毕业论文西洋菜.doc

1、如有帮助，欢迎下载。广东轻工职业技术学院毕业论文题 目：西洋菜中叶绿素提取工艺研究系别：食品与生物工程系专业：食品营养与检验班级：食检 081姓名：指导教师：魏强华完成时间：2011年 4月 3日1如有帮助，欢迎下载。目 录34.51.1.51.2.6.72.1.72.1.1.72.1.2.72.2. 82.3.102.4.11133.1.13.3.2133.3133.3.1133.3.2143.3.3. . 153.3.4163.3.5173.4.18194.1. 194.2. 194.3.19225.1.225.1.1225.1.2225.1.3225.2.2325.26.272如有帮助，

2、欢迎下载。摘要本研究针西洋菜进行叶绿素提取的试验，采用乙醇提取法提取叶绿素， 通过单因素试验和正交试验，获得最佳的提取次数、提取时间、料液比等。经研究得出西洋菜中叶绿素提取最优工艺为：提取次数为3 次、每次提取时间为 40min、提取的料液比为1:5。最后做了超声波辅助提取试验，结果是它不能提高叶绿素的提取率。（之前是 30min，现在 40min 到底多少呢？）关键词：西洋菜；叶绿素；单因素试验；正交试验；超声波。3如有帮助，欢迎下载。第一章前言1.1概述叶绿素 （ Chlorophyll ）是高等植物进行光合作用的重要物质， 结构为一个镁和四个吡咯环上的氮结合以卟啉为骨架的绿色色素的总称

3、。早在 1818年，Berzelius就开始了对叶绿素的研究 。1933 年美国以有机溶剂法为基础，开始工业生产叶绿素，此方法延用至今 。目前，叶绿素及其各种衍生物的定性定量分析已经应用于各个领域， 植物学中用来研究叶绿素的种类和结构进行植物分类， 海洋学中用来分析海洋中浮游植物的细胞丰度从而对海洋赤潮的发生规律进行监测， 园艺学中用来研究各种瓜果的成熟机理以及保存方法， 农学中用来研究光合作用机理， 食品行业中用来分析叶绿素衍生物添加剂的含量以及食品的色泽 。绿色食品近年来受到了人们广泛关注，而存在于绿色植物中的一种独特而重要的营养物质 叶绿素，它的一些生理功能也开始备受重视 。叶绿素的结构

4、和血红素极相似， 易于被人体吸收， 有赋活细胞的作用，在医药 、食品和日化工业中有广泛用途，由于叶绿素为天然品，无毒副作用，长期食用安全 、可靠，因此， FAO/WHO 对叶绿素每人日允许摄入量未作规定。目前，叶绿素已广泛应用于口香糖 、硬糖、果汁、琼脂、糕点等食品（但不能用于酸性或含钙食品，否则，易产生沉淀），日本已将其作为绿色色素用在食品添加剂中 。医药工业上叶绿素具有改善便秘、降低胆固醇 、抗衰老、排毒消炎、脱臭、抗癌抗突变 、抗贫血、保肝等功能，对皮肤组织有再生作用，可用于治疗烫伤，慢性溃疡，能抑制葡萄球菌和链球菌生长，对齿龈炎 、口臭、中耳炎等有一定疗效 。另外， 叶绿素可以防治感冒

5、， 感冒患者可将叶绿素溶液内服涂口唇或含漱，每日数次， 1-2d 后症状可减轻 。以叶绿素为原料研制治疗缺铁性贫血的叶绿素铁钠盐， 提高白血球水平的叶绿素钴钠盐， 增强智力和记忆力的叶绿素锌钠盐具有重要价值， 由叶绿素制得的叶绿素铜钠盐更是生产治疗肝炎 、胃病及十二脂肠溃疡药物的重要原料 。 叶绿素铜钠盐还是 “肝宝 ”胶囊剂 、“ 胃肝绿 ” 片、“升血宝 ”、“胃康 U”等药物的重要有效成分 。日化工业中用作制造香皂 、香水、护肤霜、香波及牙膏等产品 。因此，叶绿素的市场前景非常广阔，而降低生产成本 、简化提取工艺 、加强对叶绿素活性的一系列研究将对果蔬产业化应用、食品科学 、医药保健等领

6、域产生深远影响。4如有帮助，欢迎下载。1.2 研究意义和研究内容本研究对西洋菜中叶绿素提取进行研究，采用乙醇提取法提取叶绿素， 通过单因素试验、 正交试验设计进行工艺优化，获得最佳提取工艺条件， 以期为应用提供基础。5如有帮助，欢迎下载。第二章西洋菜中叶绿素提取的预备试验2.1 确定取样量及稀释度2.1.1 试验材料、仪器、试剂和方法（ 1） 材料新鲜的西洋菜（广州市海珠区中道轻工中道菜市场） 。（ 2） 仪器和试剂S22pc 型可见分光光度计、电子天平、研钵、容量瓶、小漏斗、玻璃棒、移液管、剪刀、定量滤纸、吸水纸、擦镜纸。无水乙醇，分析纯。（ 3） 试验方法西洋菜用自来水冲洗干净， 分别收集

7、茎和叶， 用水冲洗， 晾干，按叶子 25%，茎 75%称取一定量的样品于烧杯中，粉碎。称样，加溶剂提取，静置，过滤，定容，稀释，测定，记录数据，计算结果。2.1.2 结果与分析（1）试验 1：称取 100g 样品，用剪刀剪碎之后放到研钵中研磨，然后分别称 10g 到 2 个烧杯中用无水乙醇进行提取至样品呈白色（提取液基本无色），收集滤液，定容至 100mL，用可见分光光度计分别测定波长645nm 和 663nm 处的吸光度。表 1试验 1 样品的叶绿素含量表样品编号12样品质量10.0210.03A 6451.6751.678A 6634.1764.180叶绿素总含量（ mg/g）1.6856

8、1.6863（2）试验 2：由试验 1 的吸光度值算出其稀释倍数为5 倍，才能控制吸光度基本在 0.20.8 的范围内。移取试验 1 的样品处理液 20mL 至 100mL 的容量瓶中，用无水乙醇定容，摇匀后，用可见分光光度计分别测定波长645nm 和 663nm 处的吸光度是否在0.20.8 的范围内，然后确定取样量。6如有帮助，欢迎下载。表 2试验 1 样品稀释 5 倍的吸光度值样品编号1-12-1A 6450.3350.337A 6630.8350.858由表 2 可见，经过稀释 5 倍之后，样液的吸光度值大概在0.20.8 的范围内，所以为了节省溶剂，节省提取时间以及提取成本。我们确定

9、了取样量为1g 经过提取收集滤液后定容至50mL。但这样还是可能偏高（在波长663nm 处的吸光度大于0.8），所以我们决定把取样量定为 0.8g 样品经处理，提取之后，定容至50mL。但由于取样量太少，可能存在取样不均匀的情况， 所以我们确定了把取样量放大5 倍，然后再把样液稀释 5 倍，以尽量减少取样不均的现象。即取4g 样品，用溶剂提取之后定容至50mL，摇匀后，再从中吸取2mL 样液至 10mL 容量瓶定容。2.2 提取溶剂的选择根据前人对叶绿素提取的经验表明，用丙酮、乙醇、乙酸乙酯、石油醚等有机溶剂作为提取剂，叶绿素提取效果较好。本试验对相关影响因素进行研究。表 3 不同溶剂对叶绿素

10、提取的影响溶剂乙酸乙酯无水乙醇石油醚丙酮样品质量（ g）4.054.034.024.04A 6450.1760.2590.0280.295A 6630.4000.7020.0700.682叶绿素含量（ mg/g ）0.43880.67610.07030.70977如有帮助，欢迎下载。0.80.70.6）g/g0.5m（量 0.4含素绿 0.3叶0.20.10乙酸乙酯无水乙醇石油醚丙酮溶剂图 1 溶剂与叶绿素含量之间的关系由表 3 和图 1 可以看出，丙酮的提取率是最大的； 但是由于丙酮对中枢神经系统的抑制、 麻醉作用，属于轻微中枢神经抑制剂。 丙酮在有氧及无氧状态下均会迅速生物分解， 但丙酮高

11、浓度下对微生物有毒。 高浓度接触对个别人可能出现肝、肾和胰腺的损害。正是因为丙酮的危害性与丙酮的价钱都比乙醇相对要高，所以从比较安全的角度和经济实惠的角度上来说， 要使用在大规模的生产中和应用在食品加工中，乙醇都是属于比较安全合适的溶剂。通过上述试验， 确定了取样量、 稀释倍数以及所用的提取溶剂。 具体是操作步骤如下：1、清洗：将市场上买回来的新鲜西洋菜，用自来水冲洗掉表面的泥沙后（尽量保持菜身的完整），放在吸水纸上， 以吸去菜身表面吸附的多余水分， 分别收集茎和叶。2、研磨：将西洋菜（按茎：叶=3:1）用剪刀剪碎放到研钵中，小心研磨至变成泥状3、称样：用 0.01 感量的电子天平，称取4g

12、样品于小烧杯中4、提取：加 810mL 无水乙醇（以能没过样品为准）于样品中，用玻璃棒搅拌8如有帮助，欢迎下载。均匀后放到暗处静置 510min，取出后过滤到 50mL 容量瓶中，多次浸提、过滤至样品组织呈白色（或浸泡液基本无色） ；用无水乙醇定容，摇匀。5、稀释：移取 2mL 的样品提取液至10mL 容量瓶中，用无水乙醇定容，摇匀，静置，尽快用可见光分光光度计测定。6、测定：将样品稀释液用 1cm 比色皿分别在波长 645nm 和 663nm 处测吸光度，记录读数。7、分析数据，计算叶绿素含量叶绿素总含量（ mg/g）=(20.29 A6458.04A663)nV1000m式中A645 样品

13、稀释液在波长 645nm 时的吸光度； A663 样品稀释液在波长 663nm 时的吸光度；n 稀释倍数；V 样品溶液体积， mL ；m 样品质量， g.2.3 西洋菜中不同部位叶绿素含量测定（ 1） 试验仪器与试剂S22pc 型可见分光光度计、电子天平、研钵、容量瓶、小漏斗、玻璃棒、移液管、剪刀、定量滤纸、吸水纸、擦镜纸、无水乙醇。（ 2） 试验步骤将西洋菜洗净擦干，茎叶分离，整体按茎：叶=3:1 的比例取样，叶称取0.8g，茎和整体都称取4g，用剪刀剪碎放到研钵中，小心研磨至变成泥状。加 8mL 无水乙醇提取， 放入暗处 10min，取出过滤到 50mL 容量瓶中。重复提取，至样品组织变白

14、。用无水乙醇定容到50mL。移取 2mL 样液到 10mL 容量瓶中，用无水乙醇定容。将样品稀释液用1cm 比色皿分别在波长645nm 和 663nm 处测吸光度，记录读数。9如有帮助，欢迎下载。表 4西洋菜中不同部位的叶绿素含量表茎叶整体样品质量（ g）4.000.84.00A6450.0510.6070.220A6630.1051.5380.547叶绿素含量（ mg/g ）0.11747.71300.5539叶绿素含量（mg/g）987.71376543210.55390.11740茎叶整体图 2 西洋菜中不同部位的叶绿素含量由表 4 和图 2 可知，只取西洋菜的茎做试验时， 叶绿素含量太

15、低， 取样量较大，只取叶做试验时，叶绿素含量太高，取样量较少，两者都不适合做试验，当取整体（即茎：叶 =3:1 ）时，最适合做试验。2.4 在不同预处理中叶绿素含量的变化（ 1） 试验仪器与试剂S22pc 型可见分光光度计、电炉、电子天平、 研钵、容量瓶、小漏斗、玻璃棒、移液管、剪刀、 定量滤纸、吸水纸、擦镜纸、无水乙醇、碳酸钙。（ 2） 试验步骤预处理：称4 份未研磨的西洋菜各4g。一份空白对照，直接研磨；一份用人水烫 2min 后研磨；一份用碱水烫2min 后研磨；一份加碱研磨。10如有帮助，欢迎下载。加 8mL 无水乙醇提取， 放入暗处 10min，取出过滤到 50mL 容量瓶中。重复提

16、取，至样品组织变白。用无水乙醇定容到50mL。移取 2mL 样液到 10mL 容量瓶中，用无水乙醇定容。将样品稀释液用1cm 比色皿分别在波长645nm 和 663nm 处测吸光度，记录读数。表 5 不同预处理与叶绿素含量的关系表处理方法空白样品热汤 2min加碱热汤 2min加 CaCO3 研磨样品质量（ g）4.084.084.094.05A 6450.2200.2510.1810.233A 6630.5470.6430.4670.597叶绿素含量（ mg/g ）0.53710.63500.45860.58210.70.6） 0.5g/gm（ 0.4量含素 0.3绿叶 0.2 0.1 0空

17、白样品热汤 2min加碱热汤 2min加CaCO3研磨图 3 不同预处理中叶绿素含量的变化由表 5 和图 3 可知，经过热烫2min 处理后的样品所提取的叶绿素含量是最高的，其次是加 CaCO3 研磨、空白样品，最低是加碱热烫2min 的。所以在生产和加工工艺中，可以先把样品热烫一下，这样提取叶绿素的效果会更好。11如有帮助，欢迎下载。第三章西洋菜中叶绿素提取的单因素试验3.1 试验材料、试剂和仪器新鲜的西洋菜（广州市海珠区中道轻工中道菜市场）；无水乙醇；可见分光光度计S22pc、电子天平、研钵、容量瓶、小漏斗、玻璃棒、移液管、剪刀、定量滤纸、吸水纸、擦镜纸。3.2 试验方法将西洋菜洗净擦干，

18、茎叶分离，按茎：叶=3:1 的比例取样，称 40g 样品，用剪刀剪碎放到研钵中，小心研磨至变成泥状，待用。按各种不同方法处理样品，过滤到50mL 容量瓶中，用无水乙醇定容到50mL。移取 5mL 样液到 25mL 容量瓶中，用无水乙醇定容。将样品稀释液用1cm 比色皿分别在波长645nm 和 663nm 处测吸光度，记录读数。3.3 试验结果与分析3.3.1最佳提取时间的选择称取 7 份待用样品于小烧杯中，每份的质量为4g。各加 30mL 无水乙醇一次提取，放入暗处，时间分别是 0 min、5 min、10 min、20 min、30 min、45 min、60min。过滤，稀释，上机检测，记

19、录数据。表 6 提取时间与叶绿素含量的关系表提取时间（ min ）051020304560样品质量（ g）4.054.064.054.004.004.084.02A 6450.700.1770.1770.2050.2160.1920.180A 6630.1770.4620.4720.5370.5730.4800.472叶绿素含量（ mg/g ）0.17550.44990.45590.52980.56110.47390.473712如有帮助，欢迎下载。0.60.5）g 0.4/gm（量 0.3含素绿叶 0.2 0.10时间0min5min10min20min30min45min60min图 4

20、提取时间与叶绿素含量的关系由表 6 和图 4 可知，随着提取时间的增加， 叶绿素含量呈上升趋势， 在 30min处达到最高点，然后呈下降趋势，所以最佳的提取时间是30min。3.3.2最佳提取温度的确定称取 5 份待用样品于小烧杯中， ，每份的质量为 4g。各加 30mL 无水乙醇一次提取，提 30min。温度分别是室温、 30、 40、 50、 60。过滤，稀释，上机检测，记录数据。表 7 在不同温度下叶绿素含量的变化表提取温度（）室温30405060样品质量（ g）4.044.054.024.084.01A 6450.2100.1940.1620.1590.162A 6630.4660.4

21、670.3990.3720.394叶绿素含量（ mg/g ）0.49550.47470.40390.38090.402413如有帮助，欢迎下载。）g/gm（0.60.50.4量 0.3含素绿叶0.20.10室温30405060温度图 5 提取温度与叶绿素含量的关系由表 7 和图 5 可知，在室温环境下， 所提取的叶绿素含量是最高的，随着温度升高，叶绿素含量愈来愈低，50时达到最低点，虽然60时有上升趋势，但温度越高，耗能越大，而且会破坏西洋菜中的叶绿素，因此，最佳的提取温度是室温。3.3.3提取次数的确定称取 4g 待用样品于小烧杯中。每次加16mL 无水乙醇提取，提取三次，每次提 30min

22、。三次的滤液分别过滤到3 个 50mL 容量瓶中，用无水乙醇定容到50mL。稀释，上机检测，记录数据。表 8 提取次数与叶绿素含量的关系表提取次数（次）123样品质量（ g）两个平行样的质量都是4.04gA6450.5360.5430.2110.2720.0600.0660.5400.2420.063A6451.0041.0020.5240.7060.1550.1811.0030.6150.168叶绿素含量（ mg/g ）0.23540.12200.032514如有帮助，欢迎下载。0.25）0.2g/gm（量 0.15含素绿叶 0.10.050第1次第2次第3次提取次数图 6 提取次数与叶绿素

23、含量的关系三次提取完后， 西洋菜的组织已经变白， 那么该样品中的叶绿素已完全或基本完全被提取出来，由表 8 和图 6 可知，（0.2354+0.1220）（/ 0.2354+0.1220+0.0325） 100=91.7。即第一次和第二次提取出来的叶绿素占三次所提取的叶绿素总含量的 91.7，所以，提取次数就确定为 2 次。3.3.4最佳料液比的确定称取 4 份样品于小烧杯中，每份的质量为4g。分别按照西洋菜：溶剂=1:2、1:3、1:4、1:5，在室温下提取两次，每次30min。过滤，稀释，上机检测，记录数据。表 9 料液比与叶绿素含量的关系料液比1 : 21 : 31 : 41 : 5样品

24、质量（ g）4.014.014.024.00A 6450.1470.1250.1550.142A 6630.3770.3310.4120.384叶绿素含量（ mg/g ）0.37490.32400.40160.373015如有帮助，欢迎下载。0.450.40.35）g0.3/gm（ 0.25量含 0.2素绿 0.15叶0.10.0501比21比31比41比5料液比图 7 料液比与叶绿素含量的关系由表 9 和图 7 可知，当料液比为 1:2 时，所提取的叶绿素含量是0.3749，1:3时是 0.3240，1:4 时是 0.4016，1:5 时是 0.3730，由此可见，当料液比为1:4 时，所提

25、取的叶绿素含量最高，所以最佳的料液比是1:4。3.3.5 不同干燥时间对叶绿素提取的影响将西洋菜洗净擦干，茎叶分离，按茎：叶=3:1 的比例取样。称取5 份没经研磨的样品于小烧杯中，每份的质量为4g，放入 60恒温烘箱里，分别烘0 h、1 h 、3 h 、 5 h 、7 h。取出，在室温下提取两次，每次30min。过滤，稀释，上机检测，记录数据。表 10 不同干燥时间与叶绿素含量的关系干燥时间（ h）01357样品质量（ g）4.014.064.034.074.03A 6450.2750.2100.2110.2040.203A 6630.6780.5390.5420.5380.540叶绿素含量

26、（ mg/g ）0.68770.52920.53590.51990.524816如有帮助，欢迎下载。0.80.70.6）g/g0.5m（量 0.4含素绿 0.3叶0.20.100h1h3h5h7h时间图 8 干燥时间与叶绿素含量的关系由表 10和图 8 可知，干燥时间为 0min 的样品测出的叶绿素含量最高，（0.6877 0.5359 ）/0.5359=0.28 ，比 5h 的多了 28，比 1h、3h、 7h 的就多更多了，所以没经过干燥的样品最适合用于提取叶绿素。3.4 结论由以上单因素试验结果可知， 各因素最佳的水平分别是： 提取时间为 30min，提取温度为室温，提取次数为2 次，料

27、液比为 1:4，干燥时间为 0min。17如有帮助，欢迎下载。第四章西洋菜中叶绿素提取的正交试验4.1 试验材料、试剂和仪器新鲜的西洋菜（广州市海珠区中道轻工中道菜市场）；无水乙醇；可见分光光度计S22pc、电子天平、研钵、容量瓶、小漏斗、玻璃棒、移液管、剪刀、定量滤纸、吸水纸、擦镜纸。4.2 试验方法将西洋菜洗净擦干，茎叶分离，按茎：叶=3:1 的比例取样，称 40g 样品，用剪刀剪碎放到研钵中，小心研磨至变成泥状，待用。称 9 份待用样品，各4g。按正交表的因素水平的要求处理样品，过滤到50mL 容量瓶中，用无水乙醇定容到50mL。（第 7 号试验用 100mL 容量瓶）移取 5mL 样液

28、到 25mL 容量瓶中，用无水乙醇定容。将样品稀释液用1cm 比色皿分别在波长645nm 和 663nm 处测吸光度，记录读数。4.3 试验结果与分析（ 1） 制定试验的因数水平表表 11 叶绿素提取的因数水平表水平因数提取次数 A（次）提取时间 B（ min）料液比 C11201: 322301: 433401: 5（ 2） 西洋菜中叶绿素提取的正交试验表18如有帮助，欢迎下载。表 12 西洋菜中叶绿素提取正交试验结果L 9 (3 3)试验编号提取次数 A（次）提取时间 B料液比 C叶绿素含量（ min ）（mg/g ）11110.334621220.362531330.387342120.

29、496552230.508862310.501873130.572383210.511393320.5505 K11.08441.40341.3477总和 K21.50711.38261.40954.2256 K31.63411.43961.4684K10.36150.46780.4493平均值之和K20.50240.46090.46981.4086K30.54470.47990.4895R0.18320.01900.0197优化水平A 3B 3C3根据叶绿素含量，结果见表12，对叶绿素含量结果进行极差分析，由极差（ R）可知，影响因素的主次为：提取次数料液比提取时间。对表 12 的结果进行分

30、析，得到最优组合为： A3 B3 C3 ，即提取次数 3 次、提取时间 40min、料液比 1:5。（你组中有同学做的是 30min，？）（ 3） 画出因素与指标间的关系示意图19如有帮助，欢迎下载。）g/gm0.60.50.4（量 0.3含素绿叶 0.2 0.10A1A2A3B1B2B3C1C2C3图 9 提取次数、提取时间、料液比与叶绿素含量的关系示意图（ 4） 最优配方验证试验表 13最优配方验证试验平行样12样品质量（ g）4.044.04A 6450.2430.223A 6630.6430.598叶绿素含量（ mg/g）0.62500.5775叶绿素平均含量（mg/g ）0.6013

31、20如有帮助，欢迎下载。第五章超声波辅助提取叶绿素工艺研究5.1 超声波处理时间的确实5.1.1试验材料、试剂和仪器新鲜的西洋菜（广州市海珠区中道轻工中道菜市场） ；无水乙醇；可见分光光度计 S22pc、超声波清洗机 HS6150、紫外可见分光光度计 UV-2450、电子天平、研钵、容量瓶、小漏斗、玻璃棒、移液管、剪刀、 定量滤纸、吸水纸、擦镜纸。5.1.2试验步骤将西洋菜洗净擦干，茎叶分离，按茎：叶=3:1 的比例取样，称 40g 样品，用剪刀剪碎放到研钵中，小心研磨至变成泥状。称取 4 份样品于小烧杯中，每份的质量为4g。各加 20mL 无水乙醇，放入超声波清洗机里超声，超声时间分别为0

32、min 、5 min 、10 min、 20 min，取出放置 40min，过滤到 100mL 容量瓶中，再进行第二次和第三次提取，分别加20mL，最后用无水乙醇定容到100mL。移取 5mL 样液到 25mL 容量瓶中，用无水乙醇定容。将样品稀释液用1cm 比色皿分别在波长645nm 和 663nm 处测吸光度，记录读数。5.1.3结果与分析表 14 超声波辅助提取叶绿素的研究超声时间（ min ）051020样品质量（ g）4.034.014.024.03A 6450.2400.1900.2010.214A 6630.6050.4910.5160.541叶绿素含量（ mg/g）0.6038

33、0.48650.51160.539221如有帮助，欢迎下载。0.70.6）0.5g/gm（0.4量含素0.3绿叶 0.2 0.100min5min10min20min超声时间图 10 超声波辅助提取时间与叶绿素含量的关系由表 14 和图 10 可知，没经过超声处理的样品叶绿素含量是0.6038，经过超声处理的叶绿素含量分别为0.4865、0.5116 和 0.5392，很明显，没经过超声处理的叶绿素提取率更高， 可能超声后叶绿素部分被破坏了，含量减少了， 所以超声对叶绿素提取无效果。5.2 超声前后叶绿素的差异用紫外分光光度计扫描上述4 个样品，它们的综合谱图见图11。22如有帮助，欢迎下载。

34、图 11 叶绿素综合谱图在图 11 中，最高的峰是叶绿素a 的峰，红色的线代表超声处理时间为0min的样品，浅蓝色的线代表超声处理时间为5min 的样品，浅紫色的线代表超声处理时间为 10min 的样品，浅绿色的线代表超声处理时间为20min 的样品。它们的出峰位置都一样， 没有偏移，所以超声前后叶绿素本质没有差异，只是叶绿素的含量不一样而已。23如有帮助，欢迎下载。第六章总结经过十多天的努力，终于完成了整个毕业论文涉及的所有试验。本次试验研究的是西洋菜中叶绿素的提取工艺。我们做了预备试验， 确定了一个提取叶绿素的方案。西洋菜经过热水漂烫2min 预处理后，提取叶绿素的效果会更佳，我们本次用于

35、提取叶绿素的溶剂是无水乙醇， 为什么选择它呢， 从试验中可以看出，丙酮的提取效果比无水乙醇好，但是，它有一定的危害性，正是因为丙酮的危害性与丙酮的价钱都比乙醇相对要高， 因此，从比较安全的角度和经济实惠的角度上来说，乙醇都是属于比较安全合适的溶剂。然后做单因素试验，确定了各因素的最佳水平，提取时间为 30min，提取温度为室温，提取次数为 2 次，料液比为 1:4，干燥时间为 0min。接着选择提取时间、次数和料液比作因素水平表。 最后做正交试验， 得出的最优配方是提取次数为 3 次，提取时间为 40min，提取的料液比为 1:5。做干燥时间的研究时， 我们发现，没经过干燥的样品， 所提取出来的叶绿素含量比经过干燥的都高。 干燥时间达到 5 小时的样品， 研磨后已成粉末状， 毫无水分，非常干燥，以后有机会可以进行干燥后处理的研究。西洋菜中叶绿素提取的最优工艺条件确定后， 我们还做了超声波辅助提取叶绿素工艺研究。结果是没经超声的样品提取出来的叶绿素比经