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文档简介

分子克隆实验标准步骤一、常规分子克隆实验流程:?确定目的片段的基因序列以及需要插入的载体?引物设计软件或网站设计引物?pcr扩增目的基因片段?pcr产物的回收?载体的酶切?插入片段的酶切(重组不需要酶切)引物设计pcr扩增酶切连接或重组?载体与目的片段的连接或重组?连接或重组产物转化大肠杆菌感受态?涂布平板?平板菌落的鉴定?阳性克隆送测序?测序结果的分析变换识别序列比对二、分子克隆实验标准步骤(含实验编号):.靶基因(克隆酶-1)的PCR扩增口以本实验室常用酶kod-plus-neo(toyobo)为例体系(50ul):□10Xkodbuf5uldntp(2mm)5ul口mg2+3ulprimer11ulprimer21ultemplate50-200ngkod0.5ulDDH2O50ul程序:95℃2min98℃10s口58℃30s35cycle68℃2kb/min68℃7min12℃8日.pcr产物的琼脂糖凝胶电泳琼脂糖凝胶的制备(编号cknesop-2)□琼脂糖溶液的制备:称取琼脂糖,置于三角瓶中,加入相应体积的tbe或Tae缓冲液,浓度为1%-1.5%,在微波炉中加热三角瓶中,直至琼脂糖溶解。胶板的制备:①取有机玻璃内槽,洗净、晾干;②将有机玻璃内槽置于一水平位置模具上,安好挡板,放好梳子。在距离底板上放置梳子,以便加入琼脂糖后可以形成完好的加样孔。③将温热琼脂糖溶液倒入胶膜中,使胶液缓慢地展开,直到在整个有机玻璃板表面形成均匀的胶层。④室温下静置30min左右,待凝固完全后,轻轻拔出梳子,在胶板上即形成相互隔开的上样孔。制好胶后将铺胶的有机玻璃内槽放在含有0.5〜1Xtae(tris-乙酸)或tbe(tris-硼酸)工作液的电泳槽中使用,没过胶面1mm以上。□.试剂盒回收的DNA片段(编号:clonesop-3)□以本实验室常用dna凝胶回收试剂盒(天根)为例口使用前请在清洗液PW中加入无水乙醇。请参考瓶子上的标签了解容量。□①柱平衡步骤:向吸附柱ca2中(吸附柱放入收集管中)加入500口l平衡液bl,12,000江山(~13,400乂的离心血壮,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。(请使用当天处理过的柱子)(2)将琼脂糖凝胶中的单用途DNA条(尽可能去除多余部分)切入干净的离心管中,并称重。③向胶块中加入等倍体积溶液pn(如果凝胶重为0.1g,其体积可视为100口l,则加入100口lpn溶液),60℃水浴放置,其间不断温和地上下翻转离心管,以确保胶块充分溶解。如果还有未溶的胶块,可继续放置几分钟或再补加一些溶胶液,直至胶块完全溶解(若胶块的体积过大,可事先将胶块切成碎块)。注:对于回收率小于300BP的小碎片,可在加入PN完全溶胶后加入1/2体积的异丙醇,以提高回收率;橡胶块完全溶解后,最好将溶液温度降至室温,然后将其置于柱上,因为吸附柱在室温下具有很强的结合DNA的能力。□④将上一步所得溶液加入一个吸附柱ca2中(吸附柱放入收集管中),室温放置2min,12,000江山(~13,400*的离心30-60$6。,倒掉收集管中的废液,将吸附柱。@2放入收集管中。⑤向吸附柱ca2中加入600口l漂洗液pw(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12,000江山(~13,400*的离心30-60$6。,倒掉收集管中的废液,将吸附柱。@2放入收集管中。⑥重复操作步骤⑤。□⑦将吸附柱Ca2以12000rpm(~13400Xg)的转速放入回收集管中,离心2min,并尽可能去除冲洗液。吸附柱Ca2在室温下放置几分钟,并彻底干燥,以防止残留的冲洗液影响下一次实验。⑧将吸附柱ca2放到一个干净离心管中,向吸附膜中间位置悬空滴加适量洗脱缓冲液eb或ddh2o,室温放置2山壮。12,0005山(~13,400乂8)离心2min收集dna溶液。□.酶消化反应(编号clonesop-4)□以本实验室常用酶fastdigestrestrictionenzymes(thermo)为例双酶切体系(若是单酶切则只用加一种酶):十分钟?bufferor10Xfastdigest?绿色缓冲5硫酸消化限制酶10。5—1快速消化限制酶20。5-1uldnanddh2oupto50ul酶消化系统搅拌均匀后,在37℃下反应,反应时间应大于30min。如果载体(2-3ug)为酶消化,则至少应为2H。□.酶切产物的回收(编号clonesop-5)□我们实验室常用的Axygen?axyprep?以pcrcleanupkit(axygen)为例口①在pcr、酶切、酶标、或测序反应液中,加入3个体积的bufferpcr-a(若bufferpcr-a如果小于100ul,则添加至100ul),混合均匀,转移至制备管中,将制备管放入2ml离心管中,离心12000g,离41min,并丢弃滤液。□②将制备管置回2ml离心管,加700ulbufferw2,12000g离心1min,弃滤液。③将制备管置回2ml离心管,加400ulbufferw2,12000g离心1min,弃滤液。□④将制备管放回2ml离心管中,离心120008,离心1min。将制备管放入清洁的1.5山1离心管中,静置2min。□⑤在制备管中央加25-30uleluent或ddh2o,室温静置1min,12000g离心1min洗脱dna。.重组反应(编号clonesop-6)□以本实验室常用novorec?pcr一步定向克隆试剂盒(novoprotein)为例体系:□10X1Novorec?重组酶0.5ul线性化载体n插入片段nddh20高达10ul口注:载体与目的片段的摩尔比在1:3-1:10之间复合反应充分混合后,将其置于37℃水浴中20至30分钟,然后取出并置于冰上立即转化.转化(编号clonesop-7)□①将大肠杆菌的活性细胞从-80℃冰箱中取出,迅速放在冰上,慢慢解冻并重新包装。②取出连接产品,加入分装接收状态,在冰上孵育25分钟③42℃热激90sec,置于冰上孵育2山^,加入700过,不含抗生素的lb培养基,180rpm37℃培养45min。□④以3000rpm离心^^,丢弃大部分上清液,留约50—100ul,重新悬浮沉淀物,将其滴在已添加玻璃珠的LB板(具有相应阻力)上,并均匀涂抹玻璃珠。⑤倒出玻璃珠,将LB板置于37℃培养箱中过夜培养。□.挑克隆摇菌与菌落pcr检测阳性克隆(编号clonesop-8)□①从37℃培养箱中取出培养过夜的平板,用镊子高压灭菌后小心取出枪头,用枪头尖端轻轻触摸单个克隆,然后将枪头尖端在一个1.5mlep的管中搅拌几次,该管中含有150ullb液体(具有相应的阻力)和菌落PCR反应系统。将带有培养基的EP管在37℃220rpm下培养3小时。②菌落PCR:□20ul菌落pcr体系,以本实验室常用2Xtsingkemastermix为例:□2X10口l的混合物。5ulprimer20。5ul细菌口ddh2o9ul菌落PCR程序:□95℃3min95℃30s58℃30S30循环72℃1-2kb/min72℃5min12℃^D③琼脂糖电泳检测pcr产物以判定阳性克隆口.细菌溶液的扩大培养(编号:clonesop-9)□将pcr鉴定为阳性的菌液吸取5-10U1接种至5mllb(含抗性)培养基中,在220rpm,37℃摇床中过夜培养。.小提取质粒(编号:clonesop-10)□取出过夜培养的菌液,对已经混浊的菌液进行质粒提取(天根质粒dna小提试剂盒)。①柱平衡步骤:向吸附柱cp3中(吸附柱放入收集管中)加入500口l的平衡液bl,12,0005山(~13,400*Q离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。②取5ml过夜培养的菌液,加入离心管中,使用常规台式离心机,4500rpm离心5分钟,尽量吸除上清,将菌体沉淀收集到一个离心管中。③向离心管中加入200PL细菌沉淀溶液P1(已提前加入RNaseA),并使用移液管或旋涡振荡器完全悬浮细菌沉淀。④向离心管中加入200Hl溶液p2,温和地上下翻转6—8次使菌体充分裂解。□⑤向离心管中加入300口1溶液P3,立即轻轻上下转动6c8次,搅拌均匀。此时会出现白色絮状沉淀。12000rpm(~13400*8)离心10分钟,此时在离心管底部形成沉淀。□注意:p3加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色可再次离心后取上清。⑥用移液管将上一步收集的上清液转移到吸附柱CP3(吸附柱放入收集管),注意不要尽可能多地吸出沉淀物。12000rpm(~13400*8)离心30-60秒,将收集管中的废液倒出,将吸附柱CP3放入收集管中。□⑦向吸附柱cp3中加入600口l漂洗液pw(事先已加入无水乙醇),12,000江山(~13,400乂的离心30-60秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱。口3放入收集管中。⑧向吸附柱cp3中加入600口l漂洗液pw,12,000rpm(~13,400Xg)离心30-60秒,倒掉收集管中的废液。⑨将吸附柱CP3以12000rpm(~13400Xg)的转速放入收集管中离心2分钟,以去除吸附柱中残留的冲洗液。⑩将吸附柱cp3置于一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位滴加80口l洗脱缓冲液0卜室温放置2分钟,12,000江山(~13,400*Q离心1分钟将质粒溶液收集到离心管中。置于4℃备用。实验中的注意事项.pcr实验请注意酶的扩增效率,有的酶是1kb/min,有的是2kb/min,具体请查看相应酶的说明舒。.琼脂糖凝胶制备过程中请注意污染区与非污染区,在电泳点样前请确保样品和dnamarker添加了核酸染料。.试剂盒使用之前检查漂洗液是否已加入无水乙醇。常用培养基和缓冲液的制备:b液体培养基(11)配方:□10g胰蛋白胨5g酵母提取物5g氯化钠口用去离子水定容至11,高压蒸汽灭菌20分钟。2.1b液体培养基(11)配方:□10g胰蛋白胨5g酵母提取物5g氯化钠口15g琼脂粉口用去离子水定容至1L,用高压蒸汽消毒20分钟。3.TB液体介质(1L)配方:□将下列组分溶解在0.91水中:蛋白胨12g,酵母提取物24g,甘油4mL各组分溶解后高压灭菌。冷却到60℃,再加100ml灭菌的170mmo1/1kh2po4/0.72mo1/1k2hpo4的溶液(2.31g的kh2po4和12.54gk2hpo4溶

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