保存，回实验室后过0.7m玻璃纤维滤膜并在4℃储藏。表层土壤〔0~20cm〕样品采自一植物园内，冷冻枯燥后过筛〔0.2cm〕并在-20℃储藏。1.3样品前处理水样用固相萃取方法富集。固相萃取小柱〔ENVI-18〕先后用6mL丙酮和去离子水活化。取过滤后的水样200mL,调节pH值到7,参加40L浓度为500g/L的内标后过固相萃取小柱，流速约为10mL/min.随后用含20%丙酮的水溶液清洗。最后用6mL丙酮洗脱。洗脱液用高纯氮气吹干并进行衍生化。土壤样品用加速溶剂萃取法萃取。取过筛的土壤样品5g,参加50L浓度为500g/L的内标，同硅藻土混合后装入11mL萃取管，两头用玻璃纤维滤膜密封。优化的萃取条件为：丙酮，温度60℃，压力1500psi,预热5min,加热5min,淋洗体积60%,吹扫时间2min,循环2次。萃取液稀释到200mL,然固相萃取方式方法进行净化和富集，方式方法同水样。1.4衍生化用100L碳酸氢钠溶液〔0.1mol并用NaOH调节pH值至10.5〕溶解氮气吹干的样品，参加100L丹磺酰氯〔1mg/L溶解于丙酮〕。震荡混合后置于60℃烘箱内，加热3min.取出样品，氮气吹干并用0.4mL甲醇溶解，转移到2mL样品瓶，储藏于-20℃待分析。1.5仪器分析色谱分析条件为：流动相A为0.1%甲酸水溶液，流动相B为乙腈，流量0.3mL/min.洗脱梯度为：0~5min,流动相B由40%升至73%,5~25min,升至78%,25~27min升至100%,保持5min后降到40%并平衡6min.定量采用内标标准曲线法。质谱为正离子形式，枯燥气体温度300℃，屏蔽电压150V,针电压6000V,碰撞气体压力2.0mTorr.其他参数设置见表1.2结果与讨论2.1固相萃取经过优化水体中类固醇激素的提取，我们比拟了两种反相固相萃取小柱〔ENVI-18和LC-18〕的效率。反相吸附剂能够从水体中吸附非极性的物质而对极性物质的吸附能力较弱。本文所研究的目的物质均为弱酸〔pKa10〕，水体的pH值可能会影响固相萃取对目的物质吸附的效率。因而，我们比照了pH值为3和7时两种反相固相萃取小柱的回收率。结果显示两种固相萃取小柱在pH值为3和7时均能获得80%的回收率〔图1〕。两种小柱和不同pH值的萃取效率无显著性差异。结果表示清楚所研究类固醇激素极性较弱，即便在中性条件下仍以分子形式存在。考虑到酸性条件会增加水体中酸性物质的吸附，进而增加样品中基质含量[17],因而选取pH值为7作为固相萃取条件。除此之外，LC-18小柱在萃取经过中较易堵塞，进而降低流速，所以选择ENVI-18小柱进行进一步研究。2.2溶液清洗优化在用LC-MS/MS分析时，化合物的电离效率极易遭到样品中基质的影响[18].为了减小基质效应，我们试图用一定比例的丙酮水溶液清洗固相萃取小柱。结果显示当丙酮含量不超过20%时不会对目的物质的回收率产生显著影响〔图2〕。因而，选择用含20%丙酮的水溶液清洗固相萃取小柱来净化样品。2.3加速溶剂萃取优化土壤中类固醇激素的分析需要先将目的物质从土壤中萃取出来。加速溶剂萃取技术是利用高温高压条件提高萃取效率。本文研究了不同溶剂和温度对萃取回收率的影响。结果表示清楚丙酮比甲醇具有更好的萃取效率〔图3〕。高温条件通常能够提高萃取效率，但目的物质的回收率在100℃的回收率反而低于60℃。这可能是由于高温时，更多基质被引入样品，增加了基质的影响，可以能是在高温条件下，目的物质发生降解。根据结果，选择丙酮为萃取溶剂，60℃为萃取温度进行试验。2.4衍生化经过优化所选类固醇激素极性较弱，导致这些物质在ESILC-MS/MS分析经过中电离效率较低进而影响到检测的灵敏度[19].通过丹磺酰衍生化反响引入极性基团能够大大提高电离效率进而提高检测的灵敏度。孕酮和醋酸美伦孕酮不具有活性基团，不发生反响。其他类固醇激素中的活性羟基中的氢被丹磺酰基取代。本文研究了衍生化试剂的用量以及类固醇激素的浓度对衍生化效果的影响。结果表示清楚衍生化使得类固醇激素在仪器上的响应提高5~10倍〔图4〕。当类固醇激素的浓度低于100g/L时，100L衍生化试剂的效果略好于200L衍生化试剂的效果。但当类固醇激素的浓度到达200g/L时，200L衍生化试剂的效果较好。这可能是由于在较低浓度时，100L和200L衍生化试剂均能到达较高的衍生化效率，但200L衍生化试剂会引入更多的杂质进而影响信号的强度。但在高浓度时，100L衍生化试剂的衍生化效率可能不完全。考虑到环境中类固醇激素的残留浓度通常在ng/L量级，浓缩后也在几个到几十个g/L量级，因而选取100L衍生化试剂进行衍生化。2.5线性关系和方式方法检出限将标准品逐级稀释配置成浓度为1,5,10,50,100,200,500g/L的溶液。在优化的条件下进行测定。通过对测得结果进行线性拟合，相关系数〔r2〕优于0.998〔表2〕。讲明在所测浓度范围内，仪器相应与浓度呈线性关系。方式方法检出限为能产生3倍信噪比〔s/n=3〕的最小样品浓度。水体和土壤中目的物质的方式方法检出限分别为0.02~0.6ng/L和0.01~0.18ng/g〔表2〕。2.6准确度和精致细密度根据优化试验条件，将已经知道浓度的类固醇激素标准溶液参加200mL地表水样品中，进行加标回收率试验，试验重复三次。数据见表2,水体中平均回收率为77%~97%,相对标准偏差为1.0%~6.0%.土壤中平均回收率为62%~119%,相对标准偏差〔RSD〕为0.8%~15.5%.试验数据表示清楚该方式方法准确度与精致细密度均较好。与以发表的类固醇激素分析方式方法相比[19-20],本方式方法具有较高的分析灵敏度。2.7空白和环境样品分析环境水样采自武汉市区及周边的地表水体。土壤样品采自接受畜禽粪便改进的农田表层土。用去离子水和来自植物园的表层土做空白。按本方式方法分析。空白中未检测出目的物质。地表水样品中除醋酸美伦孕酮和17-乙炔雌二醇外均被检出，总类固醇激素的浓度范围为5.8~42.5ng/L.土壤中检出17-雌二醇，17-雌二醇和雌酚酮，其浓度范围为0.2~2.8ng/g.3结论建立了水体及土壤中类固醇激素的液相色谱质谱分析方式方法。通过丹磺酰氯衍生化大大提高了分析方式方法的灵敏度。样品前处理经过的优化使得该方式方法具有较高的准确度和精致细密度。该方式方法适用于环境水体及土壤中类固醇激素残留的分析。以下为参考文献[1]RichardsonSD,TernesTA.Wateranalysis:emergingcontaminantsandcurrentissues[J].AnalyticalChemistry,2005,77〔12〕：3807-3838.[2]YingGG,KookanaRS,RuYJ.Occurrenceandfateofhormonesteroidsintheenvironment[J].EnvironmentInterna-tional,2002,28〔6〕：545-551.[3]ServosMR,BennieDT,BurnisonBK,etal.Distributionofestrogens,17-estradiolandestrone,inCanadianmunici-palwastewatertreatmentplants[J].ScienceoftheTotalEnvironment,2005,336〔1-3〕：155-170.[4]ChangH,WanY,HuJ.Determinationandsourceapportionmentoffiveclassesofsteroidhormonesinurbanrivers[J].EnvironmentalScienceandTechnology,2018,43〔20〕：7691-7698.[5]Gabet-GiraudV,MigeC,ChoubertJM,etal.Occurrenceandremovalofestrogensandbetablockersbyvariousprocessesinwastewatertreatmentplants[J].ScienceoftheTotal