植株生理生长指标的测定

1、根系活力的测定（TTC法）植株根系是活跃的吸收器官和合成器官，根的生长情况和活力水平直接影响地上部分的生长、营养状况及产量水平。一、原理氯化三苯基四氮唑（TTC）是标准氧化电位为 80m V的氧化还原色素，溶于水中成为无色溶液，但 还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲腙，生成的三苯甲腙比较稳定，不会被空气中的氧自动氧化，所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体，植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原，可因加入琥珀酸，延胡索酸，苹果酸得到增强，而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所以TTC还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。二、材料、设备仪器及试剂（一）材料水培或砂培小麦、玉米等植物根系。（二）仪器设备1.

2、 分光光度计；2.分析天平（感量 O.lmg）； 3.电子顶载天平（感量 0.1g）； 4.温箱；5.研钵；6.三角瓶50ml ； 7.漏斗；8.量筒100ml ； 9.吸量管10ml ； 10.刻度试管10ml ； 11.试管架；12.容量瓶10ml ； 13.药勺；14.石英砂适量；15.烧杯10ml、1000ml。（三）试剂1、乙酸乙酯（分析纯）。2、次硫酸钠（NqSQ）,分析纯，粉末。3、1 % TTC溶液：准确称取 TTC 1.0g，溶于少量水中。定容到 100ml。4、 |0.4 % TTC溶液准确称取 TTC 0.4g，溶于少量水中。定容到 100ml。5、磷酸缓冲液（1/15m

3、ol/L , pH7）|:6、 |lmol/L硫酸：用量筒取比重 1.84的浓硫酸55ml，边搅拌边加入盛有 500ml蒸馏水的烧杯中，冷却后稀释至1000ml。7、 0.4mol/L琥珀酸:|称取琥珀酸4.72g，溶于水中，定容至 100ml即成。三、实验步骤1、定性测定(1) 配制反应液：把 1%TT(溶液、0.4 mol/L 的琥珀酸和磷酸缓冲液按1:5:4比例混合。(2) 把根仔细洗净，把地上部分从茎基切除。将根放入三角瓶中，倒入反应液，以浸没根为度，置37 C左右暗处放 13h，以观察着色情况，新根尖端几毫米以及细侧根都明显地变成红色，表明该处 有脱氢酶存在。2、定量测定(1) TT

4、C标准曲线的制作取0.4 % TTC溶液0.2ml放入10ml量瓶中，加少许NqSQ粉摇匀后立即产生红色的甲腙。 再用乙 酸乙酯定容至刻度，摇匀。然后分别取此液0.25ml、0.50ml、1.00ml、1.50ml、2.00ml置10ml容量瓶中，用乙酸乙酯定容至刻度，即得到含甲腙25卩g、50卩g、100卩g、150卩g、200卩g的标准比色系列，以空白作参比，在 485nm波长下测定吸光度，绘制标准曲线。(2) 称取根尖样品0.5g，放入10ml烧杯中，加入0.4 %TTC溶液和磷酸缓冲液的等量混合液 10ml, 把根充分浸没在溶液内，在 37C下暗保温13h,此后加入1mol/L硫酸2m

5、l，以停止反应(与此同 时做一空白实验，先加硫酸，再加根样品，其他操作同上)。(3) 把根取出，吸干水分后与乙酸乙酯34ml和少量石英砂一起在研钵内磨碎，以提出甲月替。红 色提取液移入试管，并用少量乙酸乙酯把残渣洗涤二、三次，皆移入试管，最后加乙酸乙酯使总量为 10ml，用分光光度计在波长 485nm下比色，以空白试验作参比测出吸光度，查标准曲线，即可求出四 氮唑还原量。四、结果计算单位质量鲜根的四氮唑还原强度mQ(g?h)=? x ?C从标准曲线查出的四氮唑还原量(mg);W样品质量(g); t 反应时间(h)。植物体内硝酸还原酶活力的测定硝酸还原酶（nitrate reductase, N

6、R）,是植物氮素同化的关键酶，它催化植物体内的硝酸盐还 原为亚硝酸盐（NO+NADH+4 NO+NAD +H2C）。产生的亚硝酸盐与对-氨基苯磺酸（或对-氨基苯 磺酰胺）及a -萘胺（或萘基乙烯二胺）在酸性条件下定量生成红色偶氮化合物。生成的红色偶氮化合物在 540 nm有最大吸收峰，可用分光光度法测定。硝酸还原酶活性可由产 生的亚硝态氮的量表示。一般单位鲜重以卩g氮/ （g h）为单位。NR的测定可分为活体法和离体法。活体法步骤简单，适合快速、多组测定；离体法复杂，但重复性较好。I离体法一、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料水稻、小麦或其他植物叶片、幼穗等。（二）试剂1、 亚硝酸钠标准溶

7、液：准确称取分析纯NaNO 0.9857g溶于无离子水后定容至1000mL,然后再吸取5mL定容至1000mL,即为含亚硝态氮的 1卩g/mL的标准液。2、 0.1mol/L pH7.5 的磷酸缓冲液： N&HPQ 12HO 30.0905g 与 NaHPQ 2HzO 2.4965g 加无离子水溶 解后定容至1000mL。3、 11 %磺胺溶液:1.0g磺胺溶于100mL浓度为3mol/L的HCI中（25mL浓盐酸加水定容至 100mL即为 3moI/L HCI ）。4、 0.02 %萘基乙烯胺溶液：| 0.0200g萘基乙烯胺溶于100 mL无离子水中，贮于棕色瓶中。5、 0.1 m

8、ol/L KNO 3溶液:2.5275g KNO3溶于 250mL0.1 moI/L pH7.5 的磷酸缓冲液。6、 0.025 mol/L pH8.7的磷酸缓冲液：8.8640g Na 2HPO 12HO, 0.0570g K 2HPO 3HO溶于 1000mL 无离子水中。7、 提取缓冲液：0.1211g半胱氨酸、0.0372g EDTA溶于 100mL0.025 mol/L pH8.7的磷酸缓冲液中。& pmg/mL NADH溶液:2mg NADH溶于 1mL0.1 mol/L pH7.5 磷酸缓冲液中（临用前配制）。（三）仪器设备冷冻离心机，分光光度计，天平（感量0.1 mg

9、）,冰箱，恒温水浴，研钵，剪刀，离心管，具塞试管，移液管，洗耳球。二、实验步骤（一）标准曲线制作取7支洁净烘干的15mL刻度试管按表1顺序加入试剂，配成 02.0卩g的系列标准亚硝态氮溶液。摇匀后在25C下保温30min,然后在540nm下比色测定。以亚硝态氮（卩 g）为横坐标（X）,吸光度值为纵坐标（Y）建立回归方程。表1配制标准溶液时各物质加入量1234567亚硝酸钠标准液00.20.40.81.21.62.0蒸馏水2.01.81.61.20.80.40.01%磺胺44444440.02%萘基乙烯胺4444444每管含亚硝态氮/卩g00.20.40.81.21.62.0管 号试剂/mL（二

10、）样品中硝酸还原酶活力测定1、酶的提取称取0.5g鲜样，剪碎于研钵中置于低温冰箱冰冻30min，取出置冰浴中加少量石英砂及4mL提取缓冲液，研磨匀浆，转移于离心管中在4C、4000r/min下离心15min，上清液即为粗酶提取液。2、酶的反应取粗酶液0.4mL于10 mL试管中，加入3磷酸缓冲液和 0.4mLNADH溶液，混 匀，在25C水浴中保温30min，对照不加NADH溶液，而以磷酸缓冲液代替。3、终止反应和比色测定保温结束后立即加入 1mL磺胺溶液终止酶反应，再加 1mL萘基乙烯胺溶液，显色 15min后于 4000r/min下离心5min,取上清液在540nm下比色测定吸光度。根据回

11、归方程计算出反应液中所产生 的亚硝态氮总量（卩g） °三、结果计算样品中硝酸还原酶活性?x ? x?x 反应液酶催化产生的亚硝态氮总量（卩g）；Vt提取酶时加入的缓冲液体积，mLVs酶反应时加入的粗酶液体积，mLW样品鲜重，g；t 反应时间，h。U活体法一、材料、仪器设备及试剂（一）实验材料水稻、小麦或其他植物叶片、幼穗等。（二）试剂1、 亚硝酸钠标准溶液：准确称取分析纯NaNO 0.9857g溶于无离子水后定容至 lOOOmL,然后再吸取 5mL定容至lOOOmL,即为含亚硝态氮的 1卩g/mL的标准液。2、 |1 %磺胺溶液:1.0g磺胺溶于100mL浓度为3mol/L的HCI中

12、（25mL浓盐酸加水定容至 100mL即为 3mol/L HCl ）。3、 0.02 %萘基乙烯胺溶液：| 0.0200g萘基乙烯胺溶于 100 mL无离子水中，贮于棕色瓶中。4、 0.1 mol/L KNO 3溶液:2.5275g KNO3溶于 250mL0.1 mol/L pH7.5 的磷酸缓冲液。5、 3。三氯乙酸溶液：| 30g三氯乙酸，水溶后定容至100mL。（三）仪器设备真空泵、真空干燥器、小烧杯、玻璃瓶塞、其他用具同离体法。二、实验步骤（一）标准曲线制作：同离体法（二）酶反应及活性测定1、 取样：称取作物叶片 1.02.0g 4 份，剪成1cm左右的小段，放于小烧杯中，用直径略小

13、于烧杯直径的玻璃瓶塞将材料全部压于杯底，其中1份作对照，另外3份做酶活性测定用。2、 反应：先向对照管中加入1mL 30%三氯乙酸，然后各管中都加入9mL 0.1mol/L KNO 3溶液，混匀后立即放入干燥器中，抽气1min再通入空气，再抽真空，反复几次，以排除组织间隙的气体，至叶片完全软化沉入杯底，以便底物溶液进入组织。最后通入氮气密封后，在25C黑暗中反应30min，再分别向测定管（对照管除外）加入1mL 30%三氯乙酸终止酶反应。3、比色测定：将各管摇匀静置2min后，各取2mL反应液，加入1mL磺胺和1mL萘基乙烯胺，摇匀显色15min后，于4000r/min下离心5min,取上清液

14、于 540nm处测其吸光度。根据标准曲线计算出 反应液中生成的亚硝态氮总量（卩g）。三、结果计算同离体法。叶绿素含量的测定一、原理根据叶绿体色素提取液对可见光谱的吸收，利用分光光度计在某一特定波长测定其吸光度，即可用公式计算出提取液中各色素的含量。根据朗伯-比尔定律，某有色溶液的吸光度A与其中溶质浓度 C和叶层厚度L成正比，即：A = a CL式中：a为比例常数，当溶液浓度以百分浓度为单位，叶层厚度为1cm时，a为该物质的吸光系数。各种有色物质溶液在不同波长下的吸光系数可通过测定已知浓度的纯物质在不同波长下的吸光度而求得。如果溶液中有数种吸光物质，则此混合液在某一波长下的总吸光度等于各组分在相

15、应波长下吸光度的总和。这就是吸光度的加和性。今欲测定叶绿素混合提取液中叶绿素a，叶绿素b和类胡萝卜素的含量，只需测定该提取液在3个特定波长下的吸光度 A,并根据叶绿素a，叶绿素b和类胡萝卜素在该波长下的吸光系数即可求出其浓度。在测定叶绿素a,叶绿素b时为了排除类胡萝卜素的干扰，所用单色光的波长应选择叶绿素在红光区的最大吸收峰。已知叶绿素a,叶绿素b的80%f酮提取液在红光区的最大吸收峰分别为663nm和645nm,已知在波长663nm下，叶绿素a，叶绿素b在该溶液中的吸光系数分别为82.04和9.27，在波长645nm下分别为16.75和45.60，可根据加和性原则列出以下关系式:?663 =

16、 82.04? + 9.27?(1)?645 = 16.75?+ 45.60?(2)式(1 )、(2)中的As63和A>45为叶绿素溶液在波长 663nm和645nm时的吸光度，Ca Cb分别为叶 绿素a、叶绿素b的浓度，以mg/L为单位。解方程组(1)、(2)得：? = 12.72?563 - 2.59?645(3)? = 22.88?545 - 4.67?663( 4)(5)将Ca与Cb相加即得叶绿素总量 Ct? = ? + ? = 20.29?645 + 8.05?663另外，由于叶绿素 a、叶绿素b在652nm的吸收峰相交，两者有相同的吸光系数(均为 34.5 ),也可以在此波长

17、下测定一次吸光度(A52)而求出叶绿素 a、叶绿素b总量:?652心00034.5(6)Lichte nthaler在有叶绿素存在的条件下，用分光光度法可同时测定出溶液中类胡萝卜素的含量。（8）（9）等对Arnon法进行了修正，提出了80%丙酮提取液中3种色素含量的计算公式：? = 12.21?盘63 - 2.81 ?646? = 20.13?646 - 5.03?6631000?470- 3.27?- 104? ?=229式中：Ca与Cb分别为叶绿素a、叶绿素b的浓度；Cx? C为类胡萝卜素的总浓度；A663、A646和A470分别为叶绿素色素提取液在波长663nm 646nm和470nm下

18、的吸光度。由于叶绿体色素在不同溶剂中的吸收光谱有差异，因此，在使用其他溶剂提取色素时，计算公式也有所不同。叶绿素 a、叶绿素b在95%乙醇中最大吸收峰的波长分别为665nm和649nm,类胡萝卜素为470nm,可据此列出以下关系式:(10)(11)(12)? = 13.95?665 - 6.88?649? = 24.96?649 - 7.32?6651000?470- 2.05?- 114.8?245<<?=二、材料、仪器设备及试剂（一）材料新鲜（或烘干）的植物叶片。（二）仪器设备分光光度计、电子天平、研钵、棕色容量瓶、小漏斗、定量滤纸、吸水纸、擦镜纸、滴管。（三）试剂1、95%乙醇（或 80%丙酮）；2、石英砂；3、碳酸钙粉。三、实验步骤（1）取新鲜叶片（或其他绿色组织）或干材料，擦净组织表面污物，用打孔器剪