外泌体-药物靶向治疗利器

外泌体一药物靶向治疗利器1.外泌体简介夕卜泌体（exosomes）是一种机体内大多数细胞分泌的微小囊泡，直径约为30~150nm,具脂质双层膜，其形成机制非常简单，简而言之： “内吞-融合-外排”如图所示，毫无违和感（图1a）。从1980年首次发现外泌体至今，已有30多年的历史，最初被认为是细胞的“垃圾”，是细胞排泄废物的一种方式； 2013年，科学家们发现细胞囊泡运输的调节机制,获得当年诺贝尔生理学或医学奖，开启了外泌体研究的新时代，此外， 外泌体和微囊泡（图1b）、凋亡小体（图1c）明显不同，有鲜明的特点和潜在价值，时至今日，已逐步成为科研热点（图2）。retilculijriiLipi也mR?快rotein2）。retilculijriiLipi也mR?快rotein卉g-ilS* 1--―aExosomesExQSQmalpathwayCholeAtAolri'ChjbMiirovesidesCApopiosomes1001.000nmrou限（UTiG<tedApoptcsomes.

SO-1000nm2500~|quantity2000-1500-图22.外泌体作为药物载体的优势对于普通药物而言，通常在进入体内后仅有极少一部分才能够真正作用于病变部位。 这是制约药物疗效，并导致药物毒副作用的根本原因。 获取具有像导弹一样精)隹靶向能力的药物是人类的一个梦想，也是药物开发的终极目标。随着药物研发进入靶向时代， 越来越多的靶向药物成功上市，其中药物载体的设计研发愈发重要。 外泌体，作为天然的胞间信息载体，以其相对较小的分子结构，天然分子转运特性及良好的生物相容性， 在药物载体领域存在巨大应用潜力。较之现有的药物载体(如人工制造的脂质体)，外泌体有其显著的优越性：(1)不同来源外泌体表面分子不一，对受体细胞有选择性，治疗上更有利；(2)相对脂质体对亲水性物质较低的包装效率 ，外泌体显著提高包装效率；(3)特殊细胞［如未成熟的DC细胞或充间质干细胞］中的外泌体，由于特殊的表面分子，可避免与抗体、凝血因子等产生作用 ，避免体内产生免疫反应。尽管近年来在siRNA胞内递送方面取得较大进展，但针对特定组织或细胞类型靶向递送，同时避免非特异性递送，特别是对肝脏仍然具有挑战性；其二， siRNA或递送载体的免疫原性也是一个主要障碍。而天然存在的RNA载体，如外泌体，可能会提供一个尚未开发的有效传递策略来源。有研究表明，经过人工设计的外泌体可以通过小鼠的血脑屏障发挥作用 (图3)。

HarvestboneAdministrationmarrowCargopurificationTargetingpeptideImmaturedendriticcellsLoadingofexosomesHemopoieticprogenitors,osteocyles,othercells/Stimulation/withinterleukinsHarvestboneAdministrationmarrowCargopurificationTargetingpeptideImmaturedendriticcellsLoadingofexosomesHemopoieticprogenitors,osteocyles,othercells/Stimulation/withinterleukinso3.外泌体作为药物载体上的应用外泌体携带和传递重要的信号分子， 形成了一种全新的细胞间信息传递系统， 影响细胞的生理状态并与多种疾病的发生与进程密切相关， 外泌体可装载的药物类型包括小分子化学药物、蛋白质和肽、核酸药物等（图4）。对于外泌体作为药物载体的选择遵循两大基本原贝U：1、保持内含药物在体内环境中的活性；2、在不引发机体对药物载体产生免疫反应的情况下释放内含物。目前已有多篇文献报道外泌体在药物载体上的应用 （表1）：ExosomessoyrceA CargotypeRedpienttel心 References^VahouAcdrifpr匚dill CurcLimirvExosomessoyrceA CargotypeRedpienttel心 References^VahouAcdrifpr匚dill CurcLimirvIImmaturedendiitkcells»>siRN/VMesenchymalstemcells*八Monocytes*：ImmaturedendriticcdIfBcells，Malignantgljoma匚eIIpHeLacell，HEK293cels*Doxorubicin，Doxorubicin/Anti-rniRNA-155vh，iFtNAnPsiRNA，qjinstRADSL1icroglia，Neurons， 〔那Adenocarcinomacell， 叶Malignanttumorc，ll，： [5kBreastcancer匚凶1即 ｛卸口Macrophage*3 叶pCD-UPRT-EGFPplasmi<kSchwannomascd1Primary/corticalneuroneFibrosarcoma匀彳遥押ExtracellularvesiclesaretheTrojanhorsesofviralinfection.共蓑小分子化学药物•能内给药氧险的感用，应用案例1应用方向装蕊蛋白质类的加转载基因却如ExtracellularvesiclesaretheTrojanhorsesofviralinfection.共蓑小分子化学药物•能内给药氧险的感用，应用案例1应用方向装蕊蛋白质类的加转载基因却如Z田胞外囊泡是病毒感染的特洛伊木马。 PMID:27232382Altan-Bonnet[11]发现，病毒宿主细胞产生的外泌体通过包裹病毒基因组及病毒颗粒运送至新的易染宿主细胞中实现病毒传播 ，图4显示了胞外囊泡介导病毒体和病毒核酸种群在两个细胞间非裂解性传输的机制。 该过程成为病毒扩散的新途径，进一步阐述了外泌体可应用于药物载体方面的理论 （图5）。EnhancedReptlcatlveFitnessH也H也hNumberofViralGenomesEnteringaViralCooperationA_sviraimjtibinGVf{tor另i阳nAMAsynthesis.图5应用案例2:actiEXOsOmNAM55ianhib8enVermacroploageisj外c波体介导的功能活性miRNA-155抑制剂对巨噬细胞的作用。PMID:24685946B细胞来源的外泌体可将外源miRNA-155模拟物或抑制剂递送到肝细胞或巨噬细胞中， B细胞的刺激可显著增加外泌体的产生。与亲本细胞不同，经过刺激的 B细胞中的miRNA-155

含量非常低。而装载miRNA-155模拟物的外泌体可显著敲除小鼠肝脏中 miRNA-155水平。此外，与常规转染方法相比，外泌体介导的miRNA-155抑制剂递送可导致更有效的功能抑制和更少的细胞毒性。 Momen-Heravi等[12]通过电转使B细胞来源的外泌体装载 miRNA-155抑制剂，作用于RAW(264.7)巨噬细胞，可以降低脂多糖诱导的 TNF-a(tumornecrosisfactor-a)产生，同时减轻体内炎症反应 (图6)。miRNA1-5£Puntwatiortofloaded应用奎例3:ExploitationofExosomesasNanocarriersforGene-,Chemo-,andImmune-TherapymiRNA1-5£Puntwatiortofloaded应用奎例3:ExploitationofExosomesasNanocarriersforGene-,Chemo-,andImmune-TherapyRAWnucroohMm目前的大部分综述试研究发现，外泌体携带目前的大部分综述试研究发现，外泌体携带[13](图7)。PMID:27319211ofCancer.禾U用外泌体作为癌症的基因，化疗和免疫治疗的纳米载体PMID:27319211目前基于载体的癌症治疗面临的瓶颈， 主要是控制治疗剂的靶向和释放。 外泌体在尺寸和功能上类似于合成纳米颗粒， 优点颇多，使其成为靶向药物或基因递送载体最有希望的候选物。因此，基于外泌体的癌症治疗有可能成为个性化医疗的重要组成部分。图描述外泌体应用于癌症治疗的现状以及与其使用相关的潜在挑战。miRNA转染癌细胞可导致基因沉默从而抑制细胞增殖、诱导细胞死亡milCJAbused\uclHcnciildclivcn*milCJAbused\uclHcnciildclivcn*总而言之，外泌体——在药物载体领域存在巨大应用潜力， 有望成为药物靶向治疗的利器。4参考文献[1]YeungCLA,CoNN,TsurugaT,etal.Exosomaltransferofstroma-derivedmiR21conferspaclitaxelresistanceinovariancancercellsthroughtargetingAPAF1[J].Naturecommunications,2016,7:11150.[2]lbrahimA,MarbanE.Exosomes:FundamentalBiologyandRolesinCardiovascularPhysiology[J].AnnualReviewofPhysiology,2016,78(1):67-83.[3]SrivastavaA,BabuA,FilantJ,MoxleyKM,RuskinR,DhanasekaranD,etal.Exploitationofexosomesasnanocarriersforgene-,chemo-,andimmunetherapyofcancer.JBiomedNanotechnol2016;12(6):1159-73.[4]PascucciL,CocceV,BonomiA,AmiD,CeccarelliP,CiusaniE,etal.Paclitaxelisincorporatedbymesenchymalstromalcellsandreleasedinexosomesthatinhibitinvitrotumorgrowth:Anewapproachfordrugdelivery.JControlRelease2017;192:262-70.⑸JangSC,KimOY,Yoon CM,ChoiDS,RohTY,ParkJ,etal.Bioinspiredexosomemimeticnanovesiclesfortargeteddeliveryofchemotherapeuticstomalignanttumors.ACSNano2016;7(9):7698-710.[6]TianY,LiS,SongJ,JiT,ZhuM,AndersonGJ,etal.Adoxorubicindeliveryplatformusingengineerednaturalmembranevesicleexosomesfortargetedtumortherapy.Biomaterials2014;35(7):2383-90.Momen,HeraviF,BalaS,BukongT,SzaboG.ExosomemediateddeliveryoffunctionallyactivemiRNA155inhibitortomacrophages.Nanomedicine2014;10(7):1517.DidiotMC,HallLM,ColesAH,HarasztiRA,GodinhoBM,ChaseK,etal.Exosome-mediateddeliveryofhydrophobicallymodifiedsiRNAforHuntingtinmRNAsilencing.MolTher2016;24(10):1836-47.ShtamTA,KovalevRA,VarfolomeevaEY,MakarovEM,KilYV,FilatovMV.ExosomesarenaturalcarriersofexogenoussiRNAtohumancellsinvitro.CellCommunSignal2013;doi:10.1186/1478-811X-11-88MizrakA,BolukbasiMF,OzdenerGB,BrennerGJ,MadlenerS,ErkanEP,e