毕业论文——盐胁迫下大豆不同部位锰元素富集能力的研究

1、毕 业 论 文盐胁迫下大豆不同部位锰元素富集能力的研究 学 院 生命科学学院专 业 生物科学（生物制药方向）年 级 2010级学 号 2010136601姓 名 李亚男指导教师 史忠勇二零一四年六月盐胁迫下大豆不同部位锰元素富集能力的研究摘 要：为了研究大豆在盐胁迫下不同部位对锰元素的富集能力，本实验通过水培养法培养三种不同品种的大豆，在适宜阶段使用不同盐浓度培养液处理豆苗。采收材料后使用原子吸收仪分别测量出三种大豆同一植株根、茎、叶中锰元素的含量。结果表明为：大豆同一植株中各部位对锰元素富集能力为根叶茎；培养液盐浓度升高不会影响大豆茎对锰元素的富集能力，但会降低叶对锰元素的富集能力。关键字：

2、富集能力；大豆；水培养法；锰元素；原子吸收光谱法 Studies of manganese enrichment capability in different positions of soybean under salt stressAbstract：In order to study the manganese enrichment capability in different positions of soybean under salt stress, this experiment makes use of hydroponic curing to develop three d

3、ifferent varieties of soybeans,and deals plants with different salt concentration medium in the appropriate phase. After collecting materials we use atomic absorption spectrometer to measure content of manganese element of three soybean plant root, stem, and leaf. The results show that: the manganes

4、e enrichment capability in different positions of soybean under salt stress is root > leaf > stem;the increased salt concentration of medium does not affect the manganese enrichment capability of stem, but will reduce the manganese enrichment capability of leaf. keyword：Enrichment ability; Soy

5、bean; hydroponic curing; Mn; Atomic absorption spectrometry; 目录1 引言11.1锰元素在大豆生长过程中的生理作用11.2水培养法的概述21.3原子吸收光谱法的概述22 实验过程32.1实验仪器与试剂32.1.1实验仪器32.1.2实验试剂32.1.3实验材料32.2样品的培养、采集与处理32.2.1样品的培养32.2.2样品的采集与处理42.3原子吸收仪的操作过程42.3.1开机42.3.2锰元素含量测定43结果与分析53.1锰元素的测量结果53.1.1标准曲线的绘制53.1.2样品分析结果63.2对于数据的处理和分析73.2.1

6、并豆1928各部位锰元素含量分析73.2.2品豆18各部位锰元素含量分析83.2.307F572号大豆各部位锰元素含量分析104结论11参考文献12致谢131 引言大豆作为一种果实含有大量蛋白质和脂质的豆科植物，在日常生活中提供给我们丰富的蛋白质营养1。锰元素对大豆来说是必需微量元素，它对于大豆生长过程中的氮代谢、酶活性调节、光合作用、根瘤菌活动、产量与质量等各方面都有很明显的影响。国内现在对于锰元素在大豆内的各种生理作用的研究已经很多很详实，但是对于大豆的不同部位的锰元素分布研究较少。本实验就是利用水培养法在实验室中将大豆分组置于不同盐浓度培养液中，来研究大豆不同部位对于锰元素的富集能力。利

7、用原子吸收仪测量出锰元素在大豆各部位内含量，来判段大豆各部位对于锰元素的需求量，同时结合实验中对于不同盐浓度下大豆植株根、茎、叶中锰元素的含量变化，来为实际大豆种植中若出现盐胁迫情况应该如何施肥补肥提供依据，从而将实验成果应用于大豆大面积种植生产，为实际生产提供便利。1.1锰元素在大豆生长过程中的生理作用 锰元素是叶绿素的成分之一，是保持其结构的必要元素。大豆植株若缺锰，则嫩叶会表现出枯黄萎蔫的症状，导致光合作用的效率降低，影响大豆产量2。其次，锰元素对于细胞的分裂和伸长也有很明显的促进作用，故其对于根的生长和伸长都十分重要，对于大豆根的鲜重有很大益处。当锰出现缺乏时，大豆植株的根生长受到严重

8、影响，侧根基本停止伸长。锰元素在植物体内存在的主要形式为二价离子，锰离子被根吸收后经过茎中存在的导管和筛管的运输到达叶花等部位，从而维持植株的正常生长。适宜的锰元素还可以大大提高种子的发芽率，也能大大提高发芽指数和芽的活力指数。但是本实验用含有锰元素的培养液培养大豆是在大豆发芽以后，故对于锰元素对于大豆发芽率的影响就不做观察。1.2水培养法的概述通过对于大豆大田栽培与植物组织培养等几种方法的总结和探索，本实验决定使用水培养法来对大豆进行发芽和生长发育培养。水培养法也是现在实验室使用的比较成熟的方法，概括来说就是种植植物但不需土壤。众所周知，植物在生长过程中需要的是土壤中溶解的各种矿物元素以及水

9、分氧分等，而不是土壤本身。根据这个理论探索到的水培养法就是通过水直接向植物提供其生长所需要的矿物元素，最理想的情况就是在整个培育过程中循环使用每一滴水，不留残液，只施用有机肥料。这种培养植物的新方法，使用含有各种植物所需元素的营养液取代土壤，在另一个角度来说，也避免了土壤中对植物生长不利的杂菌的侵害。这种方法的另一个好处是：对于土壤，植物生长所必需的矿物类营养元素都是由有机物质分解的，矿物元素溶解在水中从而被植物根系吸收，在自然条件下，想要使土壤中各种矿物元素达到让植物均衡生长的完美比例是几乎不可能的。而水培养法可以解决这一问题，人为调配营养均衡矿物元素比例合理的培养液，并且可以按照人为意志对

10、培养液来进行调节以达到目的。调配的溶液装在固定的容器中，就不会对周围环境中的土壤造成影响，从而影响生态环境的平衡。1.3原子吸收光谱法的概述原子吸收光谱法是基于从发光处辐射出具有待测元素特征谱线的光，通过式样蒸汽时被蒸汽中待测元素基态原子所吸收，根据辐射特征谱线光被减弱的程度来测定试样中待测元素含量的方法。理论和实践表明，锐线光源辐射的共振线强度被吸收的程度与待测元素吸收辐射的原子总数成正比，在一定的实验条件和一定的浓度范围内，吸光度与被测元素的浓度服从比耳定律。因此，测定吸光度就可求出待测元素的浓度。本实验中使用的是火焰原子吸收光谱法（FAAS）3，FAAS适用范围非常宽泛包括：地质研究、化

11、学工艺、食品工程、环境保护、生命科学、医学药学等领域，方法较为成熟，不易受外物干扰，容易控制实验条件，使用的设备容易得到价格便宜，实验操作简单方便，实验需要的时间较短，灵敏度较高4。FAAS主要用于微量矿物元素的分析，本实验中主要分析的锰元素则非常适合使用这个方法。通过查阅众多文献可知，对于原子吸收光谱法测量植物不同组织微量矿物元素研究中，对于进行分析的植物样品前处理的方法不是特别成熟。不一样的前处理方法得到的结果是有差异的。本实验采用的前处理方法是干灰化法5，一般先加入酸作为辅助试剂，从而促进植物中有机物的分解速度，并且增高矿物元素的回收率，辅助酸对于形成溶解较为容易的灰分有很大帮助。这种方

12、法操作简单方便，不会污染样本，处理量较大，但是较为容易失误，本实验的处理温度较低，适宜用此方法6。2 实验过程2.1实验仪器与试剂2.1.1实验仪器VARIAN-AA240FS原子吸收仪、空气压缩机、乙炔钢瓶器、SX-5-12型箱式电阻炉控制箱、G2X-9246 MBE数显鼓风干燥箱、SPX-300B-G型微电脑光照培养箱、DL-1型万用电炉、烧杯，容量瓶、移液管，培养盆、孔板、纱布、剪刀、镊子、玻璃棒、棉花、滴管、气泵、通气管、记号笔、量筒、胶头滴管、电子天平2.1.2实验试剂培养液母液【成分为：KH2PO4 2mol/L、MgSO4 2mol/L、Ca(NO3)2·4(H2O)

13、1mol/L、ZnSO4·7H2O 2mol/L、MnCl2·4H2O 1mol/L、NaCl、EDTA 1mol/L，】，含锰标准液【浓度梯度为：0g/mL、1g/mL、2g/mL、3g/mL、4g/mL、5g/mL】，自来水，蒸馏水2.1.3实验材料并豆1928、品豆18、07F572三种不同品种的大豆种子2.2样品的培养、采集与处理2.2.1样品的培养样品的培养主要内容就是培育大豆种子使其发芽成苗，按要求将其培养为适宜进行实验的样本。（1）分别选取并豆1928、品豆18、07F572三种不同品种的大豆种子各150粒，用蒸馏水冲洗3次，将出现种皮破裂、子叶受损的种子拣出

14、后，将剩余的种子分装在3个洁净的盆内（按品种贴好标签）。加入蒸馏水淹没大豆，放置12h。（2）把浸泡好的大豆取出，将两层纱布用蒸馏水浸湿，铺在洁净的塑料盆中上，将豆子铺在纱布上，再盖好1层湿纱布，然后放入保持恒温25的培养箱中。（3）每天早晚定时把培养箱中的大豆用蒸馏水冲洗一次，纱布洗一次，并保证其的湿润。如此重复直至大豆发芽并长出根毛后开始进行移栽。（4）分别挑选每种大豆中生长发育较好、根系发达的植株50株。将挑选的植株移栽到培养盆中，每种大豆分5盆、每盆10株并贴好标签（并豆1928-1、2、3、4、5；品豆18-1、2、3、4、5；07F572-1、2、3、4、5）。此时只在盆中添加蒸馏

15、水，并将其放入培养箱保持恒温25进行培养，每天用空气泵给每盆蒸馏水中充气持续一小时7。（5）观察大豆苗的生长状况，等大豆幼苗长出三片新叶后将蒸馏水换为按实验要求稀释好的培养液（盐浓度为0），继续培养大豆，每天向培养液中充入空气，此过程维持1h。等大豆苗长出5-6片新叶的时候更换新的培养液（盐浓度分别为：0g/L、1 g/L、3 g/L、6 g/L、9 g/L），放入培养箱继续培养。培养五天之后更换培养液在同样条件下培养，同时观察不同盆中大豆的生长状况并记录。2.2.2样品的采集与处理在培养10天左右之后采集三种品种的大豆植株开始进行后续实验。分离出各个培养盆中大豆幼苗的叶、根、茎，使用蒸馏水冲

16、洗绞碎后放入小烧杯中，分别贴好标签。将小烧杯放入干燥箱中干燥1h，期间保持温度为80。将小烧杯取出后分别称取0.5g干物质放入坩埚中进行炭化直到出现冒烟现象后停止。之后将样品放入灰化炉中灰化2.5h，期间保持温度为650，从灰化炉中取出样品后冷却并用1:1盐酸溶解灰化物质，再将其移入50mL容量瓶中。将小烧杯用同样比例的盐酸溶液清洗两次，清洗液也移入容量瓶，最后用蒸馏水定容至50mL，等待测量。2.3原子吸收仪的操作过程2.3.1开机打开空气压缩机（压力大于0.35MPa以上），打开乙炔瓶总阀（逆时针），使总表压力达到0.7MPa以上，打开分压阀使分压表压力达到0.07MPa。安装待测元素的空

17、心阴极灯，记住号位。打开通风系统，开附件和外设电源，开仪器电源。2.3.2锰元素含量测定（1）打开仪器自带软件，点击【工作表格】图标后，选【新建】图标，选择火焰法来执行要进行的分析任务，输入工作表格名称和操作员姓名，注释及样品数。确定后进入新建页面。单击【添加方法】，选择锰元素进入下一页。建立火焰分析法，点击【编辑方法】进入元素方法编辑页面，确定锰元素的模式，进样模式选择手动、仪器模式选择吸收、测量模式选择积分、校正模式选择浓度，选择好光学参数。（2）在标签设置里面填写信息。点击“优化”，选择要优化的方法然后按确定。点击【优化元素】进行光源调整，并调整燃烧头专用卡纸，使其达到最优条件。点火，按

18、优化信号，调整助燃剂流量，最后按仪器调零。进大约能产生0.20.8吸光度的锰元素溶液，按【优化信号】，完成信号调节。所有设定完成后（仪器达到最优条件如表1）8。表1 原子吸收光谱仪的工作参数Table 1 The working parameters of atomic absorption spectrometer元素波 长（nm）光谱通带（nm）灯电流（mA）燃烧头高度（mm）负高压（v）火焰类型Mn279.50.27.57.5346空气-C2H22.3.2.3按【开始】进行测试：依照屏幕指示行动，依次添加待检测样品，直至分析完成，得到实验数据。3结果与分析3.1锰元素的测量结果3.1.1

19、标准曲线的绘制 按照原子吸收仪工作界面的显示要求，将不同浓度的锰元素标准溶液添加进入原子吸收仪，通过检测得到各个样品的吸光值，将数据进行归零、修正处理。数据见表2。 表2 锰元素标准溶液吸光值Table 2 manganese element standard solution absorbance valuesMn元素浓度（g/mL）0.01.02.03.04.05.0吸光值 0.0030 0.0404 0.0696 0.1284 0.1609 0.1801修正值 0.0000 0.0374 0.0666 0.1254 0.1579 0.1771将表格中修正的数据输入至Excel中，绘制标准

20、曲线图如图3。图3 原子吸收仪测量Mn含量标准曲线图Figure 3 Atomic absorption instrument measuring standard curves of Mn content由图可知锰标准曲线方程为：y=0.0363x+0.0011，相关系数R²=0.9916，相关系数表示的是原子分析仪所得数据与绘制的标准曲线的拟合度，R²越接近1，则代表着拟合度越好，所得到的标准曲线越准确9。从图表显示可知R²十分接近于1，则可认为得到的方程与实验数据的拟合度高，此标准曲线可用，后面可以通过标准曲线方程获得相应的值。3.1.2样品分析结果（1）按

21、照原子吸收仪工作界面的显示要求，将并豆1928（在五种不同盐浓度培养液培养下）的根、茎、叶的样品按照要求添加进入原子吸收仪，通过检测得到各个样品的吸光值，将数据进行修正后代入图3所得到的标准曲线计算可得到相应的锰含量值，见表4。表4 并豆1928各部位Mn的吸光值及含量（mg/g)Table 4 BBeans1928 each part of Mn absorption value and content盐浓度（g/L） 01369根部Mn的吸光值 0.1077 0.0948 0.2162 0.1422 0.1286修正值 0.1047 0.0918 0.2132 0.1392 0.1256

22、含 量 0.0049 0.0044 0.0088 0.0062 0.0057茎部Mn的吸光值 0.0139 0.0210 0.0141 0.0142 0.0184修正值 0.0109 0.0180 0.0111 0.0112 0.0154含 量 0.0015 0.0017 0.0015 0.0015 0.0016叶部Mn的吸光值 0.0510 0.0400 0.0361 0.0231 0.0349 修正值 0.0480 0.0370 0.0331 0.0201 0.0319 含 量 0.0041 0.0036 0.0023 0.0018 0.0023 （2）按照原子吸收仪工作界面的显示要求，将

23、品豆18（在五种不同盐浓度培养液培养下）的根、茎、叶的样品按照要求添加进入原子吸收仪，通过检测得到各个样品的吸光值，将数据进行修正后代入图3所得到的标准曲线计算可得到相应的锰含量值，见表5。表5 品豆18各部位Mn的吸光值及含量（mg/g)Table 5 PBeans18 each part of Mn absorption value and content盐浓度（g/L） 01369根部Mn的吸光值 0.2486 0.2544 0.1363 0.1396 0.1261 修正值 0.2456 0.2514 0.1332 0.1365 0.1231 含 量 0.0100 0.0102 0.00

24、59 0.0060 0.0056茎部Mn的吸光值 0.0154 0.0181 0.0234 0.0156 0.0113修正值 0.0124 0.0151 0.0204 0.0126 0.0083 含 量 0.0016 0.0016 0.0018 0.0016 0.0014叶部Mn的吸光值 0.0496 0.0445 0.0383 0.0363 0.0218修正值 0.0465 0.0415 0.0353 0.0333 0.0188含 量 0.0028 0.0026 0.0024 0.0023 0.0018（3）按照原子吸收仪工作界面的显示要求，将07F572号大豆（在五种不同盐浓度培养液培养下

25、）的根、茎、叶的样品按照要求添加进入原子吸收仪，通过检测得到各个样品的吸光值，将数据进行修正后代入图3所得到的标准曲线计算可得到相应的锰含量值，见表6。表6 07F572号大豆各部位Mn的吸光值及含量（mg/g)Table 6 07F572Beans each part of Mn absorption value and content盐浓度（g/L） 01369根部Mn的吸光值 0.2218 0.1255 0.3405 0.3591 0.3426修正值 0.2188 0.1225 0.3375 0.3561 0.3396 含 量 0.0090 0.0055 0.0133 0.0140 0.

26、0134茎部Mn的吸光值 0.0243 0.0156 0.0220 0.0169 0.0164 修正值 0.0213 0.0126 0.0190 0.0139 0.0134 含 量 0.0019 0.0016 0.0018 0.0016 0.0016叶部Mn的吸光值 0.0578 0.0444 0.0351 0.0415 0.0305 修正值 0.0548 0.0414 0.0321 0.0385 0.0275 含 量 0.0031 0.0026 0.0023 0.0025 0.00213.2对于数据的处理和分析3.2.1 并豆1928各部位锰元素含量分析 将表4中在五种盐浓度培养液培养下并豆

27、1928的根、茎、叶三个部位测得的锰含量输入Excel，绘制锰含量对比图见图7。图7 并豆1928各部位锰元素含量对比图 （mg/g)Figure 7 BBeans1928 each part content of manganese element contrast figure观察图中根、茎、叶三条线的对比可以看出，在五种盐浓度培养液培养情况下并豆1928同一植株不同部位锰元素的含量比较为：根叶茎。分别观察根、茎、叶每一条线所呈现的趋势我们可知：对于并豆1928号大豆根部，培养液中盐浓度为1g/L，其锰含量降至最低，比较对照组（0 g/L）降低了0.0005mg/g。而当培养液中盐浓度为3

28、 g/L，根中锰含量则升至最高，比较对照组升高了0.0039mg/g，结合在培养大豆苗的过程中对于其生长状况的观察记录，在此盐浓度下大豆长势良好，株高优良。当培养液中盐浓度为6 g/L、9 g/L时，根部锰含量分别较对照组升高了0.0013 mg/g、0.0008mg/g，在逐渐呈现降低趋势，而大豆植株的生长状况也表现出了不良性状，株高降低。查阅文献可知锰元素会影响细胞的分裂和伸长10，而在大豆植株生长初期，根部的细胞分裂和伸长活动都是十分活跃的，而根部的正常生长会直接影响植株的株高长势等方面，根部对锰元素的富集作用很大，而表中数据和实验记录也表先出当根部锰含量最高时，大豆植株的株高长势是最好

29、的。对于大豆叶部，相比于对照组盐浓度为0g/L是植株的叶子长势良好，片数可到达6片。当盐浓度为1g/L时，叶子中锰元素含量降低了0.0005mg/g，且表现出颜色变深，片数减少的症状。当盐浓度为3g/L时，锰元素含量减少0.0018mg/g，叶子减少至4片左右。当盐浓度为6g/L时，锰元素含量减少0.0023mg/g，叶子片数为35片，但同时出现了叶色变浅的症状。而当盐浓度为9g/L时，锰元素含量减少0.0018mg/g，叶子此时已经出现萎蔫皱缩症状。我们知道锰是大豆新陈代谢作用中许多辅助酶的成分，而且是叶绿素的结构成分，直接参与光合作用，叶绿素中含有丰富的锰元素11，叶中的叶绿素含量十分丰富

30、，叶对于锰元素的富集作用十分明显。当植株处于盐胁迫时，随着叶部锰元素含量减少，叶片的生长状况也下降明显。对于茎部来说，对比五组数据可以发现，在盐浓度的变化下，茎部锰元素含量基本处于0.0016±2mg/g的范围，并无很大幅度的变化。且茎部主要负责的只有锰元素的转导和运输，故茎中的锰元素含量最少12，茎对于锰元素的富集作用也比较弱。3.2.2品豆18各部位锰元素含量分析 将表5中在五种盐浓度培养液培养下品豆18的根、茎、叶三个部位测得的锰含量输入Excel，绘制锰含量对比图见图8。图8 品豆18各部位锰元素含量对比图 （mg/g)Figure 8 PBeans1928 each par

31、t content of manganese element contrast figure观察图中根、茎、叶三条线的对比可以看出，在五种盐浓度培养液培养情况下品豆18不同部位锰元素的含量比较为：根叶茎。分别观察根、茎、叶每一条线所呈现的趋势我们可知：对于品豆18号大豆的根部，培养液中盐浓度为1g/L，其锰含量升至最高，相对比对照组（0 g/L）增加了0.0002mg/g，且大豆生长记录中描述此组大豆株高平均最高，长势良好。而当培养液中盐浓度为3 g/L，根中锰含量减少，比较对照组降低了0.0041mg/g，此组大豆株高株高优良，长势一般。当培养液中盐浓度为6 g/L、9 g/L时，根部锰含量

32、分别较对照组降低了0.0040 mg/g、0.0044mg/g，大豆植株生长性状不良，株高降低较多。查阅文献可知锰元素会影响细胞的分裂和伸长13，而在大豆植株生长初期，根部的细胞分裂和伸长活动都是十分活跃的，而根部的正常生长会直接影响植株的株高长势等方面，根部对锰元素的富集作用很大，而表中数据和实验记录也表先出当根部锰含量最高时，大豆植株的株高长势是最好的。对于大豆叶部，相比于对照组盐浓度为0g/L是植株的叶子长势良好，片数较多且颜色嫩绿。当盐浓度为1g/L时，叶子中锰元素含量较之对照组减少了了0.0002mg/g，且表现出颜色变深并有卷皱症状。当盐浓度为3g/L时，锰元素含量较之对照组减少0

33、.0004mg/g，叶子减少为36片且小叶较多。当盐浓度为6g/L时，锰元素含量较之对照组减少0.0005mg/g，出现了叶色变浅的症状。而当盐浓度为9g/L时，锰元素含量较之对照组减少0.0010mg/g，叶子此时长势不良并偏小。我们知道锰是大豆新陈代谢作用中许多辅助酶的成分14，而且是叶绿素的结构成分，直接参与光合作用，叶绿素中含有丰富的锰元素，叶中的叶绿素含量十分丰富，叶对于锰元素的富集作用十分明显。当植株处于盐胁迫时，随着叶部锰元素含量减少，叶片的生长状况也下降明显。对于茎部来说，对比五组数据可以发现，在盐浓度的变化下，茎部锰元素含量基本处于0.0016±2mg/g的范围，并

34、无很大幅度的变化。且茎部主要负责的只有锰元素的转导和运输，故茎中的锰元素含量最少，茎对于锰元素的富集作用也比较弱。3.2.307F572号大豆各部位锰元素含量分析 将表6中在五种盐浓度培养液培养下07F572号大豆的根、茎、叶三个部位测得的锰含量输入Excel，绘制锰含量对比图见图9。图9 07F572号大豆各部位锰元素含量对比图 （mg/g）Figure 9 07F572Beans each part content of manganese element contrast figure观察图中根、茎、叶三条线的对比可以看出，在五种盐浓度培养液培养情况下07F572号大豆不同部位锰元素的含

35、量比较为：根叶茎。分别观察根、茎、叶每一条线所呈现的趋势我们可知：对于07F572号的根部，培养液中盐浓度为1g/L，其锰含量降至最低，相对比对照组（0 g/L）减少0.0045mg/g，且大豆生长记录中描述此组大豆植株株高正常，长势良好。而当培养液中盐浓度为3 g/L，根中锰含量比较对照组升高了0.0043 mg/g，但此组大豆生长缓慢。当培养液中盐浓度为6 g/L、9 g/L时，根部锰含量分别较对照组升高了0.0050 mg/g、0.0044mg/g，这两组大豆植株均出现生长不良、株高降低的症状。这一组数据表现出与另外两种大豆不同的规律，虽然根部锰含量增多，但是植株高盐浓度的培养液中仍旧无

36、法增长15。对于大豆叶部，对照组盐浓度为0g/L，植株的叶子片数为23片且颜色嫩绿。当盐浓度为1g/L时，叶子中锰元素含量较之对照组减少了了0.0005mg/g，且表现出颜色变深症状。当盐浓度为3g/L时，锰元素含量较之对照组减少0.0008mg/g，叶子出现发白症状。当盐浓度为6g/L时，锰元素含量较之对照组减少0.0006mg/g，叶片只有02片。而当盐浓度为9g/L时，锰元素含量较之对照组减少0.0010mg/g，叶子萎蔫干枯。锰是大豆新陈代谢作用中许多辅助酶的成分，而且是叶绿素的结构成分，直接参与光合作用，叶绿素中含有丰富的锰元素，叶中的叶绿素含量十分丰富，叶对于锰元素的富集作用十分明

37、显。当植株处于盐胁迫时，随着叶部锰元素含量减少，叶片的生长状况也下降明显。对于茎部来说，对比五组数据可以发现，在盐浓度的变化下，茎部锰元素含量基本处于0.0016±2mg/g的范围，并无很大幅度的变化。且茎部主要负责的只有锰元素的转导和运输，故茎中的锰元素含量最少，茎对于锰元素的富集作用也比较弱。4结论（1）三种品种大豆的不同部位锰元素含量如表-46所示。（2）无论培养液中盐浓度浓度是否变化或者大豆品种是否相同，大豆植株不同部位锰元素含量规律是不变的，即：根叶茎。也就是说大豆植株不同部位对于锰元素的富集能力规律也是不变的，即：根叶茎。（3）大豆茎中的锰元素的含量基本不会随着培养液中盐浓度的变化而变有明显改变。（4）大豆叶中的锰元素含量受培养液中的盐浓度的增大而减少。参考文献1 文瑞芝,曾栋,袁利萍等.我国9省大豆主要矿物质元素含量的特征分析J.湖南师范大学自然科学学报,2012-10,35(5):60-63.2 王艳,孙杰,吴俊兰.锌、锰、钼微量元素营养对大豆产量品质的影响J.山西农业大学学报, 1997, 17(2):116-