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文档简介
1、实验目的学习从动物组织中提取DNA及其含量、纯度测定的原理和方法 掌握离心机的使用方法兔肝脱氧核糖核酸(DNA)的提取和测定1在0.15M的氯化钠溶液中脱氧核糖核蛋白的溶解度最低。用0.15M氯化钠溶液洗涤可洗去其它物质。沉淀用SDS处理,SDS使蛋白质与DNA解离,再用氯仿异丙醇抽提,将蛋白质沉淀除去,而DNA则溶解。DNA溶液用乙醇沉淀析出。实验原理2实验操作1. 弃上清留沉淀兔肝称取4 g 加8ml 1X SSC1X SSC洗两次取8ml匀浆液离 心匀浆、过滤2.弃上清留沉淀加至8ml 1X SSC离 心加至 8ml 0.15MNaCl-0.1MNa2EDTA离 心3.弃上清留沉淀(脱氧
2、核糖核蛋白)3加约2倍体积95% 乙醇沉淀加 0.15MNaCl-0.1MNa2EDTA至4ml搅拌10min逐滴加入0.5ml 15% SDS加1ml5M NaCl去塞!离心加塞反复倒置抽提10min吸取上清液勿吸到中间层!等体积氯仿-异丙醇混合液DNA析出用玻棒挑出挑取DNA至一离心管(小烧杯)用10ml 0.01N NaOH溶解重复一次轻搅10min4注意事项尽可能避免DNA的断裂 1. 匀浆时应保持低温,且匀浆时间应短; 2. 实验中使用的吸取DNA水溶液的滴管口应粗短并成钝口。保持DNA活性,避免酸碱或其他变性因素使DNA变性。搅动不要太大,以免使DNA断裂。整个实验过程应在低温条件
3、下进行。搅拌时动作要轻,反复倒置抽提,不可激烈振荡。5加入15% SDS时要慢,边搅边滴加(两人配合)。SDS的温度不能太低,易凝固。吸过SDS的吸管要及时清洗。加入CHCl3/IAA液离心后,分为三层,由上到下为:无机相-蛋白相-有机相。DNA溶解在无机相中,吸取无机相时动作要轻,不要吸到蛋白相。CHCl3/IAA会溶解有机玻璃,用完后不能竖直放置在试管架上,必须冲洗干净。6离心机的使用打开电源开关;平衡放置离心管;盖上盖子。调节时间旋钮至10min;缓慢调节速度旋钮至9档,每5-10s上升1档;离心完毕后机器自动停止,待完全停止后,打开盖子取出离心管。离心管必须平衡后,才能启动离心机;离心
4、机的盖子必须盖紧;离心过程中不要用重物撞击离心机;要等离心机完全停止转动后再打开盖子。7二苯胺显色法测定DNA含量DNA的-脱氧核糖在酸性条件下转变成-羟基-r酮基戊醛,与二苯胺共热后形成蓝色化合物,该化合物在595nm处最大吸收。每ml含20400g范围内光密度与DNA的浓度成正比。用标准曲线法测定DNA含量。用生物分光光度计(用紫外光度法)分析DNA含量与纯度实验原理8取8支试管,按实验指导的表格加入试剂。加毕置沸水浴10分钟,取出冷却;以0号管(空白管)调零点,于595nm波长比色。以光密度为纵坐标,DNA含量(g/ml)为横坐标,绘制标准曲线.将实验中所得到的兔肝DNA溶液作为待测样品,取两只试管,分别标“U”和“B”,按表加入试剂。混匀,置沸水中10min, 取出冷却。在595nm处,以B管调零,测得待测液的光密度值,从标准曲线上查出相当于该光密度值DNA的含量。实验操作9核酸在220-320nm处呈特征性吸收,在260nm处有最大吸收,测A260/A280可得知核酸的大致纯度。 A260/A280 1.8 表示DNA纯 1.8 RNA含量高 1.8 蛋白含量高核酸紫外吸收的测定10 以0.0
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